COMPENSATORY CHANGES OF GOLDFISH MAUTHNER NEURONS INDUCED BY SENSORY STIMULATION AND BETA-AMYLOID APPLICATION



Cite item

Full Text

Abstract

Objective - to study thedendrite structure and formation in goldfish Mauthner neurons under the conditions of neurotoxic action of the 25-35 beta-amyloid fragment and long-term optical or vestibular stimulation of goldfish, which affects the afferent inputs to these neurons. Materials and methods.The study was performed on Mauthner neurons of the goldfish fry (n=13) by the methods of light and electron microscopy. The identification of individual dendrites and the determination of their volumes and synaptic structure were carried out using the virtual 3D images of Mauthner neurons obtained from 3 μm serial sections. The functional state of Mauthner neurons was assessed indirectly on the basis of fish the motor lateralization. Results. Under the influence of beta-amyloid application in combination with subsequent long-term sensory stimulation, the volume of ventral dendrites of Mauthner neurons was decreased, their ultrastructure was damaged, and a portion of synapses degenerated. The degeneration of more active neurons was more significant as compared with less active ones. Newly formed medial dendrites had larger volume and less injured ultrastructure of synapses, than those of the ventral dendrites. In the synapses of the same type, localized on ventral and medial dendrites, the sizes of specialized contacts didn’t differ. Conclusions. Medial dendrite formation is a compensatory response to the dystrophy of ventral dendrites caused by experimental interference

