ПОСТНАТАЛЬНОЕ РАЗВИТИЕ ГАМК-ЕРГИЧЕСКИХ НЕЙРОНОВ МОЗЖЕЧКА КРЫСЫ
- Авторы: Зиматкин С.М.1, Карнюшко О.А.1
-
Учреждения:
- Гродненский государственный медицинский университет
- Выпуск: Том 157, № 1 (2020)
- Страницы: 13-17
- Раздел: Статьи
- Статья получена: 27.02.2022
- Статья опубликована: 15.02.2020
- URL: https://j-morphology.com/1026-3543/article/view/101813
- DOI: https://doi.org/10.34922/AE.2020.157.1.002
- ID: 101813
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Цель - оценка динамики формирования ГАМК-ергических нейронов в коре и ядрах развивающегося мозжечка белой крысы в постнатальном онтогенезе с помощью иммуногистохимического выявления глутаматдекарбоксилазы (ГДК). Материал и методы. Исследование выполнено на 16 беспородных белых крысах на 2-, 7-, 15-е сутки (ранний постнатальный период) и 45-е сутки после рождения (пубертатный период). Для иммуногистохимического выявления ГАМК-ергических нейронов применяли первичные моноклональные мышиные антитела GAD-67 к ГДК, являющейся ферментом синтеза γ-аминомасляной кислоты. Иммунореактивность ГДК изучали на парафиновых срезах околочервячной части мозжечка. Результаты. Установлено, что в цитоплазме тел всех типов ГАМК-ергических нейронов коры мозжечка ГДК выявлялась уже на 2-е сутки после рождения. В цитоплазме тел грушевидных нейронов (клеток Пуркинье, КП) она достигала максимума на 7-е сутки, а в их дендритах - на 15-е сутки, позднее снова уменьшалась в больших звездчатых нейронах (клетках Гольджи, КГ) - на 45-е сутки. В аксонах звездчатых и корзинчатых нейронов ГДК-иммунореактивность к 45-м суткам становилась значительно выше, они формировали сплетения (корзинки) вокруг тел КП. ГАМК-ергические синапсы выявлялись в коре мозжечка на 7-е сутки и достигали максимального развития на 45-е сутки. В цитоплазме тел некоторых нейронов шаровидного и пробковидного ядер мозжечка у двухсуточных крысят выявлялась умеренная ГДК-иммунореактивность. На 7-е сутки между нейронами обнаруживались ГДК-иммунопозитивные волокна и аксодендритические синапсы, а на телах нейронов - аксосоматические синапсы, число которых возрастало к 45-м суткам. Выводы. Иммуногистохимическое исследование ГДК позволило выявить чёткую динамику постнатальных структурных преобразований тел, отростков и синаптических окончаний ГАМК-ергических нейронов в мозжечке крысы.
Ключевые слова
Полный текст
Введение. Основным нейромедиатором торможения в мозжечке является гаммааминомасляная кислота (ГАМК). Из 7 основных типов нейронов коры мозжечка 5 являются ГАМК-ергическими. Все ГАМК-ергические нейроны коры и ядер мозжечка образуются из нейроэпителия IV желудочка, а затем мигрируют, занимают свое дефинитивное положение и дифференцируются [14, 15]. Предшественники корзинчатых нейронов у крыс образуются на 2-17-е сутки, а звездчатых нейронов - на 4-19-е сутки постнатального развития. Они достигают своего конечного положения в молекулярном слое на 7-21-е сутки после рождения [14, 15], дифференцируются и устанавливают ГАМК-ергические синаптические контакты с грушевидными нейронами (клетками Пуркинье, КП). Предшественники КП у крыс образуются на 13-16-е сутки эмбриогенеза [4]. Постмиграционные КП в коре мозжечка с 19-х суток внутриутробного развития по 6-е сутки после рождения осуществляют ремоделирование дендритов, а затем с 7-х по 30-е сутки - рост обширного дендритного дерева. КП обеспечивают выход информации из коры, образуя большинство ГАМКергических синапсов на нейронах ядер мозжечка. В зернистом слое располагаются ГАМКергические биполярные веретеновидные нейроны (клетки Лугаро, КЛ) и большие звездчатые нейроны (клетки Гольджи, КГ). КЛ начинают формироваться на 14-15-е сутки внутриутробного развития. Они образуют ГАМК-ергические синапсы, ингибирующие КГ, корзинчатые, звездчатые нейроны [11] и КП [6]. КГ образуются с 18-х суток эмбриогенеза по 2-е сутки постнатального онтогенеза. Аксоны КГ ветвятся в зернистом слое, входят в состав клубочков мозжечка и подавляют активность зерновидных нейронов (ЗН) с помощью ГАМК [5]. По электрофизиологическим, морфологическим и биохимическим свойствам различают пять типов нейронов в ядрах мозжечка, из которых два типа являются ГАМК-ергическими [12]. Таким образом, ГАМК-ергические нейроны в коре и ядрах мозжечка у эмбрионов и взрослых крыс достаточно хорошо изучены, но о динамике постнатального развития этих нейронов известно недостаточно, что необходимо для