ОСОБЕННОСТИ ТОПОГРАФИИ И ИЗМЕНЕНИЯ ЦИТОАРХИТЕКТОНИКИ ПОЛЯ X СПИННОГО МОЗГА В ПОСТНАТАЛЬНОМ ОНТОГЕНЕЗЕ КРЫСЫ



Цитировать

Полный текст

Аннотация

Цель - изучение возрастных изменений топографии и цитоархитектоники поля X спинного мозга крысы на разных этапах постнатального онтогенеза. Материал и методы. Материал исследования составили кусочки спинного мозга, взятые на уровне 2-го грудного сегмента у 65 самок крыс Вистар в возрасте 3, 5, 7, 10, 15, 20, 30, 60, 90, 120, 150, 180 и 360 сут (по 5 особей в каждой возрастной группе). С использованием гистологических методов на криостатных тангенциальных срезах спинного мозга толщиной 14 мкм, окрашенных тионином по Нисслю, изучали возрастные изменения площади поля X, общего числа нейронов в его составе на срезе, а также плотности нейронов в области центрального канала, дорсальной и вентральной серых спаек. Результаты. Поле X на поперечном срезе грудного сегмента спинного мозга четко идентифицируется у крыс в возрасте 3 сут. Установлено, что в постнатальном развитии крысы площадь поля X, в целом, уменьшается за счет снижения размеров дорсальной серой спайки, несмотря на увеличение площади вентральной спайки, наблюдаемом у крыс старше 20 сут. Синхронно с уменьшением площади поля Х наблюдается уменьшение общего числа нейронов в его составе на срезе. Плотность нейронов уменьшается к 7-м суткам в окружности центрального канала, к 10-м суткам - в дорсальной серой спайке, к 20-м суткам - в области вентральной серой спайки. У крыс старше 20 сут плотность нейронов в зоне центрального канала и вентральной серой спайки не изменяется, а в дорсальной серой спайке вновь увеличивается к 240-м суткам, достигая показателей 7-суточных крыс. Выводы. Площадь поля X и отдельных его областей, а также общее число и плотность нейронов на срезе неоднозначно изменяются на разных этапах постнатального онтогенеза. Данные представляют интерес для изучения изменений уровневой организации серого вещества спинного мозга в постнатальном онтогенезе.

Полный текст

Введение. Топографически поле X не укладывается в представления о пластинчатом строении серого вещества спинного мозга (СМ). Оно относится к центральным структурам СМ, включая вентральную и дорсальную серые спайки. Данные литературы [2, 11, 13, 14] и результаты собственных исследований [4, 16] свидетельствуют о гетерогенности интернейронов поля Х по форме клеточных тел и направленности отростков, что, очевидно, связано с их функциональными характеристиками. В поле Х выделяют центральное автономное ядро, локализованное в дорсальной серой спайке [10]. В окружности центрального канала, эпендимной оболочке и зонах облитерации центрального канала у человека и животных (кролик, кошка, собака) обнаружены псевдоуниполярные нейроны [2], которые по форме и функции, возможно, являются чувствительными нейронами, осуществляющими взаимодействие с нервными центрами спинного мозга. Отсутствие данных об особенностях строения поля X в процессе постнатального развития указывает на необходимость уточнения его возрастных гистотопографических характеристик. Является актуальным не только изучение уровневой принадлежности, но и пространственного расположения структур серого вещества СМ в области поля Х. Цель настоящей работы - изучение возрастных изменений топографии и цитоархитектоники поля X спинного мозга крысы на разных этапах постнатального онтогенеза. Материал и методы. Материал исследования составили кусочки спинного мозга, взятые на уровне 2-го грудного сегмента у 65 самок крыс Вистар в возрасте 3, 5, 7, 10, 15, 20, 30, 60, 90, 120, 150, 180 и 360 сут (по 5 особей в каждой возрастной группе). Исследование одобрено решением этического комитета ФГБОУ ВО «Ярославский государственный медицинский университет» Минздрава России от 21.02.2019 г., протокол № 29. Выведение животных из эксперимента осуществляли под уретановым наркозом (3 г/кг внутрибрюшинно) путем транскардиальной перфузии раствора стандартного фоcфатно-cолевого буфеpа (PBS, 0,01М, pH 7,4) (БиолоТ, Россия), затем 4 % pаcтвоpа паpафоpмальдегида (Sigma, США) на PBS. Для исследования использованы Тh2-сегменты СМ, которые дополнительно фиксировали в 4 % растворе параформальдегида на PBS в течение 2 ч при 4 ºС. На криостате Shandon E (Thermo Scientific, Великобритания) готовили тангенциальные серийные срезы толщиной 14 мкм. Для исследования использовали методику окраски нервных клеток тионином по Нисслю с последующим заключением в бальзам. Для анализа использовали 10 срезов от сегмента СМ каждого животного. Препараты просматривали с помощью микроскопа Олимпус BX43 (Olympus Corporation, Япония). Изображения получали посредством цифровой видеокамеры TСC-5.0ICE (Tucsen, Китай). На срезах (об. 10) изучали топографию серого вещества СМ. Определяли положение поля X во 2-м грудном сегменте у крысы [13]. К полю X непосредственно относятся дорсальная и вентральная серые спайки - тонкие прослойки серого вещества, пересекающие срединную линию у центрального канала. Поле X также включает серое вещество в окружности центрального канала. В связи с этим в поле X топографически нами были выделены правая и левая центральные части - области серого вещества, расположенные латерально от центрального канала. Они ограничены вентрально и дорсально соответствующими серыми спайками, а латерально - VII пластинкой. На срезах (об. 20) проводили подсчет интернейронов, расположенных в выделенных областях поля X. Подсчету подлежали интернейроны в случае, если срез проходил через ядро с видимым ядрышком. С помощью программы Image J (NIH, США) на поперечном срезе СМ измеряли площадь каждой области поля X. Вычисление плотности нейронов производили, определяя отношение числа нервных клеток к площади конкретной области, вычисляя число нейронов на стандартной площади среза в 0,001 мм2. Для определения средних величин и стандартных ошибок использовали программу Statistica, версия 10.0 (StatSoft, Inc., 2011). Учитывая, что полученные выборки были разного объема, для детального поиска различий в исследовании применяли анализ вариаций ANOVA и критерий Тьюки Рost-hoc-анализа. Результаты исследования. В возрасте 3 сут на тангенциальном срезе серого вещества СМ отчетливо визуализируются следующие части: дорсальный рог, вентральный рог, промежуточная зона и структуры вокруг центрального канала - вентральная и дорсальная серые спайки, которые входят в состав поля Х (рисунок). Поле X состоит из мелких веретеновидных, овоидных, треугольных и многоугольных интернейронов, отличающихся от нейронов рядом расположенных пластинок IV, V, VII, VIII и промежуточно-медиального ядра с более мелкими размерами и кучностью расположения вокруг центрального канала. В дорсовентральном направлении граница поля X проходит латеральнее центрального канала, смежно с пластинкой VII промежуточной зоны, пластинкой V дорсального рога и дорсально - с пластинкой IV дорсального рога СМ. В дорсальной серой спайке поля X вентральнее одиночных клеток пластинки IV определяется скопление интернейронов веретеновидной, овоидной и треугольной формы с преимущественной поперечной ориентацией отростков. В вентральной серой спайке интернейронов меньше, форма и ориентация их отростков