НЕЙРОЭПИТЕЛИАЛЬНЫЕ ТЕЛЬЦА ЛЕГКОГО У КРЫСЫ
- Авторы: Сырцова М.А.1, Сухорукова Е.Г.1, Коржевский Д.Э.1
-
Учреждения:
- Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины СЗО РАМН
- Выпуск: Том 145, № 1 (2014)
- Страницы: 60-62
- Раздел: Статьи
- Статья получена: 09.05.2023
- Статья опубликована: 15.02.2014
- URL: https://j-morphology.com/1026-3543/article/view/398731
- DOI: https://doi.org/10.17816/morph.398731
- ID: 398731
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Ключевые слова
Полный текст
Нейроэпителиальные тельца (НЭТ) — особые рецепторные структуры в эпителии бронхов, которые были открыты в конце 30-х годов ХХ в. [11]. Несмотря на длительную историю исследования, функции НЭТ остаются не вполне понятными. Предполагают, что главная из них — анализ газового состава воздуха и участие в физиологическом изменении функции легких в ответ на изменение качественного состава вдыхаемого воздуха [1, 9]. До настоящего времени сохраняется неопределенность и в вопросах структурной организации НЭТ, а также в классификации нейроэндокринных элементов легкого. Несмотря на предполагаемую существенную роль НЭТ в системе нормальной регуляции функции легких, их изучению посвящено крайне мало исследований, что, по-видимому, объясняется невозможностью их идентификации при использовании обзорных и специальных методов окраски препаратов, применяемых для изучения строения легких в норме и патологии. Цель данной работы — выявление НЭТ в легком у крысы и определение их клеточной организации. Материал и методы. Исследование проведено на 12 половозрелых крысах-самцах линии Вистар. Содержание животных и все экспериментальные манипуляции осуществляли с учетом «Правил проведения работ с использованием экспериментальных животных» (приказ № 755 от 12.08.1977 г. МЗ СССР). Морфологическому исследованию подвергали легкие интактных крыс. Материал фиксировали в цинк-этанол-формальдегиде [4], обезвоживали и заливали в парафин обычным способом. НЭТ выявляли при помощи реакции на синаптофизин [2]. Срезы депарафинировали, перед постановкой иммуноцитохимической реакции проводили тепловое демаскирование антигена. Для блокирования эндогенной пероксидазы использовали 3% водный раствор перекиси водорода (10 мин). Блокирование неспецифически связанных антител проводили в блокирующем растворе Protein Block (Springbio, США) в течение 10 мин. Для выявления НЭТ использовали мышиные моноклональные антитела (SY38) к синаптофизину (разведение 1:30, Dako, Дания) и вторичные антитела, конъюгированные с полимером и пероксидазой (EnVision + System Labelled Polymer-HRP Anti-Mouse, Dako, Дания). Визуализацию продукта иммуноцитохимической реакции проводили с использованием 3,3-диаминобензидин-тетрагидрохлорида (DAB+, Dako, Дания). Часть срезов после постановки реакции докрашивали либо альциановым синим, либо гематоксилином. Препараты обезвоживали в этаноле и изопропаноле, просветляли в ксилоле и заключали в Cytоseal 60 (Thermo scientific, США) [3]. Определяли долю НЭТ, содержащих различное количество клеток. Результаты исследования. При проведении реакции на синаптофизин НЭТ были обнаружены у всех исследуемых животных. На полученных препаратах НЭТ выглядели как группы клеток, интенсивно окрашенные хромогеном в коричневый цвет (рисунок), реже они были представлены единичными клетками, расположенными в составе однослойного кубического эпителия мелких бронхов и респираторных бронхиол. Клетки в составе НЭТ имели овальную форму с отчетливо различимым ядром, в области которого продукт иммуноцитохимической реакции отсутствовал. НЭТ встречались от 2 до 6 на срезе легкого, захватывающего все его доли. Рядом с большинством НЭТ располагались синаптофизин-иммунопозитивные терминали (СФИТ). Встречались также НЭТ, не имеющие подходящих к ним СФИТ. Были обнаружены и единичные синаптофизин-иммунопозитивные клетки, находившиеся в составе однослойного эпителия малых бронхов. В ряде случаев встречались единичные клетки в составе эпителиального пласта, которые в отличие от клеток НЭТ были смещены к его базальной части. Количество клеток в обнаруженных НЭТ варьировало. Большее число НЭТ (45%) состояло из 5–10 клеток; 40% содержали 10–20 клеток; 8% — 2–5 и 7% — имели единичные синаптофизин-иммунопозитивные клетки. Помимо НЭТ, были обнаружены СФИТ, которые преимущественно локализовались в мышечной оболочке бронхов и по ходу кровеносных сосудов. Обсуждение полученных данных. В результате проведенного исследования установлено, что НЭТ содержатся в однослойном кубическом реснитчатом эпителии бронхиол. В отличие от других клеток, их клетки немного выступают над поверхностью эпителия, и обычно их ядра не смещены к базальной части эпителиального