MorphologyMorphologyМорфология1026-35432949-2556Eco-Vector39819610.17816/morph.398196ArticlesСтатьиResearch ArticleMETHODOLOGICAL PECULIARITIES OF THE MORPHOMETRIC CHARACTERIZATION OF HUMAN NEOCORTEX SYNOPTOARCHITECTONICS BASED ON IMMUNOFLUORESCENT DEMONSTRATION OF NEUROMODULINМЕТОДИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ МОРФОМЕТРИЧЕСКОЙ ХАРАКТЕРИСТИКИ СИНАПТОАРХИТЕКТОНИКИ НЕОКОРТЕКСА ЧЕЛОВЕКА ПРИ ИММУНОФЛЮОРЕСЦЕНТНОМ ВЫЯВЛЕНИИ НЕЙРОМОДУЛИНАStepanovA. S.СтепановАлександр Сергеевич

Department of Histology, Cytology and Embryology

кафедра гистологии, цитологии и эмбриологии

ctepan55@yandex.ruAkulininV. A.АкулининВиктор Александрович

Department of Histology, Cytology and Embryology

кафедра гистологии, цитологии и эмбриологии

akulinin@omsk-osma.ruStepanovS. S.СтепановСергей Степанович

Department of Histology, Cytology and Embryology

кафедра гистологии, цитологии и эмбриологии

serg_stepanov@mail.ruAvdeyevD. B.АвдеевДмитрий Борисович

Department of Histology, Cytology and Embryology

кафедра гистологии, цитологии и эмбриологии

avdeev86@inbox.ruOmsk State Medical UniversityОмский государственный медицинский университет150120181531VOL 153, NO1 (2018)ТОМ 153, №1 (2018)657009052023Copyright ©; 2018, Eco-VectorCopyright ©; 2018, Эко-Вектор2018Eco-VectorЭко-Векторhttps://j-morphology.com/1026-3543/article/view/398196

Objective - to explore the possibilities of morphometric characteristics of synoptoarchitectonics using GAP-43. Material and methods. Used immunofluorescent detection of neuromodulin (GAP-43), confocal microscopy and automated computer image analysis (ImageJ 1.46. program) were used to study the layer V (field 4) of human cerebral cortex (n=4). Results. Application of imunofluorescent demonstration of GAP-43 has allowed to detect the distribution of axodendritic and axosomatic synapses, the total area of axonal terminals, numerical density of medium and large terminals. Conclusion. A necessary condition for obtaining accurate data is high resulting magnification of digital images (600- 900 pixels/inch). The findings obtained should be taken into account when examining synoptoarchitectonics of the neocortex using the immunohistochemical methods for studying the structure of synapses.

Цель - изучить возможности морфометрической характеристики синаптоархитоники с помощью GAP-43. Материал и методы. Использовали иммунофлюоресцентное выявление нейромодулина (GAP-43), конфокальную микроскопию и автоматизированный компьютерный анализ изображений слоя V (поле 4) коры головного мозга человека (n=4) с помощью программы ImageJ 1.46. Результаты. Использование иммунофлюоресцентного выявления GAP-43 позволило установить распределение аксодендритических и аксосоматических синапсов, общую площадь аксонных терминалей, численную плотность средних и крупных терминалей. Выводы. Необходимым условием получения точных данных является большое конечное увеличение цифровых изображений (600-900 пикселей/дюйм). Полученные результаты необходимо учитывать при изучении синаптоархитектоники неокортекса с помощью иммуногистохимических методов изучения структур синапсов.

neocortexsynapsesneuromodulinimmunofluorescenceautomated computer analysisнеокортекссинапсынейромодулиниммунофлюоресценцияавтоматизированный компьютерный анализГилерович Е. Г., Сухорукова Е. Г., Кирик О. В., Григорьев И. П., Коржевский Д. Э. Выявление специализированных синаптических групп (гломерул) в мозжечке человека при помощи иммуноцитохимической реакции на синаптофизин и конфокальной лазерной микроскопии // Морфология. 2014. Т. 146, № 5. С. 73-77.Мыцик А. В., Акулинин В. А., Степанов С. С., Ларионов П. М. Возможности морфометрической характеристики синапсов неокортекса человека при иммуногистохимической верификации // Сибирск. мед. журн. 2013. Т. 118, № 3. С. 66-69.Мыцик А. В., Акулинин В. А., Степанов С. С., Сергеев А. В., Ларионов П. М. Иммунофлюоресцентная верификация и морфометрия аксосоматических синапсов неокортекса человека при острой и хронической ишемии // Морфол. ведомости. 2012. № 3. С. 53-60.Семченко В. В., Степанов С. С., Боголепов Н. Н. Синаптическая пластичность головного мозга (фундаментальные и прикладные аспекты). 2-е изд. М.: Медиа-Сфера, 2014.Семченко В. В., Степанов С. С., Ерениев С. И. Структурнофункциональное восстановление нервной ткани головного мозга в постишемическом периоде с позиций представления о провизорности в репаративном гистогенезе // Тихоокеанск. мед. журн. 2016. № 2. С. 98-102.Сергеев А. В., Степанов С. С., Акулинин В. А., Мыцик А. В. Естественные механизмы защиты головного мозга человека при хронической ишемии // Общая реаниматол. 2015. Т. 11, № 1. С. 22-32.Arthur C. P., Stowell M. H. B. Structure of synaptophysin: a hexameric MARVEL - domainchannel protein // Structure. 2007. Vol. 15, № 6. P. 707-714. doi: 10.1016/j.str.2007.04.011Grasselli G., Strata P. Structural plasticity of climbing fibers and the growth-associated protein GAP-43 // Front. Neural. Circuits. 2013. Vol. 7, № 25. P. 1-7. doi: 10.3389/fncir.2013.00025Kwon S. E., Chapman E. R. Synaptophysin regulates the kinetics of synaptic vesicle endocytosis in central neurons // Neuron. 2011. Vol. 70, № 5. P. 847-854. doi: 10.1016/j.neuron.2011.04.001Luebke J. I., Medalla M., Amatrudo J. M., Weaver C. M., Crimins J. L., Hunt B., Hof P. R., Peters A. Age-related changes to layer 3 pyramidal cells in the rhesus monkey visual cortex // Vis. Cereb. Cortex. 2015. Vol. 25, № 6. P. 1454-1468. doi: 10.1093/cercor/bht336Peters A., Sethares C., Luebke J. I. Synapses are lost during aging in the primate prefrontal cortex // Neurosci. 2008. Vol. 152, № 4. P. 970-981. doi: 10.1016/j.neuroscience.2007.07.014Powell C. M. Gene targeting of presynaptic proteins in synaptic plasticity and memory: across the great divide // Neurobiol. Learn. Mem. 2006. Vol. 85, № 1. P. 2-15. doi: 10.1016/j. nlm.2005.08.014