STRUCTURE OF VENULAR VESSELS AND CELLULAR COMPOSITION OF HEPATIC SINUSOIDAL CAPILLARIES IN NEWBORN INFANTS



Cite item

Full Text

Open Access Open Access
Restricted Access Access granted
Restricted Access Subscription or Fee Access

Abstract

The objective of this study was to identify the structural peculiarities of terminal interlobular venules and to determine the number of endotheliocytes, hepatic fat-storing cells (FSC) and stellate macrophages (SM) in the liver of newborn infants. Liver fragments were obtained from 5 healthy newborn infants during medico-legal autopsies. In the sections stained using Mallory’s method, the relation of the connective tissue of terminal portal tracts with the adventitia of interlobular veins was determined. The numbers of endotheliocytes, FSC and CD68+ SM were counted in different zones of the liver acini. It was found that the adventitia of the terminal interlobular venules was completely represented by the connective tissue of the terminal portal tracts. Anastomoses with the sinusoidal capillaries (SC) via the circumlobular venules form the preterminal veins. FSC were concentrated in the central and periportal zones of the liver acinus, endotheliocytes of SC — in the periportal and peripheral zones, while SM were evenly distributed in all parts of the liver acinus. Thus, in newborn infants, liver cells possessing fibrogenic potential were numerous and were accumulated mainly near terminal interlobular venules, their circumlobular branches and within their adventitia.

Full Text

Restricted Access

About the authors

A. V. Droblenkov

St. Petersburg State Pediatric Medical University

Email: droblenkov_a@mail.ru

A. R. Saakyan

St. Petersburg State Pediatric Medical University

Email: armen-karina@yandex.com

P. S. Bobkov

St. Petersburg State Pediatric Medical University

N. R. Karelina

St. Petersburg State Pediatric Medical University

References

  1. Блюгер А. Ф. и Новицкий И. Н. Практическая гепатология. Рига, Знамена, 1984.
  2. Бобков П. С. Строение венулярного отдела микроциркуляторного русла и синусоидов печени в норме и при длительной алкогольной интоксикации: Автореф. дис. … канд. мед. наук. СПб., 2012.
  3. Бобков П. С., Дробленков А. В. и Карелина Н. Р. Количество эндотелиоцитов синусоидных капилляров печени как показатель направленного алкогольного фиброза. Учен. записки СПбГМУ им. акад. И. П. Павлова, 2011, т. 17, № 2, с. 29–30.
  4. Бозо И. Я., Диев Р. В. и Пинаев Г. П. «Фибробласт» — специализированная клетка или функциональное состояние клеток мезенхимального происхождения? Цитология, 2010, т. 52, № 2, с. 99–109.
  5. Вишневская Е. К. Дифференцировка клеток синусоидных сосудов печени в эмбриональном и постнатальном периодах онтогенеза крысы. Арх. анат., 1989, т. 97, вып. 9, с. 68–73.
  6. Жураковский И. П., Пустоветова М. Г. и Архипов С. А. Особенности развития фиброза печени на фоне формирования дегенеративных изменений мезенхимальных производных при локальном хроническом воспалительном процессе. Сибирский мед. журн., 2011, т. 26, № 3, с. 140–142.
  7. Зербино Д. Д. и Лукасевич Л. А. Диссеминированное внутрисосудистое свертывание крови. М., Медицина, 1989.
  8. Капустина В. И., Постникова О. А. и Айдагулова С. В. Электронно-микроскопический и стереологический анализ популяции звездчатых клеток печени в онтогенезе. Биол. науки, 2011, № 11, с. 170–173.
  9. Логинов А. С. и Аурин Л. И. Клиническая морфология печени. М., Медицина, 1985.
  10. Малахова Ж. Л. Клинико-патогенетические основы фетального алкогольного синдрома у детей раннего возраста: Автореф. дис. … д-ра мед. наук. Екатеринбург, 2012.
  11. Паюшина О. В., Домарацкая Е. И. и Старостин В. И. Клеточный состав и регенераторные функции стромы зародышевой печени. Цитология, 2012, т. 54, № 5, с. 369–380.
  12. Bataller R. and Brenner D. A. Liver fibrosis. J. Clin. Invest. 2005, v. 115, p. 209–218.
  13. Bioulac-Sage P. and Bаlabaud C. La cellule perisinusoidale (ou cellule de Ito). Gastroenterol. Clin. 1985, v. 9, № 4, p. 312–322.
  14. Jin C. H., Yonemitsu Y., Ding W. R. and Sueishi K. FLK-1+ cells derived from mouse fetal liver could differentiate into endothelial cells and smooth muscle cells. Zhonghua Xin Xue Guan Bing Za Zhi, 2010, v. 38, p, 1108–1112.
  15. Kinnman N. and Housset C. Peribiliary miofibroblasts in biliary type liver fibrosis. Front. biosci., 2002, v. 7, p. 496–503.
  16. Krupnick A. S., Balsara K. R., Kreisel D. et al. Fetal liver as a sourse of autologous progenitor cells for perinatal tissue engineering. Tiss. Eng., 2004, v. 10, p. 723–735.
  17. Miyata E., Masuya M., Yoshida S. et al. Hematopoetic origin of hepatic stellate cells in the adult liver. Blood, 2008, v. 111, p. 2427–2435.
  18. Niiro G. K. and O`Morchoe C. C. Pattern and distribution of intrahepatic lymph vessels in the rat. Anat. Rec., 1986, v. 215, p. 351–360.
  19. Popper H. and Paronetto F. Chronic liver injury induced by immunologic reactions. Cirrhosis following immunization with heterologous sera. Am. J. Pathol., 1996, v. 40, p. 1087–1101
  20. Sasaki K., Sonoda Y. and Suda M. Ultrastructural characterization of the death process of hepatocytes in neonatal mouse liver. Comp. Hepatol., 2004, v. 3 (suppl. 1), p. 39–41.
  21. Wisse E. Observations on the fine structure and peroxidase citochemistry of normal rat liver Kupffer cells. Ultrastruct. Res., 1974, v. 46, p. 393–426.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2013 Eco-Vector


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: № 0110212 от 08.02.1993.

This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies