Коррекция ошибок, возникающих при синтезе фрагментов ДНК, с использованием эндонуклеазы V из Thermotoga maritima

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Одной из проблем при синтезе фрагментов ДНК de novo является возникновение ошибок. Количество ошибок, связанных с протоколами синтеза, ограничивает эффективность получения синтетических фрагментов ДНК как в малых, так и в больших масштабах. В данной работе мы предлагаем новый быстрый протокол получения синтетических фрагментов ДНК с использованием термостабильной эндонуклеазы V из Thermotoga maritima (Tma-эндонуклеаза) в качестве фермента для коррекции ошибок. Цель исследования – разработка методики одностадийной коррекции ошибок при синтезе генов de novo. Был получен рекомбинантный фермент Tma-эндонуклеаза. Для проверки эффективности коррекции ошибок с помощью Tma-эндонуклеазы проводился синтез гена mTomato с использованием различных протоколов. Эффективность работы фермента оценивалась визуально по количеству флуоресцирующих колоний. Для подтверждения результата были сформированы случайные выборки колоний и проведено секвенирование собранных последовательностей по Сэнгеру. Было показано, что Tma-эндонуклеаза может быть использована как в классическом трехстадийном, так и в быстром одностадийном протоколе коррекции ошибок без потери активности. Также установлено, что при сопоставимой точности синтеза фрагментов ДНК эффективность Tma-эндонуклеазы такая же, как для коммерческого фермента Correctase (ThermoFisher). Сделан вывод, что одностадийная коррекция ошибок при помощи эндонуклеазы V позволяет ускорить процесс синтеза фрагментов ДНК и коррекции ошибок в них. За счет уменьшения количества операций данный протокол лучше подходит для высокопроизводительных платформ для синтеза ДНК, чем классический с использованием нетермостабильных ферментов.

Об авторах

Д. А. Гарагуля

Научно-исследовательский институт системной биологии и медицины Роспотребнадзора

Автор, ответственный за переписку.
Email: garagulya_da@sysbiomed.ru
Москва, 117246 Россия

Д. В. Евсютина

Научно-исследовательский институт системной биологии и медицины Роспотребнадзора

Email: garagulya_da@sysbiomed.ru
Москва, 117246 Россия

И. С. Рог

Научно-исследовательский институт системной биологии и медицины Роспотребнадзора

Email: garagulya_da@sysbiomed.ru
Москва, 117246 Россия

Г. Ю. Фисунов

Научно-исследовательский институт системной биологии и медицины Роспотребнадзора

Email: garagulya_da@sysbiomed.ru
Москва, 117246 Россия

Список литературы

  1. Fisunov G.Y., Semashko T.A., Evsyutina D.V. et al. Synthesis of the genome of bacteriophage N4 // Probl. Osobo Opas. Infekc. 2024. № 1. P. 182–191. https://doi.org/10.21055/0370-1069-2024-1-182-191
  2. Thi Nhu Thao T., Labroussaa F., Ebert N. et al. Rapid reconstruction of SARS-CoV-2 using a synthetic genomics platform // Nature. 2020. V. 582. № 7813. P. 561–565. https://doi.org/10.1038/s41586-020-2294-9
  3. Hutchison C.A., Chuang R.Y., Noskov V.N. et al. Design and synthesis of a minimal bacterial genome // Science. 2016. V. 351. № 6280. https://doi.org/10.1126/science.aad6253
  4. Gibson D.G., Benders G.A., Andrews-Pfannkoch C. et al. Complete chemical synthesis, assembly, and cloning of a Mycoplasma genitalium genome // Science. 2008. V. 29. № 319(5867). P. 1215–1220. https://doi.org/10.1126/science.1151721
  5. Gibson D.G., Glass J.I., Lartigue C. et al. Creation of a bacterial cell controlled by a chemically synthesized genome // Science. 2010. V. 329. № 5987. P. 52–56. https://doi.org/10.1126/science.1190719
  6. Semashko T.A., Fisunov G.Y., Tsoy E.A. et al. Modern approaches to de novo synthesis of extended DNA fragments: Аssembly of a wide repertoire of sequences // Acta Naturae. 2024. V. 16. № 1–60. P. 77–85. https://doi.org/10.32607/actanaturae.27362
  7. Desai N.A. and Shankar V. Single-strand-specific nucleases // FEMS Microbiol. Rev. 2003. V. 26. № 5. P. 457–491. https://doi.org/10.1111/j.1574-6976.2003.tb00626.x
  8. Yang B., Wen X., Kodali N.S. et al. Purification, clo-ning, and characterization of the CEL I nuclease // Biochemistry. 2000. V. 39. № 13. P. 3533–3541. https://doi.org/10.1021/bi992376z
  9. Smith J. and Modrich P. Removal of polymerase- produced mutant sequences from PCR products // Proc. Natl Acad. Sci. 1997. V. 94. № 13. P. 6847–6850. https://doi.org/10.1073/pnas.94.13.6847
  10. Ma S., Saaem I., and Tian J. Error correction in gene synthesis technology // Trends Biotechnol. 2012. V. 30. № 3. P. 47–54. https://doi.org/10.1016/j.tibtech.2011.10.002
  11. Sequeira A.F., Guerreiro C.I.P.D., Vincentelli R., Fon- tes C.M.G.A. T7 endonuclease I mediates error correction in artificial gene synthesis // Mol. Biotechnol., 2016. V. 58. № 8–9. P. 573–584. https://doi.org/10.1007/s12033-016-9957-7
  12. Huang J., Lu J., Barany F., Cao W. Multiple clea-vage activities of endonuclease V from Thermotoga maritima: Recognition and strand nicking mechanism // Biochemistry. 2001. V. 40. № 30. P. 8738–8748. https://doi.org/10.1021/bi010183h
  13. Semashko T.A., Fisunov G.Y., Tsoy E.A. et al. Modern approaches to de novo synthesis of extended DNA fragments: Assembly of a wide repertoire of sequences // Acta Naturae. 2024. V. 16. № 1–60. P. 77–85. https://doi.org/10.32607/actanaturae.27362
  14. Inoue H., Nojima H., and Okayama H. High efficiency transformation of Escherichia coli with plasmids // Gene. 1990. V. 30. № 96. P. 8–23. https://doi.org/10.1016/0378-1119(90)90336-p
  15. Geissmann Q. OpenCFU, a new free and open-source software to count cell colonies and other circular objects // PLoS One. 2013. V. 8. № 2. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0054072

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Российская академия наук, 2025