понимания постнатального морфогенеза и становления функций мозжечка. ГАМК образуется путем декарбоксилирования глутаминовой кислоты ферментом глутаматдекарбоксилазой (ГДК) [3]. ГДК синтезируется в телах ГАМК-ергических нейронов, а затем транспортируется вдоль аксона в терминали, где участвует в образовании ГАМК. ГДК экспрессируется только в нейронах, которые используют ГАМК как нейромедиатор [8], и поэтому служит хорошим маркером ГАМКергических нейронов в ЦНС [1]. Целью настоящего исследования была оценка динамики формирования ГАМК-ергических нейронов в развивающемся мозжечке крысы с помощью иммуногистохимического выявления ГДК Материал и методы. Эксперименты выполнены на потомстве самок беспородных белых крыс с исходной массой 180±20 г. Все опыты проведены с учетом «Правил проведения работ с использованием экспериментальных животных». На данное исследование получено разрешение комитета по биомедицинской этике Гродненского государственного медицинского университета (протокол № 7 от 23. 12. 2013 г.). Животные находились на стандартном рационе вивария. От каждой самки брали для исследования по одному крысенку по достижении ими 2, 7, 15 и 45 сут после рождения (всего изучено 16 крысят). Для получения сопоставимых результатов от всех животных образцы околочервячной части мозжечка обрабатывали параллельно и в одинаковых условиях. Их фиксировали в цинк-этанол-формальдегиде при +4 ºС (в течение ночи), затем заливали в парафин. Парафиновые срезы толщиной 7 мкм, проходящие через кору палео-и неоцеребеллума, а также шаровидное и пробковидное ядра мозжечка готовили с помощью микротома Leica RM 2125 RTS (Leica, Германия), монтировали на предметные стекла. Для иммуногистохимического выявления ГДК применяли первичные моноклональные мышиные антитела GAD67 фирмы Abcam (Великобритания, ab. 26116) в разведении 1:2000, экспозиция 20 ч при +4 ºС во влажной камере. Для выявления связавшихся первичных антител использовали набор EXPOSE Mouse and Rabbit specific HRP/DAB detection IHC kit Abcam (Великобритания, ab. 80436). Расположение филогенетически древней (paleocerebellum) и новой (neocerebellum) частей мозжечка крысят на гистологических препаратах определяли по С. Н. Оленеву [2], используя атлас G. Paxinos и C. Watson [10]. Изучение и микрофотографирование гистологических препаратов проводили с помощью микроскопа Axioscop 2 plus (Zeiss, Германия) и цифровой видеокамеры DFC 320 (Leica, Германия). Результаты исследования. На 2-е сутки постнатального развития слои коры мозжечка крысы ещё не сформированы. КП располагаются в 3-4 ряда, ГДК-иммунореактивная цитоплазма их тел представлена лишь узким ободком вокруг ядра. В молекулярном и зернистом слоях выявляются единичные мелкие ГДКиммунопозитивные нейроны. Их тела хорошо выделяются на фоне светлого нейропиля (рис. 1, а). На 7-е сутки КП располагаются в один ряд, ГДКиммунопозитивная цитоплазма их тел увеличивается преимущественно в апикальной части клетки. На 7-е сутки после рождения как в палео- , так и неоцеребеллуме, ГДК-иммунопозитивное окрашивание синапсов появляется на некоторых дендритах и телах КП. В молекулярном и зернистых слоях ГДК-иммунопозитивные нейроны на фоне более темного нейропиля выявляются хуже, чем на 2-е сутки. На телах нейронов молекулярного слоя на 7-е сутки уже четко определяются мелкие ГДК-иммунопозитивные аксосоматические синапсы (см. рис. 1, б). На 15-е сутки равномерное ГДК-иммунопозитивное окрашивание наблюдалось в телах КП вокруг иммунонегативных ядер и в проксимальной части дендритов. Интересно, что дендриты КП в другие сроки исследования так чётко не выявлялись (см. рис. 1). Тело и дендриты многих КП были покрыты переменным количеством ГДК-иммунопозитивных аксосоматических и аксодендритических синапсов. Среди зернистых нейронов определялись мелкие ГДК-иммунопозитивные гранулы, расположенные по периферии формирующихся клубочков мозжечка (см. рис. 1, в). На 45-е сутки ГДК-иммунореактивность выявлялась по всей цитоплазме тел КП, вокруг которых появлялись корзинчатые сплетения из ГДК-позитивных нервных волокон. В молекулярном слое иммунопозитивные по ГДК синапсы становились более мелкими, многочисленными и располагались более равномерно по дендритному дереву КП. ГДКиммунореактивность наблюдалась в телах звездчатых и корзинчатых нейронов, но она была значительно выше в аксонах этих нейронов. ГДКиммунопозитивные гранулы (аксодендритические синапсы) по