REGULATORY ELEMENTS IN THE SKIN EPITHELIUM OF SACCOGLOSSUS MERESCHKOWSKII (ENTEROPNEUSTA, HEMICHORDATA): ELECTRON MICROSCOPIC AND IMMUNOCYTOCHEMICAL STUDY



Cite item

Full Text

Abstract

The aim of this investigation was to demonstrate the regulatory elements in the skin epithelium of Enteropneusta which are supposed to be related to the chordate ancestors. Using electron microscopy, it was found that in the skin epithelium of a representative of enteropneusts Saccoglossus mereschkowskii, the basal parts of some epitheliocytes took part in formation of a nerve layer. These cells were considered as receptor ciliated cells. The granular epithelial cells were shown to release secretion according to both exocrine and endocrine mechanism; these cells were characterized as endocrine-like regulatory cells. Fine granular cells possibly represent special receptor-endocrine-like cell type. The immunocytochemical detection of FMRFamid neuropeptide localization in histological sections confirmed the electron microscopic data on the presence of receptor and endocrine-like cells in the epithelium. It is suggested that the skin epithelium of Enteropneusta contains a peculiar neuro-endocrine regulatory system that is represented by receptor cells, receptorendocrine-like cells of an open type and nerve elements of the nerve layer.

Full Text

Кишечнодышащие (Enteropneusta) относятся к полухордовым животным (Hemichordata). В филогенетической системе они находятся у основания ветви хордовых, ствола вторичноротых, и представляют собой уникальный объект для сравнительно-морфологических исследований. Молекулярно-биологические данные свидетельствуют, что кишечнодышащие среди современных животных наиболее близки к древним вторичноротым [8, 10]. В связи с этим изучение эпителиальных тканевых систем, их клеточного состава и клеточных взаимодействий у кишечнодышащих важно для понимания эволюционного становления эпителиальных тканей и формирования тканевых регуляторных механизмов. В основании кожного эпителия кишечнодышащих расположен нервный слой, представленный нервными клетками и нервными волокнами. Строение кожного эпителия у разных видов кишечнодышащих описано на светооптическом и электронно-микроскопическом уровнях [1, 2, 6, 7]. Кожный эпителий Saccoglossus mereschkowskii — однослойный ложномногорядный реснитчатый, толщина которого достигает 200–300 мкм и более [1]. В кожном эпителии кишечнодышащих выделяют реснитчатые клетки и несколько видов железистых клеток. Реснитчатые клетки содержат в апикальной части миофиламенты и представляют собой эпителиально-мышечные клетки [6]. На светооптическом уровне выявлены чувствительные клетки с помощью окраски метиленовым синим [9] и импрегнации нитратом серебра [14]. Типичные эндокринные клетки в эпителиях у кишечнодышащих не обнаружены. Однако с помощью иммуноцитохимических методов у Saccoglossus и Ptychodera bahamensis выявлено присутствие гонадотропин-рилизинг гормона, который обнаруживается в гранулах зернистых клеток кожного эпителия [11]. Поскольку гранулы этих клеток выделяются наружу, авторами предполагается экзокринная функция гормона. Цель настоящего исследования — выявление регуляторных элементов кожного эпителия у представителя кишечнодышащих Saccoglossus mereschkowskii. Материал и методы. В качестве объекта исследования выбран широко распространенный вид — Saccoglossus mereschkowskii (Enteropneusta, Hemichordata). Работу по сбору и фиксации животных проводили на базе Мурманского морского биологического института. Материал для исследования собирали в летний период (июль) на литорали побережья Баренцева моря в районе Дальних Зеленцов. Для электронно-микроскопического изучения животных рассекали в поперечном направлении на небольшие фрагменты и фиксировали на холоду (при 4 ºС) 2,5% глутаральдегидом на фосфатном или какодилатном буфере при рН 7,4 в течение 40–60 мин, после чего дофиксировали 1–2% раствором четырехокиси осмия. Тоничность фиксирующих жидкостей доводили до уровня тоничности морской воды (для Баренцева моря — 1000 мосмолей) добавлением сахарозы или хлористого натрия. Фиксированный материал после обезвоживания по стандартной методике заключали в аралдит. Полутонкие срезы окрашивали толуидиновым синим. Ультратонкие срезы получали на ультратоме (LKB, Швеция) и контрастировали уранилацетатом и цитратом свинца и исследовали в электронных микроскопах JEM-5G и JEM-7 (Jeol, Япония). Иммуноцитохимическим