различные. У крыс в возрасте 3 сут и позднее область расположения и цитоархитектоника поля X не изменяются. От 3-х до 15-х суток на срезах СМ видна значительная протяженность поля X в дорсовентральном направлении. На этом возрастном промежутке большую часть поля X занимает область дорсальной серой спайки. Гистологический анализ подтверждается числовыми данными, приведенными для каждой из областей, формирующих поле X (табл.1). Так, у крыс в возрасте 3 сут наибольшую площадь имеет дорсальная серая спайка, а площадь других областей поля X примерно одинакова. На ранних сроках постнатального онтогенеза от 3-х до 15-х суток происходит увеличение площади дорсальной серой спайки, позднее - её уменьшение к 20-, 60-, 90-ми 240-м суткам. Площадь вентральной серой спайки изменяется иначе: с 3-х по 15-е сутки уменьшается, ак 20-, 60-ми 90-м суткам увеличивается. Показатели центральных частей значимо не различаются, их возрастная динамика заключается в первоначальном уменьшении площади к 15-м суткам, затем увеличении к 20-м суткам и уменьшении к 60-м и 180-м суткам. Подсчет числа нейронов на срезе в пределах всей площади поля X показал, что к 7-, 10-, 15-м и 20-м суткам отмечается постепенное уменьшение этого показателя (табл.2). Плотность интернейронов изменяется к 7-м суткам за счет уменьшения в 2 раза этого показателя в центральных частях поля Х. К 10-м суткам отмечается уменьшение плотности нейронов в дорсальной серой спайке. В вентральной серой спайке до 15-х суток плотность нейронов не изменяется, а к 20-м суткам значительно уменьшается, продолжая снижаться, вплоть до 90-х суток. С 30-х суток общее число нейронов на всей площади поля X уменьшается, а плотность нейронов стабилизируется и значимо не меняется до конца наблюдения. Обсуждение полученных данных. В результате проведенного исследования установлено, что в постнатальном онтогенезе отмечается уменьшение площади поля X СМ крысы, уменьшение числа нейронов и их плотности. При этом возрастные микроструктурные изменения в поле Х имеют региональные различия. В дорсальной серой спайке к 10-м суткам отмечается уменьшение плотности нейронов при увеличении ее площади, с 20-х суток и позднее - уменьшение площади дорсальной серой спайки и увеличение плотности нейронов. Уменьшение площади вентральной серой спайки к 15-м суткам не сопровождается изменением плотности нейронов, к 20-м суткам отмечается уменьшение плотности нейронов при увеличении площади вентральной серой спайки к 180-м суткам. Однонаправленное уменьшение к 7-м суткам плотности нейронов и площади центральных областей поля X позднее сменяется разнонаправленными изменениями: увеличением плотности нейронов и уменьшением площади этих областей к 10-м и 15-м суткам, вновь однонаправленным снижением показателей к 20-м суткам и их стабилизацией на более поздних сроках постнатального развития. Известно, что на раннем этапе постнатального развития объем серого вещества спинного мозга увеличивается более интенсивно по сравнению с белым [3, 6]. После рождения также отмечается более активный рост грудного отдела спинного мозга по сравнению с другими отделами [1]. Наблюдаемое нами уменьшение площади поля X и общего числа нейронов всего поля X на срезе, возможно, связано с постнатальным удлинением грудных сегментов спинного мозга [1]. В различных частях поля X возрастные изменения происходят неоднозначно, при этом наиболее значимые изменения происходят на 20-е сутки жизни крысы. Мы предполагаем, что у крысы существуют 2 этапа, в течение которых наблюдается уменьшение числа нейронов в сером веществе спинного мозга. Первый этап наступает в период нейрогенеза, не связан с формированием синапсов [12] и наблюдается в пролиферативных зонах конечного мозга в течение I триместра беременности [18]. Второй этап связан с дифференцировкой клеток, синаптогенезом и наблюдается в раннем постнатальном периоде в спинном мозгу у новорожденных мышат [15] и до 10-14-х суток жизни у крысят [7]. На этом этапе также наблюдаются сокращение числа и изменение структуры синапсов в грудном отделе спинного мозга крысы [8, 9]. Также уменьшение числа нейронов в раннем постнатальном онтогенезе, возможно, связано с высокой активностью глутаматных рецепторов, которые запускают гибель нейронов [17]. Уменьшение числа нейронов в зрелом возрасте, возможно, является следствием действия факторов, вызывающих деструкцию нейронов [5]. Заключение. С учетом многочисленности немиелизированных волокон, проходящих контралатерально из одной половины серого вещества спинного мозга в другую через промежуточное вещество, можно предположить, что структурные преобразования поля Х связаны с возрастными изменениями интегративно-координационной функции промежуточного вещества СМ, характерной для млекопитающих [4, 10, 11, 13, 14, 16]. Источник финансирования. Работа выполнена при поддержке Российского фонда фундаментальных исследований (грант 17-04-00349-а). Вклад авторов: Концепция и дизайн исследования: А. Д. Н. Сбор и обработка материала: В. В. П. Статистическая обработка данных: В. В. П. Анализ и интерпретация данных: В. В. П. Написание текста: В. В. П. Авторы сообщают об отсутствии в статье конфликта интересов.
×