периферии сформированных клубочков мозжечка становились крупнее (см. рис. 1, г). Ядра мозжечка. На 2-е сутки постнатального онтогенеза крысы в цитоплазме тел некоторых нейронов шаровидного и пробковидного ядер мозжечка выявлялась умеренная ГДК-иммунореактивность. На телах нейронов и в нейропиле ГАМК-ергические синапсы были единичны (рис. 2, а). На 7-е сутки между нейронами начинали выявляться ГДК-иммунопозитивные волокна и ГАМК-ергические аксодендритические синапсы, а на телах нейронов - аксосоматические синапсы (см. рис. 2, б). На 15-е и особенно на 45-е сутки число аксосоматических синапсов ещё больше возрастало. При этом тела большинства нейронов полностью окружаются ГДК-иммунопозитивными ободками. ГДК-иммунореактивность нейропиля также возрастет, за счёт увеличения числа и размеров аксодендритических синапсов (см. рис. 2, в-г). Обсуждение полученных данных. В зрелом мозгу ГАМК функционирует главным образом в качестве тормозного медиатора, а в процессе развития нервной системы она может выступать в качестве трофического фактора, влияя на пролиферацию, миграцию, дифференцировку, созревание синапсов и гибель клеток [9]. Этим можно объяснить выявленную нами экспрессию ГДК в нейронах коры мозжечка уже у двухсуточных крыс еще до начала синаптогенеза. По данным литературы, экспрессия мРНКГДК (гибридизация in situ) в КП достигала уровня взрослых крыс через 1 нед, в КГ - к 14-м суткам постнатального развития [13]. По нашим иммуногистохимическим данным, экспрессия ГДК в этих нейронах также достигала дефинитивного уровня, примерно, в эти же сроки. Наблюдаемое увеличение в молекулярном слое числа ГДК-иммунопозитивных нейронов и ГДК-иммунореактивности нейропиля с 7-х по 45-е сутки может быть связано с увеличением количества ГАМК-ергических звездчатых и корзинчатых нейронов, ростом их отростков и образованием синапсов на растущих дендритах КП. По данным гибридизации in situ, эти нейроны в молекулярном слое достигают конечного содержания мРНК-ГДК к 21-м суткам постнатального развития и позже [13]. Наблюдаемое нами постнатальное увеличение ГДК-иммунореактивности в зернистом слое мозжечка может быть связано с ГАМКергическими нейронами, КГ и КЛ, а также окончаниями аксонов КГ в клубочках мозжечка. В формирующихся нейронах ядер мозжечка крысы, которые образуются ещё пренатально, экспрессия ГДК наблюдалась нами уже на 2-е сутки постнатального онтогенеза, что соответствует литературным данным [7]. Во многих нейронах она сохранялась на 7-45-е сутки. Очень четко и закономерно в ядрах мозжечка в постнатальном онтогенезе увеличиваются количество и размеры аксосоматических и аксодендритических ГАМКергических синапсов, очевидно образованных КП, иммунореактивность аксонов которых отчетливо выявлялась как в нейропиле, так и в белом веществе мозжечка. Заключение. Таким образом, иммуногистохимическое исследование экспрессии глутаматдекарбоксилазы показало определенную динамику постнатального развития ГАМК-ергических нейронов мозжечка крысы. Установлено, что в цитоплазме тел всех типов ГАМК-ергических нейронов мозжечка экспрессия ГДК выявляется уже на 2-е сутки после рождения. В цитоплазме тел КП она достигает максимума на 7-е сутки, а в их дендритах - на 15-е сутки (затем уменьшается), в КГ - на 45-е сутки. ГАМК-ергические синапсы выявляются в коре, а также в шаровидном и пробковидном ядрах мозжечка на 7-е сутки и достигают максимального развития на 45-е сутки после рождения. Вклад авторов: Концепция и дизайн исследования: С. М. З. Сбор и обработка материала: О. А. К. Статистическая обработка данных: О. А. К. Написание текста: О. А. К. Редактирование: С. М. З. Авторы сообщают об отсутствии в статье конфликта интересов.×
Об авторах
Сергей Михайлович Зиматкин
Гродненский государственный медицинский университет
Email: smzimatkin@grsmu.by
кафедра гистологии, цитологии и эмбриологии Беларусь, 230015, г. Гродно, ул. Горького, 80
Ольга Анатольевна Карнюшко
Гродненский государственный медицинский университет
Email: karnyushko-olga@mail.ru
кафедра гистологии, цитологии и эмбриологии Беларусь, 230015, г. Гродно, ул. Горького, 80
Список литературы
- Коржевский Д. Э., Гилерович О. В., Кирик О. В. и др. Одновременное выявление глутаматдекарбоксилазы и синаптофизина в парафиновых срезах мозжечка крысы // Морфология. 2015. Т. 147, вып. 1. С. 74-77. doi: 10.1007/s11055-015-0205-6
- Оленев С. Н. Развивающийся мозг. Л.: Наука, 1978. 221 с.