методом определяли локализацию нейропептида FMRFамида с целью выявления рецепторных (нейросенсорных) и регуляторных элементов. FMRFамидподобные пептиды рассматриваются как нейротрансмиттеры/нейромодуляторы, а их наличие в эндокринных клетках кишечника насекомых дает основание предполагать, что они являются гормонами [12]. Для иммуноцитохимического исследования использовали животных, фиксированных в жидкости Буэна в течение 24 ч. Иммуноцитохимическую реакцию проводили на серийных парафиновых срезах толщиной 5–6 мкм. Срезы депарафинировали, промывали 20 мин в воде и помещали на 30 мин в 1% перекись водорода для инактивации эндогенной пероксидазы. После промывки в воде препараты выдерживали 30 мин в 0,1 М фосфатно-солевом буфере (PBS) при pH 7,4, содержащем 0,3% Тритон Х-100 (PBS-TX). Для устранения неспецифического окрашивания препараты выдерживали в PBS-TX, содержащем 2,5% бычий альбумин (PBS-TX — BSA), в течение 1 ч при комнатной температуре. Затем срезы инкубировали с поликлональными кроличьими антителами к FMRFамиду (ImmunoStar, США) в разведении 1:1000–1:2000 на PBS-TX — BSA в течение 3 ч при комнатной температуре. После промывки в PBS-TX срезы обрабатывали вторыми биотинилированными антителами против иммуноглобулинов кролика в течение 20 мин и стрептавидин-пероксидазой (DAKO, Дания) в течение 10 мин. Для визуализации продукта реакции использовали 3,3'-диаминобензидин. Контролем служили срезы, обработанные только вторыми антителами. Препараты исследовали под световым микроскопом Leica DME (Leica, Германия), изображения структур были получены с помощью цифровой видеокамеры Leica ES3 (Leica, Германия). На гистологических препаратах с помощью окулярного микрометра, а на электронных микрофотографиях — с помощью измерительной системы определяли количественные параметры тканевых и клеточных структур. Результаты исследования. Электронномикроскопическое исследование показало, что в образовании интраэпителиального нервного слоя кожного эпителия у S. mereschkowskii принимают участие базальные отростки некоторых эпителиальных клеток. Можно наблюдать, как на границе с нервным слоем базальные отростки эпителиальных клеток поворачивают вдоль нервного слоя и входят в него (рис. 1, а). Отсутствие гранул в цитоплазме отростков позволяет предположить, что эпителиальные клетки с базальными отростками в нервном слое относятся к реснитчатым клеткам. Зернистые клетки, представленные крупно-и мелкозернистыми клетками, прослеживаются от поверхности эпителия до базальной мембраны. Их цитоплазму заполняют округлые ограниченные мембраной секреторные включения, диаметр которых в крупнозернистых клетках колеблется от 0,3 до 1,2 мкм, в мелкозернистых — содержатся включения диаметром 0,09–0,2 мкм. Электронная плотность гранул крупно-и мелкозернистых клеток варьирует. Содержимое более светлых гранул имеет вид мелких зерен и нитей, материал электронно-плотных гранул при малых увеличениях электронного микроскопа выглядит аморфным, но при большем разрешении выявляется его тонкофибриллярная структура. В крупнозернистых клетках разные виды секреторных гранул встречаются примерно в одинаковом количестве, в мелкозернистых клетках преобладают электронно-плотные гранулы. Секреторные гранулы присутствуют в апикальных, центральных и базальных частях зернистых клеток. Базальные части мелкозернистых клеток обнаружены в составе слоя нервных волокон (см. рис. 1, б). Установлено выделение секрета из гранулы крупнозернистой клетки на границе с базальной мембраной (рис. 2, а). Полученные данные позволяют предположить, что зернистые клетки выделяют секрет как по экзокринному, так и по эндокринному типу и представляют собой регуляторные эндокриноподобные клетки. Нервный слой образован идущими параллельно поверхности волокнами диаметром от 0,2 до 1,0 мкм, направление которых в основном совпадает с длинной осью тела животного. Многие волокна имеют гранулы диаметром от 0,06 до 0,15 мкм со светлым или темным содержимым, рассеянные диффузно или образующие небольшие скопления. Диаметр и содержимое гранул варьируют. Можно различить следующие типы гранул: первый — сферические гранулы диаметром 150–200 нм умеренной электронной плотности (см. рис. 2, г); второй — умеренно электронно-плотные гранулы диаметром 50–100 нм (см. рис. 2, г); третий — гранулы сферической или овальной формы диаметром 60–150 нм с узким светлым гало и электронно-плотной сердцевиной (см. рис. 2, д); четвертый — сферические гранулы диаметром 40–70 нм со светлым гомогенным содержимым (см. рис. 2, е); пятый — сферические гранулы диаметром 80–100 нм со светлым гетерогенным содержимым (см. рис. 2,е). В одном волокне могут находиться одновременно и электронно-плотные, характерных для позвоночных и беспозвоночных животных. Гранулы первого-третьего типов сходны с крупными гранулами эндокринных, эндокриноподобных и светлые гранулы. В глубине эпителия на границе с нервным слоем выявлены нейроноподобные клетки с светлыми ядрами округлой формы, образующие и пептидергических нейросекреторных клеток, с соседними клетками синапсоподобные контакты по типу щелевого соединения. Обнаружены контакты терминалей нервных волокон, содержащих пузырьки, подобные синаптическим, и железистых (зернистых) клеток (см. рис. 2, ж), что указывает на нейрональную регуляцию функции зернистых клеток. Отдельные нервные окончания, содержащие синаптические пузырьки, контактируют с базальной мембраной (см. рис. 2, ж). Данный факт свидетельствует о том, что регуляция функции мышц может осуществляться путем диффузии медиатора через базальную мембрану в гемальные пространства. Это предположение объясняет отсутствие непосредственных контактов между нервными и мышечными элементами. Методом иммунопероксидазной цитохимии на светооптическом уровне в цитоплазме узких клеток открытого типа (достигающих поверхности) и в отростках клеток, уходящих в нервный слой, показана локализация FMRFамидиммунореактивного материала (см. рис. 2, б, в). По строению и расположению FMRFамидиммунореактивные элементы соответствуют зернистым клеткам, что подтверждает высказанное предположение о роли зернистых клеток как регуляторных эндокриноподобных клеток. Также FMRFамид-иммунореактивность проявляют нервные клетки, расположенные на уровне нервного слоя в основании эпителия. Обсуждение полученных данных. В настоящей работе показано, что интраэпителиальный нервный слой кожного покрова S. mereschkowskii образован как нервными волокнами, так и входящими в него базальными отростками некоторых эпителиальных клеток. По строению эти клетки соответствуют реснитчатым клеткам. Реснитчатые клетки, направляющие базальные отростки в нервный слой, по-видимому, являются рецепторными элементами. Это заключение согласуется с тем, что специальные органы чувств у кишечнодышащих отсутствуют. В кожном и кишечном эпителиях представителей многих групп беспозвоночных нейроноподобные, эндокриноподобные и рецепторные клетки могут иметь на поверхности реснички или микроворсинки [4, 5]. Показано, что мембрана всех ресничек содержит специфические рецепторы и ионные каналы, которые запускают сигнальные механизмы, контролирующие подвижность ресничек и/или реагирующие на механические или химические стимулы [13]. В частности, плазматическая мембрана жгутиков обонятельных клеток содержит хемосенсорные рецепторные молекулы [3]. Анализ данных литературы позволяет сделать заключение, что чувствительные реснитчатые клетки могут осуществлять хеморецепцию и, возможно, обеспечивают тактильную чувствительность [3, 13]. Зернистые клетки кожного эпителия S. mereschkowskii обладают как экзокринной, так и эндокринной секрецией, что дает основание рассматривать их как регуляторные эндокриноподобные клетки. Выявленная локализация FMRFамидиммунореактивного материала в зернистых эпителиальных клетках открытого типа и клеточных отростках, идущих в нервный слой, подтверждает данные электронной микроскопии о роли их как эндокриноподобных клеток. Мелкозернистые клетки, которым некоторые авторы придают значение рецепторных [15], представляют собой, по-видимому, особые рецепторноэндокриноподобные клетки. Обнаруженные контакты нервных волокон и зернистых клеток свидетельствуют о нейрональной регуляции функции зернистых клеток. Полученные данные позволяют сделать вывод о существовании в кожном эпителии кишечнодышащих своеобразной нейроэндокринной регуляторной системы, представленной рецепторными и рецепторно-эндокриноподобными клетками открытого типа и нервными элементами нервного слоя. Можно предполагать, что биологически активные вещества, выделяемые через базальные части эндокриноподобных зернистых клеток и синапсоподобные окончания нервных клеток, не только регулируют деятельность самих эпителиальных клеток, включая мерцательную, сократительную и секреторную активность, но и выделяются через базальную мембрану в гемальные пространства, осуществляя гуморальную регуляцию.
×

