<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE root>
<article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" article-type="other" dtd-version="1.2" xml:lang="en"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">Morphology</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="en">Morphology</journal-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Морфология</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn publication-format="print">1026-3543</issn><issn publication-format="electronic">2949-2556</issn><publisher><publisher-name xml:lang="en">Eco-Vector</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="publisher-id">399495</article-id><article-id pub-id-type="doi">10.17816/morph.399495</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="en"><subject>Articles</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="ru"><subject>Статьи</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="article-type"><subject></subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="en">EARLY REACTIVE CHANGES OF MYELIN SHEATH IN THE AREA OF MYELIN SHEATH GAPS (NODES OF RANVIER) IN NERVE FIBERS (A SUPRAVITAL STUDY)</article-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>РАННИЕ РЕАКТИВНЫЕ ИЗМЕНЕНИЯ ОБЛАСТИ УЗЛОВЫХ ПЕРЕХВАТОВ МИЕЛИНОВОЙ ОБОЛОЧКИ НЕРВНЫХ ВОЛОКОН (ПРИЖИЗНЕННОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ)</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Sotnikov</surname><given-names>O S</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Сотников</surname><given-names>О С</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Лаборатория функциональной морфологии и физиологии нейрона (зав. - проф. О.С. Сотников); Институт физиологии им. И.П. Павлова РАН</p></bio><email>sotnikov@kolt.infran.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Kokurina</surname><given-names>T N</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Кокурина</surname><given-names>Т Н</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Лаборатория функциональной морфологии и физиологии нейрона (зав. - проф. О.С. Сотников); Институт физиологии им. И.П. Павлова РАН</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Solov'eva</surname><given-names>I A</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Соловьёва</surname><given-names>И А</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Лаборатория функциональной морфологии и физиологии нейрона (зав. - проф. О.С. Сотников); Институт физиологии им. И.П. Павлова РАН</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Sergeeva</surname><given-names>S S</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Сергеева</surname><given-names>С С</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Лаборатория функциональной морфологии и физиологии нейрона (зав. - проф. О.С. Сотников); Институт физиологии им. И.П. Павлова РАН</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name><surname>Sotnikov</surname><given-names>O S</given-names></name><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name><surname>Kokurina</surname><given-names>T N</given-names></name><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name><surname>Solovyiova</surname><given-names>I A</given-names></name><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name><surname>Sergeyeva</surname><given-names>S S</given-names></name><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff1"><aff><institution xml:lang="en"></institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">Институт физиологии им. И.П. Павлова РАН</institution></aff></aff-alternatives><aff id="aff2"><institution></institution></aff><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2011-09-15" publication-format="electronic"><day>15</day><month>09</month><year>2011</year></pub-date><volume>139</volume><issue>3</issue><issue-title xml:lang="en">NO3 (2011)</issue-title><issue-title xml:lang="ru">№3 (2011)</issue-title><fpage>46</fpage><lpage>50</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2023-05-09"><day>09</day><month>05</month><year>2023</year></date></history><permissions><copyright-statement xml:lang="en">Copyright ©; 2011, Eco-Vector</copyright-statement><copyright-statement xml:lang="ru">Copyright ©; 2011, Эко-Вектор</copyright-statement><copyright-year>2011</copyright-year><copyright-holder xml:lang="en">Eco-Vector</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="ru">Эко-Вектор</copyright-holder><ali:free_to_read xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/"/></permissions><self-uri xlink:href="https://j-morphology.com/1026-3543/article/view/399495">https://j-morphology.com/1026-3543/article/view/399495</self-uri><abstract xml:lang="en"><p>Using the inverted phase contrast microscope, the supravital study of structural dynamics of single myelin sheath gaps (nodes of Ranvier) of isolated frog myelin nerve fibers was performed after mechanical injury and in the medium with the decreased ion force under the conditions which induce, in electrophysiological experiments, the expression of the axolemmal K+-channels in the paranodal area. Videorecording has shown that within this area the myelin sheath stratification appeared that was associated with the swelling of Schwann cell cytoplasm enclosed in the terminal membranous loops of myelin. An increase of the degree of stratification of the lamellar myelin complexes make them invisible in the light microscope; therefore, it is not the translocation of the myelin sheath from the node cleft that is recorded, as many authors believed, but a shift of only the visible border of the compact, yet unstratified myelin sheath. Hence, the removal of myelin (demyelination) was absent, and the electrophysiological effect can be accounted for by a significant fall of electrical resistance in paranodal area as a result of swelling of terminal loops and stratification of the myelin sheath. Preparations examination also revealed a decrease of the axonal diameter in, which is proportional to swelling of the myelin sheath terminal parts. Since the outer fiber diameter did not change, it can be concluded that the process observed is the result of swelling of the Schwann cell cytoplasm due to the axoplasm water fraction which may be a peculiar process of axo-glial interactions.