Об авторах

Валентина Вячеславовна Порсева

Ярославский государственный медицинский университет

Email: vvporseva@mail.ru
150000, г. Ярославль, ул. Революционная, 5

Александр Данилович Ноздрачев

Санкт-Петербургский государственный университет

кафедра общей физиологии 199034, Санкт-Петербург, Университетская наб., 7-9

Список литературы

  1. Бурдей Г. Д. Спинной мозг. Саратов: Изд-во Саратовск. ун-та, 1984. 236 с.
  2. Мотавкин П. А., Черток В. М. Иннервация мозга // Тихоокеанский медицинский журнал. 2008. № 3. С. 11-23.
  3. Писалева С. Г. Возрастные изменения морфологии серого и белого вещества спинного мозга собаки // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. 2013. № 3(23). С. 90-94.
  4. Порсева В. В., Шилкин В. В. Нейроны пластинки X спинного мозга // Тихоокеанский медицинский журнал. 2016. № 4. С. 5-10.doi: 10.17238/PmJ1609-1175.2016.4.5-10
  5. Ситникова Е. Ю., Егорова Т. Н., Раевский В. В. Уменьшение плотности нейронов в компактной части черной субстанции коррелирует с низкой пик-волновой активностью у крыс линии WAG/Rij // Журнал высшей нервной деятельности. 2012. Т. 62, № 5. С. 619-628.
  6. Фасахутдинова А. Н., Симанова Н. Г., Хохлова С. Н. Морфогенез спинного мозга кролика // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н. Э. Баумана. 2015. Т. 222, № 2. С. 229-234.
  7. Bardoni R., Magherini P. C., MacDermott A. B. NMDA EPSCs at Glutamatergic Synapses in the Spinal Cord Dorsal Horn of the Postnatal Rat // J. Neurosci. 1998. Vol. 18, № 16. P. 6558-6567.
  8. Chung K., Coggeshall R. E. The postnatal development of the tract of Lissauer in the rat // J. Comp. Neurol. 1984. Vol. 229, № 4. P. 471-475. doi: 10.1002/cne.902290403
  9. Cummings J. P., Stelzner D. J. Prenatal and postnatal development of lamina IX neurons in the rat thoracic spinal cord // Exp. Neurol. 1984. Vol. 83, № 1. P. 155-166.
  10. Deuchars S. A., Milligan C. J., Stornetta R. L., Deuchars J. J. GABA ergic neurons in the central region of the spinal cord: a novel sub strate for sympathetic inhibition // Neurosci. 2005. Vol. 25, № 5. P. 1063-1070. doi: 10.1523/JNEUROSCI.3740-04.2005
  11. Grant G., Koerber R. H. Spinal Cord Cytoarchitecture. In: The Rat Nervous System / Paxinos G. (Eds) // Elsevier Academic Press. 2004. P. 129-148.
  12. Lossi L., Merighi A. In vivo cellular and molecular mechanisms of neuronal apoptosis in the mammalian CNS // Prog. Neurobiol. 2003. Vol. 69, № 5. P. 287-312.
  13. Molander C., Xu Q., Rivero-Melian C., Grant G. Cyto architectonic organization of the spinal cord in the rat: II. The cervical and upper thoracic cord // J. Comp. Neurol. 1989. Vol. 289, № 3. P. 375-385. doi: 10.1002/cne.902890303
  14. Sengul G., Puchalski R. B., Watson C. Cytoarchitecture of the spinal cord of the postnatal (P4) mouse // Anat. Rec. (Hoboken). 2012. Vol. 295, № 5. P. 837-845. doi: 10.1002/ar.22450
  15. Prasad T.A., Wang X., Gray P.A., Weiner J. A. A differential, developmental pattern of spinal interneuron apoptosis during synaptogenesis: Insights from genetic analyses of the protocadherin-γ gene cluster // Development. 2008. Vol. 135, № 24. P. 4153-4164. doi: 10.1242/dev.026807
  16. Porseva V. V., Shilkin V. V., Krasnov I. B., Masliukov P. M. Calbindin-D28k immunoreactivity in the mice thoracic spinal cord after space flight // Int. J. Astrobiol. 2015. Vol. 14, № 4. P. 555-562. doi: 10.1017/S1473550415000130
  17. Punnakkal P., C. von Schoultz, Haenraets K., Wildner H., Zeilhofer H. U. Morphological, biophysical and synaptic properties of glutamatergic neurons of the mouse spinal dorsal horn // Physiol. 2014. Vol. 592, № 4. P. 759-776. doi: 10.1113/ jphysiol.2013.264937
  18. Zecevic N., Hu F., Jakovcevski I. Cortical interneurons in the developing human neocortex // Dev. Neurobiol. 2011. Vol. 71, № 1. P. 18-33. doi: 10.1002/dneu.20812

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Порсева В.В., Ноздрачев А.Д., 2019

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: № 0110212 от 08.02.1993.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах