РАСПРЕДЕЛЕНИЕ АЛЬФА-ТУБУЛИНА В СТРУКТУРАХ ПЕРЕДНЕГО МОЗГА КРЫСЫ



Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Иммуногистохимически исследовано распределение белка микротрубочек α-тубулина в структурах переднего мозга крысы. Обнаружена неравномерность окраски при реакции на α-тубулин. Высокая иммунореактивность выявлена в поясной и пириформной коре, обонятельных бугорках и перекресте зрительных нервов. Наиболее слабая иммуногистохимическая реакция отмечена в полосатом теле, поверхностных слоях перегородки, поясе и структурах вокруг III желудочка мозга. Иммунореактивность в нейронах была отчетливо выражена по периферии перикариона и в апикальном дендрите. Высказано предположение, что интенсивность иммуногистохимической реакции на α-тубулин может отражать уровень функционального состояния нейронов.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Игорь Павлович Григорьев

Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины СЗО РАМН

Email: ipg-iem@yandex.ru
лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы, отдел общей и частной морфологии 197376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, 12

Маргарита Александровна Шкляева

Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины СЗО РАМН

Email: margarita.shkliaeva@student.spb.ru
лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы, отдел общей и частной морфологии 197376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, 12

Ольга Викторовна Кирик

Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины СЗО РАМН

Email: olga_kirik@mail.ru
лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы, отдел общей и частной морфологии 197376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, 12

Елена Георгиевна Гилерович

Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины СЗО РАМН

Email: iemmorphol@yandex.ru
лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы, отдел общей и частной морфологии 197376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, 12

Дмитрий Эдуардович Коржевский

Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины СЗО РАМН

Email: dek2@yandex.ru
лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы, отдел общей и частной морфологии 197376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, 12

Список литературы

  1. Коржевский Д. Э., Григорьев И. П. и Отеллин В. А. Применение обезвоживающих фиксаторов, содержащих соли цинка в нейрогистологических исследованиях. Морфология, 2006, т. 129, вып. 1, с. 85–86.
  2. Коржевский Д. Э., Карпенко М. Н. и Кирик О. В. Белки, ассоциированные с микротрубочками, как показатели дифференцировки и функционального состояния нервных клеток. Морфология, 2011, т. 139, вып. 1, с. 13–21.
  3. Dráber P., Leu F. J., Viklický V. and Damjanov I. Immunohisto chemical heterogeneity of alpha-tubulin in human epithelia revealed with monoclonal antibodies. Histochemistry, 1987, v. 87, № 2, p. 151–155.
  4. Field D. J., Collins R. A. and Lee J. C. Heterogeneity of vertebrate brain tubulins. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1984, v. 81, № 13, p. 4041–4045.
  5. Gray E. G., Westrum L. E., Burgoyne R. D. and Barton J. Synaptic organization and neuron microtubule distribution. Cell Tissue Res., 1982, v. 226, № 3, p. 579–588.
  6. Hyams J. S. and Lloyd C. W. Microtubules. New York: Wiley-Liss, 1993.
  7. Liu H. H. and Brady S. T. cAMP, tubulin, axonal transport, and regeneration. Exp. Neurol., 2004, v. 189, № 2, p. 199–203
  8. Matus A., Bernhardt R., Bodmer R. and Alaimo S. Microtubuteassociated protein 2 and tubulin are differently distributed in the dendrites of developing neurons. Neuroscience, 1986, v. 17, № 2, p. 371–389.
  9. Matus A. I., Walters B. B. and Mughal S. Immunohistochemical demonstration of tubulin associated with microtubules and synaptic junctions in mammalian brain. J. Neurocytol., 1975, v. 4, № 6, p. 733–744.
  10. MacRae T. H. Tubulin post-translational modifications: enzymes and their mechanisms of action. Eur. J. Biochem., 1997, v. 244, № 2, p. 265–278
  11. Naves F. J., Huerta J. J., Garcia-Suarez O. et al. Distribution of immunoreactivity for cytoskeletal (microtubule, microtubule-associated, and neurofilament) proteins in adult human dorsal root ganglia. Anat. Rec., 1996, v. 244, № 2, p. 246–256.
  12. Pellegrini F. and Budman D. R. Tubulin function, action of anti-tubulin arugs, and new drug development. Cancer Invest., 2005, v. 23, № 3, p. 264–273.
  13. Paxinos G. and Watson C. The rat brain in stereotaxic coordinates. San Diego, Academic Press, 1986.
  14. Tischfield M. A. and Engle E. C. Distinct α- and β-tubulin isotypes are required for the positioning, differentiation, and survival of neurons: new support for the «multi-tubulin» hypothesis. Biosci. Rep., 2012, v. 30, № 5, p. 319–330.
  15. Tsai L. H. and Gleeson J. G. Nucleokinesis in neuronal migration. Neuron, 2005, v. 46, № 3, p. 383–388.
  16. Villasante A., Wang D., Dobner P. et al. Six mouse a-tubulin mRNAs encode five distinct isotypes: Testisspecific expression of two sister genes. Mol. Cell. Biol., 1986, v. 6, № 7, p. 2409–2419.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Эко-Вектор, 2013


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: № 0110212 от 08.02.1993.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах