MorphologyMorphologyМорфология1026-35432949-2556Eco-Vector39874010.17816/morph.398740ArticlesСтатьиResearch ArticleNEURONAL AND GLIAL ANTIGEN DISTRIBUTION IN THE COLUMNS OF SOMATOSENSORY CORTEX OF RAT BRAIN (AN IMMUNOHISTOCHEMICAL STUDY)РАСПРЕДЕЛЕНИЕ НЕЙРОНАЛЬНЫХ И ГЛИАЛЬНЫХ АНТИГЕНОВ В КОЛОНКАХ СОМАТОСЕНСОРНОЙ КОРЫ МОЗГА КРЫСЫ (ИММУНОГИСТОХИМИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ)KirichenkoYe. Yu.КириченкоЕвгения Юрьевна

лаборатория функциональной нейроморфологии и электронной микроскопии

kiriche.evgeniya@yandex.ruLogvinovA. K.ЛогвиновАлександр Константинович

патологоанатомическое отделение

alekloov@rambler.ruPovilaititeP. Ye.ПовилайтитеПатриция Едмундовна

отдел экспериментальной патоморфологии и электронной микроскопии

povpe@yandex.ruGrankinaA. O.ГранкинаАнастасия Олеговна

лаборатория функциональной нейроморфологии и электронной микроскопии

grankina.anastasia@mail.ruA. B. Kogan Scientific Research Institute of Neurocybernetics, Southern Federal UniversityНаучно-исследовательский институт нейрокибернетики им. А. Б. Когана, Южный Федеральный университетRegional Clinical Hospital №2Областная клиническая больница № 2Rostov Regional Bureau of Pathological AnatomyРостовское областное патологоанатомическое бюро150420141452VOL 145, NO2 (2014)ТОМ 145, №2 (2014)71109052023Copyright ©; 2014, Eco-VectorCopyright ©; 2014, Эко-Вектор2014Eco-VectorЭко-Векторhttps://j-morphology.com/1026-3543/article/view/398740

The aim of the study was to detect the neocortical columns in the S1 field on frontal sections of brain of albino rats using the method of immunohistochemistry and the antibodies against neuronal (synaptophysin, neurofilament) and gliocyte (glial fibrillary acidic protein - GFAP, myelin basic protein) proteins. The examination of the expression of the major neurospecific antigens revealed that on thin sections (4 μm) a column could be identified due to accumulations of the astrocytes and neuronal processes - axons and dendrites. GFAP expression study also showed that cortical layer I usually contained multiple large astrocytes with branching processes, as well as numerous smaller processes with high intensity of expression. Synaptophysin content was high in all the layers of the cortex, but the most intense reaction was detected in the molecular layer, similarly with the intensity of GFAP reaction. The expression of myelin basic protein was detected in accordance with the radially extending myelinated processes of the neurons in the cortex.

Целью исследования было выявление колонок неокортекса поля S1 на фронтальных срезах головного мозга у белых беспородных крыс (n=10) с использованием метода иммуногистохимии и антител к белкам нейронов (синаптофизину, нейрофиламентам) и глиоцитов (глиальному фибриллярному кислому белку - GFAP, основному белку миелина). Изучение экспрессии основных нейроспецифических антигенов позволило установить, что на тонких срезах (4 мкм) колонку можно идентифицировать благодаря скоплениям астроцитов и отростков нейронов - аксонов и дендритов. Исследование экспрессии GFAP также показало, что в I слое коры, как правило, содержатся большое количество крупных астроцитов с ветвящимися отростками, а также многочисленные мелкие отростки с высокой интенсивностью экспрессии. Содержание синаптофизина - высокое во всех слоях коры, но наиболее интенсивная реакция выявлена в молекулярном слое, так же как и при реакции на GFAP. Экспрессия основного белка миелина выявляется, соответственно, радиально расположенным миелинизированным отросткам нейронов в коре.

somatosensory cortexcolumnsneuronal and glial proteinsimmunohistochemistryсоматосенсонрая кораколонкибелки нейронов и глиоцитовиммуногистохимияКириченко Е. Ю., Повилайтите П. Е. и Сухов А. Г. Роль щелевых контактов в локальном ритмогенезе корковых колонок. Морфология, 2008, т. 133, вып. 1, с. 31-34.Краснощекова Е. И. Модульная организация нервных центров. СПб., Изд-во СПбГУ, 2007.Логвинов А. К., Кириченко Е. Ю., Повилайтите П. Е. и Сухов А. Г. Структурная организация баррельной коры мозга крысы (иммуногистохимическое исследование). Морфология, 2010, т. 137, вып. 1, с. 10-13.Сухорукова Е. Г. Структурная организация астроцитов I слоя коры головного мозга человека. Морфология, 2010, т. 137, вып. 4, с. 185.Хожай Л. И. и Отеллин В. А. Морфогенез слоя I коры мозга мышей в пренатальный период развития. Онтогенез, 1999, т. 30, № 1, с. 40-46.DeFelipe J., Markram H. and Rockland K. The neocortical column. Frontiers in neuroanatomy, 2012, v. 6, № 22, p. 4-5.Fields R. D. and Burnstock G. Purinergic signalling in neuron-glia interactions. Nat. Rev. Neurosci., 2006, v. 7, № 6, p. 423-436.Giaume C., Maravall M., Welker E. and Bonvento G. The barrel cortex as a model to study dynamic neuroglial interaction. Neuroscientist, 2009, v. 15, № 4, p. 351-366.Kozoriz M. G., Bates D. C., Bond S. R. et al. M. Passing potassium with and without gap junctions. J. Neurosci., 2006, v. 26, № 31, p. 8023-8024.Pannasch U., Derangeon M., Chever O. and Rouach N. Astroglial gap junctions shape neuronal network activity. Commun. Integr. Biol., 2012, v. 5, № 3, p. 248-254.Paxinos G. and Watson C. The rat brain in stereotaxic coordinates. Second Edition. New York, Academic Press, 1986.Rakic P. Elusive radial glial cells: historical and evolutionary perspective. Glia, 2003, v. 43, № 1, p. 19-32.Shlosberg D., Patrick S. L., Buskila Y. and Amitai Y. Inhibitory effect of mouse neocortex layer I on the underlying cellular network. Eur. J. Neurosci., 2003, v. 18, p. 2751-2759.Wallraff A., Köhling R., Heinemann U. et al. The impact of astrocytic gap junctional coupling on potassium buffering in the hippocampus. J. Neurosci., 2006, v. 26, № 20, p. 5438-5447.Yuan A., Rao M. V., Veeranna and Nixon R. A. Neurofilaments at a glance. J. Cell Sci., 2012, v. 125, № 14, p. 3257-3263.