Full Text

Известно, что нейрональная дисфункция при старении и некоторых заболеваниях мозга связана с постсинаптической стороной синапса - дендритом [2]. В этих отростках центральных нейронов происходят ключевые изменения при болезни Альцгеймера и у трансгенных животных, продуцирующих мутантный человеческий белок-предшественник бета-амилоида, являющегося патофизиологическим фактором болезни. На больших массивах данных о трансформации нейронов гиппокампа и других отделов коры больших полушарий выявлены сдвиги в траектории дендритов, а также изменение их диаметра и утрата синапсов [3, 6, 11]. Подобные видоизмененные дендриты существуют наряду с вполне нормальными отростками, но при их множестве трудно установить для каждого нейрона, какие именно отростки деформированы, а какие остались неповрежденными, каким образом это связано с функцией нейрона. Судьбу конкретных дендритов в эксперименте можно проследить при проведении исследований на идентифицированных маутнеровских нейронах (МН) ретикулярной формации костистых рыб. У каждой особи имеются только два таких нейрона. Каждый из них имеет только латеральный дендрит (ЛД) и вентральный дендрит (ВД), принимающие сигналы, соответственно, от статоакустического и зрительного аппарата [5]. На этих модельных объектах ранее нами было показано, что в результате аппликации фрагмента 25-35 бета-амилоида (далее - Аβ25-35) и последующей зрительной стимуляции золотой рыбки деструкция ВД сопровождалась появлением нового, медиального дендрита (МД) [4], феномен образования которого нуждается в детальном рассмотрении. Цель настоящей работы - сравнительное изучение строения ВД и МД парных МН, а также их синапсов в условиях аппликации на нейроны Аβ25-35 и повышенной функциональной нагрузки (длительной вестибулярной и зрительной стимуляции), влияющей на афферентные входы к этим нейронам. Материал и методы. Исследование проведено на аутопсийном материале 13 мальков золотой рыбки (Carassius auratus L.) породы «Оранда» массой около 2 г. Эксперименты проводились в соответствии с «Правилами проведения работ с использованием экспериментальных животных». На проведение данного исследования получено разрешение комиссии ИТЭБ РАН по биологической безопасности и биоэтике (№ 2 от 20.04.2017 г.). Аппликацию Аβ25-35 (Sigma, США) в область расположения МН и сенсорные стимуляции выполняли как описано ранее [4, 10]. Вестибулярной стимуляции подвергали 7 особей спустя 24 ч после аппликации, зрительной стимуляции - 6 особей спустя 17 ч после аппликации. Различия в функциональной активности между правым и левым МН рыбки оценивали косвенно по коэффициенту моторной асимметрии (КМА), позволяющему определить, какой из двух нейронов функционально более активный (доминантный) [7]. При этом учитывали, что МН образуют двухклеточный командный центр, инициирующий левым нейроном направление поворота рыбки вправо, а правым нейроном - влево [5, 7]. После экспериментального воздействия рыбок ненадолго погружали в ледяную воду, затем декапитировали на льду и извлекали содержащий МН участок продолговатого мозга для микроскопических исследований по методике, принятой в лаборатории [1]. На пирамитоме LKB (LKB, Швеция) готовили серийные поперечные срезы толщиной 3 мкм, по которым выполняли 3D-реконструкцию с формированием виртуальных изображений МН, дополненных величинами объемов [1]. По целостным объемам нейронов вычисляли коэффициент структурной асимметрии (КСА) для установления соответствия между величинами КМА и КСА [7]. Интегральное микроскопическое строение МН изучали по компьютерным монтажам выбранных 40 панорамных изображений срезов. Для изучения ультраструктуры МН с переклеенных на столбики из эпона (Fluka AG, Швейцария) гистологических срезов на ультрамикротоме «Leica EM UC6» (Leica, ФРГ) готовили ультратонкие срезы, их изучали в электронном микроскопе «Tesla BS-500» (Tesla, Чехословакия) при увеличении 14 000. Сравнительный анализ структуры синапсов проводили по группам согласно принятым морфологическим критериям [8, 10]. Измерения специализированных контактов выполняли интерактивно на оцифрованных негативах с помощью разработанной А. А. Деевым (ИТЭБ РАН) программы морфометрического анализа изображений «Plana». Математическую обработку данных проводили, используя программу Microsoft Office Excel 2003. О значимости различий судили по величине t-критерия Стьюдента и считали их значимыми при р<0,05. Для определения значимых различий при малых выборках применяли критерий Манна-Уитни. Результаты исследования. Изучение асимметрии латерального поведения показало, что значение КМА до и после аппликации с последующей вестибулярной стимуляцией не изменилось, и доминантный нейрон остался прежним. При аппликации и зрительной стимуляции значения КМА до и после воздействий составили 0,57±0,03 и 0,38±0,09 соответственно (р<0,05), что указывает на смену функционального доминирования МН. В каждой группе рыбок только у 4 особей были обнаружены МД. Их сформировали те нейроны, ВД которых оказались существенно редуцированными (табл. 1). Исследованные МД также имели меньшие величины объемов, чем ВД интактных МН, что подтверждалось и при рассмотрении строения и объемных характеристик индивидуальных нейронов рыбок с одинаковой моторной латерализацией (рис. 1, табл. 2). Строение индивидуальных МН подопытных золотых рыбок в корне отличалось от МН интактной золотой рыбки (см. рис. 1, а). После аппликации Аβ25-35 и вестибулярной стимуляции оба МН находились в состоянии дегенерации (см. рис. 1, б). Цитоплазма нейронов темная, они небольшие по размеру, их ВД исчезающе малы, обнаруженный МД тоже имел маленький объем. Функциональная оценка МН по КМА свидетельствует о некотором снижении активности правого нейрона, поврежденного сильнее, и по результатам измерений имеющего меньший объем по сравнению с субдоминантным нейроном. По КСА наблюдается структурная инверсия МН. После аппликации и зрительной стимуляции объем правого нейрона более чем в 3 раза превышал объем сильно деформированного левого нейрона. Цитоплазма обоих МН просветлялась. Редукция ВД сопровождалась формированием МД у обоих МН. Существенно, что вследствие экспериментального воздействия происходила инверсия латерализации золотой рыбки (см. табл. 2), совпадающая с инверсией объемов МН, и таким образом, доминантным становился левый нейрон. Данные электронно-микроскопического анализа в целом соответствовали исследованиям светового уровня, показавшим, что в каждой паре клеток доминантный МН в большей степени был подвержен деструкции. Так, при действии Аβ25-35 и вестибулярной стимуляции в осмиофильной цитоплазме правого ВД доминантного нейрона с трудом идентифицировались отдельные элементы цитоскелета (рис. 2, а). Повсеместно встречались ячеистые включения и миелиновые фигуры. В округлых субсинаптических митохондриях кристы заполняли периферию органелл, их центральная часть включала осмиофильное образование, вакуоль и реже - миелиновую структуру. В ВД левой, субдоминантной клетки (см. рис. 2, б), образующей МД, нейрофиламенты уже можно было идентифицировать, ячеистые структуры отсутствовали, однако часть митохондрий имела аномальное строение, описанное выше. В МД протяженные нейрофиламенты находились на определенном расстоянии друг от друга и сохраняли параллельное расположение по ходу дендрита. Видны цистерны поперечного и продольного эндоплазматического ретикулума (см. рис. 2, в), характерные для ВД интактного нейрона. Митохондрии в постсинаптической части также деформированы, но в синаптических бутонах они сохраняли нормальное строение. В синаптическом аппарате дендритов преобладали химические синапсы типа 1 с активной зоной на гребешке (см. рис. 2, а-в). В существенно меньшем количестве представлены химические синапсы типа 2 и электрические синапсы (тип 3). Все виды синаптических контактов имели хорошую сохранность. Признаки дегенерации касались синаптических окончаний, локализованных на дендритах обеих клеток. Они проявлялись в опустошении бутонов и сосредоточении везикул преимущественно у активных зон. В свободном от везикул пространстве находились вакуоли или мембранные структуры. Кластеры опустошенных бутонов чередовались с кластерами бутонов со средним наполнением везикулами. Полностью заполненные бутоны встречались только в аксонных окончаниях, контактирующих с МД. После аппликации Аβ25- 35 и зрительной стимуляции ультраструктура ВД доминантного левого МН проявляла признаки глубокой деструкции (см. рис. 2, г). Контур плазматической мембраны местами не прослеживался. Цитоплазма выглядела обводненной. Цитоскелет практически не выявлялся. В дендроплазме обнаруживались набухшие митохондрии, но в аксонных окончаниях митохондрии сохраняли строение, близкое к интактному. Синаптические контакты определялись с трудом. Чаще встречались опустошенные синаптические бутоны, крайне редко - небольшие синапсы химического