пласта. Единичные синаптофизин-иммунопозитивные клетки были смещены к базальной части эпителиального пласта и, по-видимому, являются не рецепторными структурами, а элементами диффузной нейроэндокринной системы легких, которые регистрируются и другими методами [8]. В нашем исследовании использовалось иммуногистохимическое выявление синаптофизина с помощью специфических моноклональных антител [2]. Синаптофизин является главным интегральным белком мембран синаптических пузырьков нейронов нервной системы [12], таким образом, он участвует в регуляции и осуществлении синаптической передачи. Поэтому его присутствие в клетках свидетельствует о их принадлежности к нервным или нейроэндокринным элементам. Это объясняет причину того, почему в полученных препаратах одновременно окрашивались НЭТ, отдельные нейроэндокринные клетки и СФИТ. По данным литературы, афферентную иннервацию НЭТ осуществляют 3 типа терминалей. Первый тип — это нервные волокна блуждающего нерва, берущие начало в узловатом ганглии; второй — афферентные волокна спинального происхождения которых формируют сплетение под НЭТ, не проникая между эпителиальными клетками; третий — нитроергические волокна [5, 9]. Реакция на синаптофизин не является селективной по отношению к отдельным медиаторам и выявляет все терминали, что способствует ее широкому использованию при исследовании эфферентной иннервации различных органов [6, 7]. Таким образом, НЭТ в легком у крысы являются постоянно присутствующими элементами. В отличие от диффузных нейроэндокринных элементов, для них характерно групповое расположение клеток. Взаимодействие НЭТ и СФИТ не является постоянной комбинацией, что свидетельствует об отсутствии эфферентной иннервации у части телец.Об авторах
Марина Александровна Сырцова
Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины СЗО РАМН
Email: marina.syrczova@mail.ru
лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы, отдел общей и частной морфологии 197376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, 12
Елена Геннадьевна Сухорукова
Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины СЗО РАМН
Email: len48@inbox.ru
лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы, отдел общей и частной морфологии 197376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, 12
Дмитрий Эдуардович Коржевский
Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины СЗО РАМН
Email: dek2@yandex.ru
лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы, отдел общей и частной морфологии 197376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, 12
Список литературы
- Евсюкова Е. В. Нейроэндокринная система легких человека. Физиология человека, 2006, т. 32, вып. 4, с. 121–130.
- Кирик О. В., Ворончихин П. А., Чумасов Е. И. и Коржевский Д. Э. Применение реакции на синаптофизин для выявления нейроэпителиальных телец лёгкого крысы. В кн.: Бабухинские чтения в Орле. М., Изд-во ЗАО «Ретиноиды», 2011, вып. 32, с. 70–71.
- Коржевский Д. Э., Кирик О. В., Карпенко М. Н. и др. Теоретические основы и практическое применение методов иммуногистохимии. СПб., СпецЛит, 2012.
- Коржевский Д. Э., Сухорукова Е. Г., Гилерович Е. Г. и др. Преимущества и недостатки цинк-этанол-формальдегида как фиксатора для иммуноцитохимических исследований и конфокальной лазерной микроскопии. Морфология, 2013, т. 144, вып. 2, с. 81–85.
- Филиппова Л. В. и Ноздрачев А. Д. Сенсорные структуры легких и воздухоносных путей. Бюл. сибирской медицины, 2011, т. 10, вып. 3, с. 100–104.
- Чумасов Е. И., Петрова Е. С. и Коржевский Д. Э. Иммуноморфологический анализ иннервации хромаффинных параганглиев артерий и сердца млекопитающих. Журн. эволюц. биохим., 2011, № 4, с. 325–331.
- Чумасов Е. И., Петрова Е. С. и Коржевский Д. Э. Распределение и структурная организация нервных аппаратов в поджелудочной железе крысы. Морфология, 2011, т. 139, вып. 3, с. 51–58.
- Brouns I., Oztay F., Pintelon I. et al. Neurochemical pattern of the complex innervation of neuroepithelial bodies in mouse lungs. Histochem. Cell Biol., 2008, v. 132, № 2, p. 34–42.
- Brouns I., Van Genechten J., Scheuermann D. W. et al. Neuroepithelial bodies: a morphologic substrate for the link between neuronal nitric oxide and sensitivity to airway hypoxia? J. Comp. Neurol., 2002, v. 449, p. 343–354.
- Cutz E., Pan J., Yeger H. et al. Recent advances and controversies on the role of pulmonary neuroepithelial bodies as airway. Semin. Cell Dev. Biol., 2012, v. 24, p. 40–50.
- Feyrter F. Über diffuse endokrine epitheliale Organe. Zbl. Inn. Med., 1938, Bd. 545, S. 31–32.
- Hannah M. J., Schmidt A. F. and Huttner W. B. Synaptic vesicle biogenesis. Annu. Rev. Cell Dev. Biol., 1999, v. 15, p. 733–798.
Дополнительные файлы
