ОСОБЕННОСТИ РАСПРЕДЕЛЕНИЯ АЦЕТИЛХОЛИНЭСТЕРАЗЫ В ЗАДНЕЛАТЕРАЛЬНОМ ЯДРЕ ТАЛАМУСА КОШКИ



Цитировать

Полный текст

Аннотация

С помощью техники гистохимического выявления фермента ацетилхолинэстеразы (АХЭ) у 2-недельных котят (n=4) в отличие от котят в возрасте 14 нед (n=4) показано существование локусов с высокой активностью фермента в латеральном ядре заднелатерального комплекса таламуса. Выявленные локусы располагаются напротив подобных локусов в медиальном ядре заднелатерального комплекса. Обсуждается возможная связь между выявленными АХЭ-локусами и организацией таламокорковых и корково-таламических проекций.

Полный текст

Передача информации из сетчатки глаза в кору мозга осуществляется, главным образом, через таламические ядра, у кошки - через комплекс заднелатеральных ядер (ЗЛЯ) и ядер подушки. Комплекс ЗЛЯ состоит из двух ядер: латерального (ЗЛЯл) и медиального (ЗЛЯм), это деление основано на доминировании определённых проекций на эти структуры: из передних холмиков крыши среднего мозга - в ЗЛЯм и из первичной зрительной коры - в ЗЛЯл. Таким образом, ЗЛЯл, в отличие от других ядер в комплексе ЗЛЯ - подушка, получает бóльший объём афферентных волокон из зрительной коры [5]. Известно, что нейроны, связывающие это ядро со зрительной корой, распределены в нём не равномерно, но группируются в кластеры [2]. Зачастую кластеры инициальных нейронов являются основой модульной организации структуры, как это показано для коры, однако в ЗЛЯл до сих пор не обнаружена модульная организация, и это ядро рассматривали, скорее, как однородное по свойствам и химизму. Поскольку таламокорковые отношения закладываются в позднем пренатальном - раннем постнатальном онтогенезе, мы предположили, что основу упорядоченной организации инициальных нейронов ЗЛЯл следует искать у незрелых животных. В этом поиске мы обратили внимание на ацетилхолинэстеразу (АХЭ) - фермент, катализирующий гидролиз ацетилхолина. Ацетилхолин является не только нейромедиатором, но и нейромодулятором и контролирует процесс построения межнейронных связей [7], во время раннего развития в некоторых зрительных структурах обнаруживается врéменное неравномерное распределение продукта гистохимической АХЭ-реакции, которое у взрослых животных исчезает [8]. Цель нашего исследования - изучение распределения АХЭ в ЗЛЯл у котят. Материал и методы. Протоколы экспериментов были одобрены комиссией по этике Института физиологии им. И. П. Павлова РАН и выполнялись в соответствии с требованиями Директивы Совета Европейского Парламента по защите животных, используемых для экспериментальных и других научных целей (2010/63EU) об использовании животных для экспериментальных исследований. Исследование проведено на 8 нормально пигментированных котятах в возрасте 2 (n=4) и 14 (n=4) нед, росших в обычных виварных условиях. Под общим наркозом (золетил внутримышечно, 150 мг/кг) проводили транскардиальную перфузию животных, последовательно 0,9% раствором хлорида натрия и 4% параформальдегидом на 0,1 М фосфатном буфере. Извлеченный мозг помещали в 30% раствор сахарозы на 2 сут, на замораживающем микротоме OMS-69 (Reichert, Германия) изготавливали серию фронтальных срезов таламуса толщиной 50 мкм. АХЭ выявляли с помощью гистохимического модифицированного метода Карновского-Рута [9]. После промывки срезов в 0,1 M малеатном буфере (pH 6,3) срезы преинкубировали в растворе, содержащем 3,15 мM хлорида кобальта, 5 мM цитрата натрия и 2,5 мM ферроцианида калия в 0,1 M малеатном буфере (pH 6,3). После 30-минутной преинкубации срезы переносили во вторую порцию раствора, содержащего также смесь 160 мM ацетилхолинйодида и 40 мM ацетилтиохолинйодида. Длительность инкубации составляла 24 ч при 4º C. По окончании инкубации срезы промывали в малеатном буфере, монтировали на желатинизированные предметные стёкла, высушивали на воздухе, обезвоживали, просветляли в ксилоле и заключали в канадский бальзам. Продукт реакции представлял собой преципитат изумруднозелёного цвета. Оцифровку срезов и морфометрический анализ проводили с помощью компьютерной установки, оснащенной световым микроскопом Jenaval (Carl Zeiss, Германия), камерой Optronix (Baumer Optronic GmbH, Германия). Морфометрический анализ проводили в свободной программе ImageJ. Распределениея АХЭ в ЗЛЯл у каждого животного исследовали на 10 срезах. Исследования проведены с использованием оборудования «Ресурсного центра молекулярных и клеточных технологий» Санкт-Петербургского государственного университета (РЦ РМиКТ СПбГУ). Результаты исследования. У всех котят наибольший уровень активности АХЭ наблюдался в ЗЛЯм и наружном коленчатом теле, а ЗЛЯл в целом было окрашено слабо. При этом у 2-недельных животных в ЗЛЯл выявлялись шаровидные локусы с более интенсивно окрашенным нейропилем (рисунок, а, в). Эти локусы лучше выражены на срезах стереотаксического уровня Размер выявленных локусов с высоким содержанием АХЭ в ЗЛЯл составил 200- 350 мкм - вдоль длинной оси и 250-350 мкм - вдоль короткой оси; расстояние между центрами локусов составило 500-825 мкм. Важно отметить, что на всех срезах каудального уровня A3,0у всех животных всегда выявляется равное количество локусов с высоким содержанием АХЭ [3, 4]. На ростральных уровнях таламуса эти локусы меняют свою форму: некоторые сливаются друг с другом, другие разделяются на более мелкие; при этом теряется их строгая упорядоченность. Контрастирование изображений позволяет увидеть, что в ЗЛЯм также присутствуют локусы с более интенсивно окрашенным нейропилем; они расположены напротив соответствующих локусов в ЗЛЯл. Локусы с высоким содержанием АХЭ в ЗЛЯл и ЗЛЯм расположены напротив друг друга (см. рисунок, б). У животных в возрасте 14 нед ядро ЗЛЯл имеет однородную слабую окраску и не содержит локусов с отличающимся от среднего по ядру уровнем активности АХЭ (см. рисунок, в). Обсуждение полученных данных. В данной работе мы обнаружили в ЗЛЯл систему упорядоченно расположенных локусов с высоким содержанием АХЭ. До этого подобное неравномерное распределение АХЭ было выявлено в других зрительных структурах: ЗЛЯм таламуса и передних холмиках крыши среднего мозга [5]. Однако эти структуры сами по себе характеризуются высоким содержанием АХЭ; тогда как содержание АХЭ в ЗЛЯл у взрослых кошек [3] и подростков (как мы показали в этой работе) низкое. У 2-недельных котят локусы с высоким содержанием АХЭ расположены в ЗЛЯм и ЗЛЯл напротив друг друга. Принимая во внимание тот факт, что ЗЛЯм получает основные проекции от передних холмиков [5], можно предположить, что АХЭ-локусы в ЗЛЯл также маркируют зоны, получающие проекции от передних холмиков. Это предположение подкрепляется данными исследований, в которых в наиболее латеральной части ЗЛЯл на границе с подушкой были выявлены меченые нейроны после введения антероградного трейсера в передние холмики крыши среднего мозга [1]. Нейроны ЗЛЯл, посылающие афферентные волокна в зрительную кору, организованы кластерным образом [2]; более того, подобная кластеризация показана также и для нейронов, получающих ретинальные, стволовые и корковые проекции [1, 4, 6]. Таким образом, как следует из сказанного выше, во-первых, ЗЛЯл можно считать модульной структурой, во-вторых, вероятным кандидатом на роль молекулярной основы этой модульности могут быть локусы с высоким содержанием АХЭ. Работа поддержана грантом ОФФМ. Коллектив авторов выражает признательность проф. R. Veh (Institut für Anatomie der Charité, Humboldt-Universität Berlin, Germany) за помощь при постановке гистохимической реакции выявления ацетилхолинэстеразы. Авторы благодарят Н. И. Никитину, Н. И. Соколову и О. П. Казину за помощь в обработке гистологического материала и работе с животными.
×