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="ru"><p>С помощью инвертированного фазово-контрастного микроскопа проведены прижизненные исследования структурной динамики одиночных узловых перехватов (Ранвье) изолированных миелиновых нервных волокон лягушки при механическом воздействии и в среде со сниженной ионной силой, в условиях, при которых в электрофизиологических опытах появляется экспрессия К+-каналов аксолеммы в паранодальной области. Видеосъемка показала, что в этой области, возникает расслоение миелиновой оболочки, связанное с набуханием цитоплазмы шванновских клеток, заключенной в концевых мембранных петлях миелина. Увеличение степени расслоения миелиновых пластинчатых комплексов делает их невидимыми под световым микроскопом, поэтому регистрируется не передвижение миелиновой оболочки от узловой щели, как полагают многие авторы, а смещение только видимой границы компактной, не расслоенной еще миелиновой оболочки. Следовательно, удаление миелина (демиелинизация) отсутствует, а электрофизиологический эффект может объясняться существенным падением электрического сопротивления в паранодальной области в результате набухания концевых мембранных петель и расслоения миелиновой оболочки. На препаратах отмечается также уменьшение диаметра аксона, которое пропорционально набуханию концевых отделов миелиновой оболочки. Так как наружный диаметр волокна не изменяется, можно заключить, что наблюдается процесс набухания цитоплазмы шванновской клетки за счет водной фракции аксоплазмы, своеобразный процесс аксоглиальных взаимодействий.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="en"><kwd>myelinated nerve fiber</kwd><kwd>myelin sheath gaps (nodes of Ranvier)</kwd><kwd>demyelination</kwd><kwd>K+-channels of nodes</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>миелиновое нервное волокно</kwd><kwd>узловой перехват (Ранвье)</kwd><kwd>демиелинизация</kwd><kwd>К+-каналы узлового перехвата</kwd></kwd-group></article-meta></front><body></body><back><ref-list><ref id="B1"><label>1.</label><mixed-citation>Каталымов Л.Л. и Сотников О.С. Геометрическая роль периаксонального пространства перехвата Ранвье миелинизированных нервных волокон. В кн.: Вестн. Ульяновск. гос. педагог. ун-та им. И.Н. Ульянова. Ульяновск, изд. Федерального агенства по образованию, 2008, вып. 4. с. 116-123.</mixed-citation></ref><ref id="B2"><label>2.</label><mixed-citation>Ревенко С.В., Сотников О.С. и Ходоров Б.И. Сравнительный анализ морфологических и физиологических характеристик перехвата Ранвье. Нейрофизиология, 1978, т. 10, № 4, с. 400-406.</mixed-citation></ref><ref id="B3"><label>3.</label><mixed-citation>Сотников О.С. Функциональная морфология живого мякотного нервного волокна. Л., Наука, 1976.</mixed-citation></ref><ref id="B4"><label>4.</label><mixed-citation>Сотников О.С. Статика и структурная кинетика живых асинаптических дендритов. СПб., Наука, 2008.</mixed-citation></ref><ref id="B5"><label>5.</label><mixed-citation>Chiu S.Y. and Ritchie J.M. Potassium channels in nodal and internodal axonal membrane of mammalian myelinaled fibres. Nature, 1980, v. 284, № 5752, p. 170-171.</mixed-citation></ref><ref id="B6"><label>6.</label><mixed-citation>Chiu S.Y. and Ritchie J.M. Evidence for the presence of potassium chanels in the paranodal region of acutely demyelinated mammalian single nerve fibres. J. Physiol., 1981, v. 313, p. 415-437.</mixed-citation></ref><ref id="B7"><label>7.</label><mixed-citation>Chiu S.Y. and Ritchie J.M. Evidence for the presence of potassium chanels in the internode of frog myelinated nerve fibres. J. Physiol., 1982, v. 322, p. 485-501.</mixed-citation></ref><ref id="B8"><label>8.</label><mixed-citation>Chiu S.Y., Ritchie J.M. On the physiological role of internodal potassium channels and the security of conduction in myelinated nerve fibres. Proc. R. Soc. Lond. B, Biol. Sci., 1984, v. 220, № 1221, p. 415-422.</mixed-citation></ref><ref id="B9"><label>9.</label><mixed-citation>Chiu S.Y. and Schwarz W. Sodium and potassium currents in acutely demyelinated internodes of rabbit sciatic nerves. J. Physiol., 1987, v. 391, p. 631-649.</mixed-citation></ref><ref id="B10"><label>10.</label><mixed-citation>Horakova M., Nonner W. and Stämpfli R. Action potentials and voltage clamp current of singl rat Ranvier nodes. Proc. 24 th Int. Congr. Physiol. Sci., 1968, p. 198.</mixed-citation></ref><ref id="B11"><label>11.</label><mixed-citation>Poliak S., Salomon D., Elhanany H. et al. Juxtaparanodal clustering of shaker-like K+ channels in myelinated axons depends on Caspr 2 and TAG1. J. Cell Biol., 2003, v. 162, № 6, p. 1149-1160.</mixed-citation></ref><ref id="B12"><label>12.</label><mixed-citation>Sherman D.L., Taif S., Johnson R. et al. Neurofascins are required to establish axonal domains for salutatory conduction. Neuron, 2005, v. 48, № 5, p. 737-742.</mixed-citation></ref><ref id="B13"><label>13.</label><mixed-citation>Shrager P., Chiu S. Y., Ritchie J.M. et al. Optical recording of action potential propagation in demyelinated frog nerve. J. Biophys., 1987, v. 51, № 2, p. 351-355.</mixed-citation></ref><ref id="B14"><label>14.</label><mixed-citation>Susuki K., Baba H., Tohyama K. et al. Gangliosides contribute to stability of paranodal junctions and ion channel clusters in myelinated nerve fibers. Glia, 2007, v. 55, № 7, p. 746-757.</mixed-citation></ref><ref id="B15"><label>15.</label><mixed-citation>Zhang C.L., Ho P.L., Kintner D.B. et al. Activity-dependent regulation of mitochondrial motility by calcium and Na/K-ATPase at nodes of Ranvier of myelinated nerves. J. Neurosci., 2010, v. 30, № 10, p. 3555-3566.</mixed-citation></ref><ref id="B16"><label>16.</label><mixed-citation>Zhou L., Zhang C.L., Messing A. and Chiu S.Y. Temperaturesensitive neuromuscular transmission in Kv1. 1 nul mice: role potassium channels under the myelin sheath in young nerves. J. Neurosci., 1998, v. 18, № 18, p. 7200-7215.</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>
