MorphologyMorphologyМорфология1026-35432949-2556Eco-Vector39859910.17816/morph.398599ArticlesСтатьиResearch ArticleDISTRIBUTION OF ALPHA-TUBULIN IN THE STRUCTURES OF RAT FOREBRAINРАСПРЕДЕЛЕНИЕ АЛЬФА-ТУБУЛИНА В СТРУКТУРАХ ПЕРЕДНЕГО МОЗГА КРЫСЫGrigoriyevI. P.ГригорьевИгорь Павлович

лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы, отдел общей и частной морфологии

ipg-iem@yandex.ruShklyayevaM. A.ШкляеваМаргарита Александровна

лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы, отдел общей и частной морфологии

margarita.shkliaeva@student.spb.ruKirikO. V.КирикОльга Викторовна

лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы, отдел общей и частной морфологии

olga_kirik@mail.ruGilerovichYe. G.ГилеровичЕлена Георгиевна

лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы, отдел общей и частной морфологии

iemmorphol@yandex.ruKorzhevskiyD. E.КоржевскийДмитрий Эдуардович

лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы, отдел общей и частной морфологии

dek2@yandex.ruRAMS North-Western Branch Institute of Experimental MedicineНаучно-исследовательский институт экспериментальной медицины СЗО РАМН150220131431VOL 143, NO1 (2013)ТОМ 143, №1 (2013)00701009052023Copyright ©; 2013, Eco-VectorCopyright ©; 2013, Эко-Вектор2013Eco-VectorЭко-Векторhttps://j-morphology.com/1026-3543/article/view/398599

The distribution of alpha-tubulin, the major protein of the microtubules, was studied using immunohistochemistry in the rat forebrain structures. The differential distribution of alpha-tubulin immunoreactivity was detected: high immunoreactivity was found in cingulate and pyriform cortex, olfactory tubercles and optic chiasm, while the weakest immunohistochemical staining was observed in caudatoputamen, superficial layers of septum, cingulum and areas around the third cerebral ventricle. Immunoreactivity in the nervous cells was distributed along perikaryon periphery and in the apical dendrite. It is suggested that the intensity of alpha-tubulin immunohistochemical reaction could reflect the functional state of the neurons.

Иммуногистохимически исследовано распределение белка микротрубочек α-тубулина в структурах переднего мозга крысы. Обнаружена неравномерность окраски при реакции на α-тубулин. Высокая иммунореактивность выявлена в поясной и пириформной коре, обонятельных бугорках и перекресте зрительных нервов. Наиболее слабая иммуногистохимическая реакция отмечена в полосатом теле, поверхностных слоях перегородки, поясе и структурах вокруг III желудочка мозга. Иммунореактивность в нейронах была отчетливо выражена по периферии перикариона и в апикальном дендрите. Высказано предположение, что интенсивность иммуногистохимической реакции на α-тубулин может отражать уровень функционального состояния нейронов.

brainimmunohistochemistryalpha-tubulinголовной мозгиммуногистохимияα-тубулинКоржевский Д. Э., Григорьев И. П. и Отеллин В. А. Применение обезвоживающих фиксаторов, содержащих соли цинка в нейрогистологических исследованиях. Морфология, 2006, т. 129, вып. 1, с. 85–86.Коржевский Д. Э., Карпенко М. Н. и Кирик О. В. Белки, ассоциированные с микротрубочками, как показатели дифференцировки и функционального состояния нервных клеток. Морфология, 2011, т. 139, вып. 1, с. 13–21.Dráber P., Leu F. J., Viklický V. and Damjanov I. Immunohisto chemical heterogeneity of alpha-tubulin in human epithelia revealed with monoclonal antibodies. Histochemistry, 1987, v. 87, № 2, p. 151–155.Field D. J., Collins R. A. and Lee J. C. Heterogeneity of vertebrate brain tubulins. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1984, v. 81, № 13, p. 4041–4045.Gray E. G., Westrum L. E., Burgoyne R. D. and Barton J. Synaptic organization and neuron microtubule distribution. Cell Tissue Res., 1982, v. 226, № 3, p. 579–588.Hyams J. S. and Lloyd C. W. Microtubules. New York: Wiley-Liss, 1993.Liu H. H. and Brady S. T. cAMP, tubulin, axonal transport, and regeneration. Exp. Neurol., 2004, v. 189, № 2, p. 199–203Matus A., Bernhardt R., Bodmer R. and Alaimo S. Microtubuteassociated protein 2 and tubulin are differently distributed in the dendrites of developing neurons. Neuroscience, 1986, v. 17, № 2, p. 371–389.Matus A. I., Walters B. B. and Mughal S. Immunohistochemical demonstration of tubulin associated with microtubules and synaptic junctions in mammalian brain. J. Neurocytol., 1975, v. 4, № 6, p. 733–744.MacRae T. H. Tubulin post-translational modifications: enzymes and their mechanisms of action. Eur. J. Biochem., 1997, v. 244, № 2, p. 265–278Naves F. J., Huerta J. J., Garcia-Suarez O. et al. Distribution of immunoreactivity for cytoskeletal (microtubule, microtubule-associated, and neurofilament) proteins in adult human dorsal root ganglia. Anat. Rec., 1996, v. 244, № 2, p. 246–256.Pellegrini F. and Budman D. R. Tubulin function, action of anti-tubulin arugs, and new drug development. Cancer Invest., 2005, v. 23, № 3, p. 264–273.Paxinos G. and Watson C. The rat brain in stereotaxic coordinates. San Diego, Academic Press, 1986.Tischfield M. A. and Engle E. C. Distinct α- and β-tubulin isotypes are required for the positioning, differentiation, and survival of neurons: new support for the «multi-tubulin» hypothesis. Biosci. Rep., 2012, v. 30, № 5, p. 319–330.Tsai L. H. and Gleeson J. G. Nucleokinesis in neuronal migration. Neuron, 2005, v. 46, № 3, p. 383–388.Villasante A., Wang D., Dobner P. et al. Six mouse a-tubulin mRNAs encode five distinct isotypes: Testisspecific expression of two sister genes. Mol. Cell. Biol., 1986, v. 6, № 7, p. 2409–2419.