Об авторах

Наталья Сергеевна Меркульева

Институт физиологии им. И. П. Павлова РАН

Email: mer-natalia@yandex.ru
лаборатория нейроморфологии 199034, Санкт-Петербург, наб. Макарова, 6

Александр Александрович Михалкин

Институт физиологии им. И. П. Павлова РАН

Email: michalkin@mail.ru
лаборатория нейроморфологии 199034, Санкт-Петербург, наб. Макарова, 6

Александр Александрович Вещицкий

Институт физиологии им. И. П. Павлова РАН

Email: veschickiyalex@mail.ru
лаборатория нейроморфологии 199034, Санкт-Петербург, наб. Макарова, 6

Список литературы

  1. Abramson B. P., Chalupa L. M. Multiple pathways from the superior colliculus to the extrageniculate visual thalamus of the cat // J. Comp. Neurol. 1988. Vol. 271. P. 397-418.
  2. Berson D. M., Graybiel A. M. Organization of the striate-recipient zone of the cat’s lateralis posterior-pulvinar - complex and it’s relation with the geniculostriate system // Neurosience. 1983. Vol. 9. P. 337-372.
  3. Berson D. M., Graybiel A. M. Tectorecipient zone of cat lateral posterior nucleus: evidence that collicular afferents contain acetylcholinesterase // Exp. Brain Res. 1991. Vol. 84. P. 478-486.
  4. Boire D., Matteau I., Casanova C., Ptito M. Retinal projections to the lateral posterior-pulvinar complex in intact and early visual cortex lesioned cats // Exp. Brain Res. 2004. Vol. 159. P. 185-196.
  5. Graybiel A. M., Berson D. M. Histochemical identification and afferent connections of subdivisions in the lateralis posterior-pulvinar complex and related thalamic nuclei in the cat // Neuroscience. 1980. Vol. 5. P. 1175-1238.
  6. Pospichal M. W., Stepniewska I., Wimborne B. M., Kaas J. H. Lateral division of the lateral posterior region: Connections with area 18 in cats // Vis. Neurosci. 1996. Vol. 13. P. 1167-1172.
  7. Rasmusson D. D. The role of acetylcholine in cortical synaptic plasticity //Behav. Brain Res. 2000. Vol. 115. P. 205-218.
  8. Robertson R. T., Poon H. K., Mirrafati S. J., Yu J. Transient patterns of acetylcholinesterase activity in developing thalamus: a comparative study in rodents // Dev. Brain Res. 1989. Vol. 48. P. 309-315.
  9. Schatz C. R., Geula C., Morecraft R. J., Mesulam M. M. A one-step cobalt-ferrocyanide method for histochemical demonstration of acetylcholinesterase activity in central nervous system tissue // Histochem. Cytochem. 1992. Vol. 40. P. 431-434.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Эко-Вектор, 2015



Периодический печатный журнал зарегистрирован как СМИ Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор): 0110212 от 08.02.1993.
Сетевое издание зарегистрировано как СМИ Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор): ЭЛ № ФС 77 - 84733 от 10.02.2023.