- Сухарева Б. С., Дарий Е. Л., Христофоров Р. Р. Глутаматдекарбоксилаза: структура и каталитические свойства // Успехи биологической химии. 2001. № 41. С. 131-162.
- Altman J. Postnatal development of the cerebellar cortex in the rat. II. Phases in the maturation of Purkinje cells and of the molecular layer // J. Comp. Neurol. 1972. Vol. 145, № 4. P. 399-463. doi: 10.1002/cne.901450402
- Altman J. Postnatal development of the cerebellar cortex in the rat. III. Maturation of the components of the granular layer // J. Comp. Neurol. 1972. Vol. 145, № 4. P. 465-513. doi: 10.1002/ cne.901450403
- Dean I., Robertson S. J., Edwards F.A. Serotonin drives a novel GABAergic synaptic current recorded in rat cerebellar Рurkinje cells: a Lugaro cell to Purkinje cell synapse // J. Neurosci. 2003. Vol. 23, № 11. P. 4457-4469.
- Greif K. F., Erlander M. G., Tillakaratne N. K. et al. Postnatal expression of glutamate decarboxylases in developing rat cerebellum // Neurochem. Res. 1991. Vol. 16, № 3. P. 235-242. doi: 10.1007/bf00966086
- Kaufman D. L., Houser C. R., Tobin A. J. Two forms of the gamma-aminobutyric acid synthetic enzyme glutamate decarboxylase have distinct intraneuronal distributions and cofactor interactions // J. Neurochem. 1991. Vol. 56, № 2. P. 720-723.
- Owens D. F., Kriegstein A. R. Is there more to GABA than synaptic inhibition? // Nat. Rev. Neurosci. 2002. Vol. 3, № 9. P. 715-727. doi: 10.1038/nrn919
- Paxinos G., Watson C. The Rat Brain in stereotaxic coordinates. 7th Edition. San Diego: Academic Press, 2013.
- Schilling K., Oberdick J., Rossi F. et al. Besides Purkinje cells and granule neurons: an appraisal of the cell biology of the interneurons of the cerebellar cortex // Histochem. Cell Biol. 2008. Vol. 130, № 4. P. 601-615. doi: 10.1007/s00418-008-0483-y
- Uusisaari M., Knöpfel T. Functional classification of neurons in the mouse lateral cerebellar nuclei // Cerebellum (London, England). 2011. Vol. 10, № 4. P. 637-646. doi: 10.1007/s12311010-0240-3.
- Willcutts M. D., Morrison-Bogorad M. Quantitative in situ hybridization analysis of glutamic acid decarboxylase messenger RNA in developing rat cerebellum // Brain Res. Dev. Brain Res. 1991. Vol. 63, № 1-2. P. 253-264. doi: 10.1016/0165-3806(91)90085-w
- Zhang L., Goldman J. E. Developmental fates and migratory pathways of dividing progenitors in the postnatal rat cerebellum // J. Comp. Neurol. 1996. Vol. 370, № 4. P. 536-550. doi: 10.1002/ (SICI)1096-9861(19960708)370:4<536::AID-CNE9>3.0.CO;2-5
- Zhang L., Goldman J. E. Generation of cerebellar interneurons from dividing progenitors in white matter // J. Neuron. 1996. Vol. 16, № 1. P. 47-54. doi: 10.1016/s0896-6273(00)80022-7
Дополнительные файлы