About the authors

M. V. Stolyarova

St. Petersburg State Pediatric Medical University

Email: mvstolyarova@yandex.ru

E. I. Valkovich

St. Petersburg State Pediatric Medical University

References

  1. Атаманова М. В. Кожный и кишечный эпителии кишечнодышащих как этап филогенетического развития эпителиев хордовых. Арх. анат., 1977, т. 73, вып. 9, с. 55–61.
  2. Атаманова М. В. Ультраструктурные особенности кожного эпителия Saccoglossus mereschkowskii (Enteropneusta). Цитология, 1978, т. 20, № 12, с. 1355–1359.
  3. Бигдай Е. В., Самойлов В. О., Руденко Я. Н. и др. Две молекулярные системы подвижности обонятельных жгутиков лягушки. Биофизика, 2008, т. 53, вып. 6, с. 997–1000.
  4. Зайцева О. В. Нервные клетки в эпителии пищеварительного тракта брюхоногих моллюсков. Докл. РАН, 2006, т. 408, № 2, с. 280–282.
  5. Пунин М. Ю. Кишечная регуляторная система беспозвоночных животных и ее предполагаемая эволюция у многоклеточных. Труды Зоол. ин-та РАН (СПб.), 2001, т. 290.
  6. Столярова М. В. Сравнительная морфолого-физиологическая характеристика и реактивные особенности эпителиальных систем у животных разных уровней организации и человека: филогенетический аспект: Автореф. дис. … д-ра биол. наук. СПб., 2012.
  7. Benito J. and Pardos F. Hemichordata. In.: Microscopic Anatomy of Invertebrates. New-York, Wiley-Liss, 1997, v. 15, p. 15–101.
  8. Bromham L. D. and Degnan B. M. Hemichordates and deuterostome evolution: robust molecular phylogenetic support for a hemichordate+echinoderm clade. Evol. Dev., 1999, v. 1, № 3, p. 166–171.
  9. Bullock T. H. The anatomical organization of the nervous system of Enteropneusta. Quart. J. Micr. Sci., 1945, v. 86, p. 55–111.
  10. Cameron C. B., Garey J. R. and Swalla B. J. Evolution of the chordate body plan: new insights from phylogenetic analyses of deuterostome phyla. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2000, v. 97, № 9, p. 4469–4474.
  11. Cameron C. B., Mackie G. O., Powell J. F. et al. Gonadortopinreleasing hormone in mullberry cells of Saccoglossus and Ptychodera (Hemichordata, Enteropneusta). Gen. Comp. Endocrinol., 1999, v. 114, № 1, p. 2–10.
  12. Haselton A. T., Yin C. and Stoffolano J. G. FMRFamide-like immunoreactivity in the central nervous system and alimentary tract of the non-hematophagous blow fly, Phormia regina, and the hematophagous horse fly, Tabanus nigrovittatus. J. Insect. Sci., 2008, v. 8, Art. 65, p. 1–17.
  13. Satir P. and Christensen S. T. Overview of structure and function of mammalian cilia. Annu. Rev. Physiol., 2007, v. 69, p. 377–400.
  14. Silén L. On the nervous system of Glossobalanus marginatus Meek (Enteropneusta). Acta Zool. (Stockh.), 1950, v. 31, p. 149– 175.
  15. Welsch U. Hemichordata. In: Biology of the Integument. v. 1. Invertebrates. Berlin, Springer, 1984, p. 790–799.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2013 Eco-Vector



Периодический печатный журнал зарегистрирован как СМИ Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор): 0110212 от 08.02.1993.
Сетевое издание зарегистрировано как СМИ Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор): ЭЛ № ФС 77 - 84733 от 10.02.2023.