типа, заполненные везикулами. Плазматическая мембрана правой, субдоминантной клетки также местами теряла четкость контура (см. рис. 2, д). В осмиофильной цитоплазме ВД параллельное расположение нейрофиламентов не нарушалось. У МД в проксимальной его части дендроплазма достаточно рыхлая. Митохондрии в обоих дендритах правого нейрона слегка набухшие, в центре могли встречаться мембранные образования. Специализированные контакты идентифицировались не всегда четко. При этом синапсы на ВД были опустошены, а синапсы на МД заполнены синаптическими везикулами, склеенными в небольшие группки (см. рис. 2, е). Результаты морфометрических измерений описанных выше нейронов приведены ниже (табл. 3). При аппликации Аβ25-35 и вестибулярной стимуляции размеры специализированных контактов синапсов, локализованных на правом МН, не имели значимых различий. У левого МН все контакты, образующие связи с МД (и частично с ВД), имели большую протяженность, чем такие же контакты с сомой нейрона. Сравнение контактов ВД и МД показало достоверное различие только в протяженности активной зоны синапсов типа 2 на МД: она возрастала примерно на 20 %, что может свидетельствовать о возросшей функциональной активности синапсов с химическим типом сигнализации. У обоих дендритов примерно на 40 % по сравнению с сомой увеличивалась протяженность десмосомоподобных контактов. При аппликации Аβ25-35 и оптокинетической стимуляции синаптические контакты левого МН определялись с трудом, что сделало невозможным оценку их протяженности. Анализ размеров специализаций ВД и МД правого нейрона показал, что активная зона в синапсах типа 1 на МД отличалась от активной зоны таких же синапсов на ВД. Ее протяженность несколько возрастала. Однако в синапсах типа 2 активные зоны ни на ВД, ни на МД не менялись, что, по-видимому, обусловлено патологией цитоскелета и связанной с ней редукцией актинсодержащих десмосомоподобных контактов примерно на 28 %. Обсуждение полученных данных. В работе были исследованы ВД и отходящие от сомы в вентромедиальном направлении МД, выявляемые только в условиях примененных воздействий. Подобные дендриты не обнаруживались при отдельных эффектах аппликации Аβ25-35 [4] и зрительной стимуляции [8] или при совместном влиянии Аβ25-35 и адаптирующей вестибулярной стимуляции [10]. Существование новых дендритов, впервые показанное у МН, рассматривается нами как компенсаторная реакция на нейротоксическое действие Аβ25-35 и предельную физиологическую нагрузку, следствием которых является значительное сокращение объемов нейронов и дендритов, повреждение их ультраструктуры и деструкция синапсов. Дегенерация более активных нейронов проявляется в большей степени, чем менее активных, имеющих больший объем и в своем составе - МД, что приводит к несоответствию значений КМА и КСА. О существующей связи между патологическими изменениями строения дендритов и дисфункцией нейрона сообщается в совместных электрофизиологических исследованиях и компьютерном моделировании нейронов гиппокампа на трансгенных мышиных моделях болезни Альцгеймера. Как выяснилось, для резко выраженного изменения фундаментальных электрических свойств нейрона достаточно уменьшения величины дендритов, в геометрии которых, вероятно, заложен важный патологический механизм нейродегенерации [9]. Одинаковые размерные характеристики специализированных контактов в морфологически однотипных синапсах, локализованных на ВД и МД, указывают на то, что благодаря МД увеличивается воспринимающая поверхность нейрона для обеспечения его функционирования на требуемом уровне при сильной дистрофии ВД и дисфункции его синапсов. В целом, феномен образования МД свидетельствует о сохранении у центральных нейронов мальков золотой рыбки пластических свойств, выявляемых на уровне формирования дополнительных отростков. Результаты нашей работы, проведенной на идентифицированных нейронах, имеющих индивидуальные дендриты, позволяют предположить, что и у других моделей возможно образование новых клеточных отростков в экспериментальных условиях, тесно связанных с деструкцией существующих дендритов. Вклад авторов: Концепция и дизайн исследования: Н. Р. Т., Н. А. П. Сбор и обработка материала: Н. А. П., Г. З. М., И. Б. М., Н. Р. Т., Е. Н. Б. Статистическая обработка данных: Г. З. М., Н. А. П., Н. Р. Т. Анализ и интерпретация данных: Н. Р. Т., Г. З. М. Написание текста: Н. Р. Т. Авторы сообщают об отсутствии в статье конфликта интересов.
×

About the authors

N. R. Tiras

RAS Institute of Theoretical and Experimental Biophysics; Pushchino State Institute of Natural Sciences

Email: ntiras@rambler.ru
Laboratory of Experimental Neurobiology; Faculty of Biophysics and Biomedicine 3 Institutskaya Str., Pushchino, Moscow Region 142290; 3 Prospect Nauki, Pushchino, Moscow Region 142290

I. B. Mikheyeva

RAS Institute of Theoretical and Experimental Biophysics

Laboratory of Experimental Neurobiology 3 Institutskaya Str., Pushchino, Moscow Region 142290

G. Z. Mikhailova

RAS Institute of Theoretical and Experimental Biophysics

Laboratory of Experimental Neurobiology 3 Institutskaya Str., Pushchino, Moscow Region 142290

N. A. Pen’kova

RAS Institute of Theoretical and Experimental Biophysics

Laboratory of Experimental Neurobiology 3 Institutskaya Str., Pushchino, Moscow Region 142290

Ye. N. Bezgina

RAS Institute of Theoretical and Experimental Biophysics

Laboratory of Experimental Neurobiology 3 Institutskaya Str., Pushchino, Moscow Region 142290

References

  1. Михайлова Г. З., Коканова Н. А., Тирас Н. Р., Мошков Д. А. Трехмерная реконструкция и определение объема нейрона. М.: Либроком, 2012.
  2. Cochran J. N., Hall A.M, Roberson E. D. The dendritic hypothesis for Alzheimer’s disease pathophysiology // Brain Res. Bull. 2014. Vol. 103. P. 18-28.
  3. Grutzendler J., Helmin K., Tsai J., Gan W. B. Various dendritic abnormalities are associated with fibrillar amyloid deposits in Alzheimer’s disease // Ann. N Y Acad. Sci. 2007. Vol. 1097. P. 30-39.
  4. Kokanova N. A., Michailova G. Z., Shtanchaev R. S., Bezgina E. N., Tiras N. R., Moshkov D. A. Morphofunctional and ultra structural consequences of application of beta-amiloid in goldfish Mauthner neurons // Neurophysiology. 2014. Vol. 46. P. 33-42.
  5. Korn H., Faber D. The Mauthner cell half a century later: a neurobiology model for decision-making? // Neuron. 2005. Vol. 47, № 1. P. 13-22.
  6. Luebke J. I., Weaver C. M., Rocher A. B. Rodriguez A., Crimins J. L., Dick stein D. L., Weame S. L., Hof P. R. Dendritic vulne rability in neurodegenerative disease: insights from analyses of cortical pyramidal neurons in transgenic mouse models // Brain Struct. Funct. 2010. Vol. 214. P. 181-199.
  7. Mikhailova, G. Z., Pavlik, V.D., Tiras, N. R., Moshkov, D. A. Correlation between the sizes of Mauthner neurons and the preference of goldfish to turn to the right or left // Neurosci. Behav. Physiol. 2006. Vol. 36. P. 419-422.
  8. Moshkov D. A., Shtanchaev R. S., Mikheeva I. M., Bezgina E. N., Kokanova N. A. Mikhailova G. Z., Tiras N. R., Pavlik L. L. Visual input controls the functional activity of goldfish Mauthner neuron through the reciprocal synaptic mechanism // J. Integr. Neurosci. 2013. Vol. 12. № 1. P. 17-33.
  9. Siskova Z., Justus D., Kaneko H., Friedrichs D., Henneberg N., Beu tel T., Pitsch J., Schoch S., Becker A., Kammer H., Remy S. Dendritic structural degeneration is functionally linked to cellular hyperexcitability in a mouse model of Alzheimer’s disease // Neuron. 2014. Vol. 84. Р. 1023-1033.
  10. Tiras N. R., Pen,kova N. A., Besgina Ye.N., Alilova G. A., Moshkov D. A. Changes in motor asymmetry of the goldfish related to adaptation to vestibular stimulation and applications of beta-amyloid on mauthner cells // Neurophysiology. 2015. Vol. 47. P. 115-127.
  11. Vickers J. C., Mitew S., Woodhouse A., Fernandez-Martos C. M., Kirkcaldie M. T., Canty F. J., McCormack G. H., King A. E. Defining the earliest pathological changes of Alzheimer’s di sease // Curr. Alzheimer Res. 2016. Vol. 13. Р. 281-287.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2018 Eco-Vector



Периодический печатный журнал зарегистрирован как СМИ Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор): 0110212 от 08.02.1993.
Сетевое издание зарегистрировано как СМИ Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор): ЭЛ № ФС 77 - 84733 от 10.02.2023.