MorphologyMorphologyМорфология1026-35432949-2556Eco-Vector40246610.17816/morph.402466ArticlesСтатьиSatellite cells of the sensory neurons after different types of sciatic nerve trauma in ratКлетки-сателлиты чувствительных нейронов после различных типов травм седалищного нерва крысыARKHIPOVAS SАРХИПОВАС С

Лаборатория микроскопии; Казанский институт биохимии и биофизики РАН; RAS Kazan Institute of Biochemistry and Biophysics

Лаборатория микроскопии; Казанский институт биохимии и биофизики РАН

svetlanaarkhipva@rambler.ruRAGINOVI SРАГИНОВИ С

кафедра гистологии, цитологии и эмбриологии; Казанский государственный медицинский университет; Kazan State Medical University

кафедра гистологии, цитологии и эмбриологии; Казанский государственный медицинский университет

MUKHITOVA RМУХИТОВА Р

Лаборатория микроскопии; Казанский институт биохимии и биофизики РАН; RAS Kazan Institute of Biochemistry and Biophysics

Лаборатория микроскопии; Казанский институт биохимии и биофизики РАН

CHELYSHEVYu AЧЕЛЫШЕВЮ А

кафедра гистологии, цитологии и эмбриологии; Казанский государственный медицинский университет; Kazan State Medical University

кафедра гистологии, цитологии и эмбриологии; Казанский государственный медицинский университет

RAS Kazan Institute of Biochemistry and BiophysicsКазанский институт биохимии и биофизики РАНKazan State Medical UniversityКазанский государственный медицинский университет150920091353NO3 (2009)№3 (2009)293410052023Copyright ©; 2009, Eco-VectorCopyright ©; 2009, Эко-Вектор2009Eco-VectorЭко-Векторhttps://j-morphology.com/1026-3543/article/view/402466

The reaction of satellite cells (SC) and the changes in their numbers were studied in rat lumbar dorsal root ganglia using the models of sciatic nerve crush, transection and ligation. After the nerve transection, the neurons surrounded by two layers of SC were found. This was accompanied by the increased SC branch thickness and contact area due to invaginations into neuronal perikarya. After the nerve ligation, both SC and their branches were found to form several closely adjacent layers around the part of the large and medium neurons, the area of SC contact with the perikarya of neurons of these populations was increased due to more developed invaginations, there appeared the multilamellar structures in SC cytoplasm and the contacts with the branches of SC, which surrounded the neighboring neurons. The most pronounced increase in SC numbers was demonstrated after the nerve ligation. After the nerve transection, the numbers of small and medium neurons, surrounded by vimentin-positive SC, was increased. At the same time, the number of large neurons surrounded by these cells, was decreased. At all time intervals after the nerve ligation, all the neurons in the ganglia studied were surrounded by vimentin-positive SC. Post-traumatic changes in structure and numbers were different in SC, associated with specific populations of sensory neurons and depended on type of afferent conductor injury.

На моделях передавливания, перерезки и лигирования седалищного нерва крысы изучена реакция и изменения количества клеток-сателлитов (КС) в спинномозговых узлах поясничного отдела. После перерезки нерва выявлены нейроны, окруженные двумя слоями КС. При этом увеличиваются толщина отростков КС и площадь их контактов за счет инвагинаций в перикарионы нейронов. После лигирования нерва КС и их отростки располагаются вокруг части больших и средних нейронов в несколько плотно прилегающих слоёв, увеличивается площадь контакта КС с перикарионами нейронов этих популяций за счёт более развитых инвагинаций, появляются ламеллярные структуры в цитоплазме КС, а также контакты с отростками КС, окружающих соседние нейроны. Наибольшее увеличение количества КС обнаружено при лигировании нерва. После перерезки нерва увеличивается количество малых и средних нейронов, окруженных виментин-позитивными КС. При этом количество больших нейронов, окруженных такими клетками, уменьшается. Во все сроки после лигирования нерва все нейроны исследованных узлов окружены виментин-позитивными КС. Посттравматические изменения в структуре и количестве различаются у КС, ассоциированных с чувствительными нейронами конкретных популяций и зависят от вида травмы афферентных проводников.

dorsal root ganglionsatellite cellsneuronsnerve regenerationvimentinспинномозговой узелклетки-сателлитынейронырегенерация нервавиментинАлександровская М.М., Бразовская Ф.А., Гейнисман Ю.А. и др. Морфологическая перестройка нейроглии в условиях усиленного функционирования нервных центров. Докл. АН СССР, 1968, т. 180, вып. 3, с. 719-725.Рагинов И.С., Вафин А.Ю., Хафизьянова Р.Х. и Челышев Ю.А. Влияние лекарственных препаратов ксимедон и ноотропил на регенерацию периферического нерва. Рос. морфол. ведомости, 1997, №1(6), с. 120-126.Рагинов И.С. и Челышев Ю.А. Посттравматическое выживание чувствительных нейронов различных субпопуляций. Морфология, 2003, т. 124, вып. 4, с. 47-50.Ройтбак А.И. Глия и ее роль в нервной деятельности. СПб., Наука, 1993.Челышев Ю.А. и Сайткулов К.И. Развитие, фенотипическая характеристика и коммуникации шванновских клеток. Успехи физиол. наук, 2000, т. 31, с. 54-69.Arvidsson J. and Ygge J. A quantitative study of the effects of neonatal capsaicin treatment and of subsequent peripheral nerve transection in the adult rat. Brain Res., 1986, v. 5397, № 1, p. 130-136.Hanani M., Huang T.Y., Cherkas P.S. et al. Glial cell plasticity in sensory ganglia induced by nerve damage. Neuroscience, 2002, v. 114, № 2, p. 279-283.Henken D., Battisti W., Chesselet M. et al. Expression of bb-preprotachykinin mRNA and tachykinins in rat dorsal root ganglion cells following peripheral or central axotomy. Neuroscience, 1990, v. 39, № 3, p. 733-742.Lawson S. Morphological and biochemical cell types of sensory neurons. In: Sensory Neurons: Diversity, Development, Plasticity. New York, Oxford Univ. Press, 1992, p. 27-59.Neuberger T.J. and Cornbrooks C.J. Transient modulation of Schwann cell antigens after peripheral nerve transection and subsequent regeneration. J. Neurocytol., 1989, v. 18, p. 695-710.Pannese E., Ledda M., Cherkas P.S. et al. Satellite cell reactions to axon injury of sensory ganglion neurons: increase in number of gap junctions and formation of bridges connecting previously separate perineuronal sheaths. Anat. Embryol. (Berl.), 2003, v. 206, № 5, p. 337-347.Ockleford C.D., Hsi B.L., Wakely J. et al. Propidium iodide as a nuclear marker in immunofluorescence I. Use with tissue and cytoskeleton studies. J. Immunol. Methods, 1981, v. 43, p. 261-267.Perry V., Brown M. and Andersson P. Macrophage responses to central and peripheral nerve injury. Adv. Neurol., 1993, v. 59, p. 309-314.Ramer M., Priestley J. and McMahon S. Functional regeneration of sensory axons into adult spinal cord. Nature, 2000, v. 403, p. 312-316.Shinder V., Amir R. and Devor M. Cross-excitation in dorsal root ganglia does not depend on close cell-to-cell apposition. Neuroreport, 1998, v. 9, № 18, p. 3997-4000.Thippeswamy T., McKay J.S., Morris R. et al. Glial-mediated neuroprotection: evidence for the protective role of the NO-cGMP pathway via neuron-glial communication in the peripheral nervous system. Glia, 2005, v. 49, № 2, p. 197-210.Thippeswamy T., McKay J. and Morris R. Bax and caspases are inhibited by endogenous nitric oxide in dorsal root ganglion neurons in vitro. Eur. J. Neurosci., 2001, v. 14, № 8, p. 1229-1236.Thippeswamy T. and Morris R. The roles of nitric oxide in dorsal root ganglion neurons. Ann. N. Y. Acad. Sci., 2002, v. 962, p. 103-110.Vega J., Rodriguez C., Medina M. et al. Expression of cytoskeletal proteins in glial cells of dorsal root ganglia. Cell Mol. Biol., 1989, v. 35, № 6, p. 635-641.Wyatt T.A., Lincoln T.M. and Pryzwansky K.B. Vimentin is transiently co-localized with and phosphorylated by cyclic GMP-dependent protein kinase in formyl-peptide-stimulated neutrophils. J. Biol. Chem., 1991, v. 266, № 31, p. 21274-21280.