Строение лимфатических узлов крыс при гнойном воспалении в регионе в условиях воздействия интерлейкином-2



Цитировать

Полный текст

Аннотация

Методами световой микроскопии исследовали строение регионарных к гнойной ране лимфатических узлов крыс в условиях лечения интерлейкином-2 (ИЛ-2). Было обнаружено, что в лимфатических узлах контрольных животных после введения ИЛ-2 уменьшается площадь коркового плато при одновременном расширении паракортикальной зоны. У крыс с нелеченной гнойной раной в регионарных лимфатических узлах уменьшаются относительные размеры коркового плато за счет расширения структур мозгового вещества. В лимфоидной ткани и синусах лимфатических узлов присутствуют эритроциты, увеличивается число иммуно- и плазмобластов, макрофагов и нейтрофильных гранулоцитов. Применение ИЛ-2 на фоне гнойной воспалительной реакции способствует большей сохранности структуры данных органов и цито-архитектоники их различных зон. Однако введение данного цитокина приводит к повышению сосудистой проницаемости и увеличивает возможность развития аллергических реакций, что требует разработки и применения мер профилактики указанных побочных эффектов и осложнений.

Об авторах

И В МАЙБОРОДИН

Научно-исследовательский институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск

Email: imai@mail.ru
Центр новых медицинских технологий; Научно-исследовательский институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск

Е И СТРЕЛЬЦОВА

Научно-исследовательский институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск

Центр новых медицинских технологий; Научно-исследовательский институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск

Д В ЕГОРОВ

Научно-исследовательский институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск

Центр новых медицинских технологий; Научно-исследовательский институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск

О А ЗАРУБЕНКОВ

Научно-исследовательский институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск

Центр новых медицинских технологий; Научно-исследовательский институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск

А И ШЕВЕЛА

Научно-исследовательский институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск

Центр новых медицинских технологий; Научно-исследовательский институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск

С В СИДОРОВ

Научно-исследовательский институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск

Центр новых медицинских технологий; Научно-исследовательский институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск

Т М РОДИШЕВА

Научно-исследовательский институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск

Центр новых медицинских технологий; Научно-исследовательский институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск

Список литературы

  1. Златник Е.Ю. и Голотина Л.Ю. Применение ронколейкина для ЛАК-терапии рака яичника. Вопр. онкол., 2005, т. 51, № 6, с. 680-684.
  2. Майбородин И.В., Колмакова И.А., Притчина И.А. и Чупина В.В. Изменения десны при сочетании артериальной гипертензии с периодонтитом. Стоматология, 2005, т. 84, № 6, с. 15-19.
  3. Andre N.D., Barbosa D.S., Munhoz E. et al. Measurement of cytotoxic activity in experimental cancer. J. Clin. Lab. Anal., 2004, v. 18, № 1, p. 27-30.
  4. Balemans L.T., Mattijssen V., Steerenberg P.A. et al. Locoregional therapy with polyethylene-glycol-modified interleukin-2 of an intradermally growing hepatocellular carcinoma in the guinea pig induces T-cell-mediated antitumor activity. Cancer Immunol. Immunother., 1993, v. 37, № 1, p. 7-14.
  5. Bielawska-Pohl A., Crola C., Caignard A. et al. Human NK cells lyse organ-specific endothelial cells: analysis of adhesion and cytotoxic mechanisms. J. Immunol., 2005, v. 174, № 9, p. 5573-5582.
  6. Casley-Smith J.R. The lymphatic system in inflammation. In: The inflammatory process, 2nd ed., 1973, v. 2, p. 161-204.
  7. Collins R.A. and Oldham G. Recombinant human interleukin 2 induces proliferation and immunoglobulin secretion by bovine B-cells: tissue differences and preferential enhancement of immunoglobulin A. Vet. Immunol. Immunopathol., 1993, v. 36, № 1, p. 31-43.
  8. Dillman R.O. Lymphocyte therapy of renal cell carcinoma. Expert. Rev. Anticancer Ther., 2005, v. 5, № 6, p. 1041-1051.
  9. D'Souza W.N. and Lefrancois L. IL-2 is not required for the initiation of CD8 T cell cycling but sustains expansion. J. Immunol., 2003, v. 171, № 11, p. 5727-5735.
  10. Duke S.S., King L.S., Jones M.R. et al. Human recombinant interleukin 2-activated sheep lymphocytes lyse sheep pulmonary microvascular endothelial cells. Cell. Immunol., 1989, v. 122, № 1, p. 188-199.
  11. Hancock W.W., Kobzik L., Colby A.J. et al. Detection of lymphokines and lymphokine receptors in pulmonary sarcoidosis. Immunohistologic evidence that inflammatory macrophages express IL-2 receptors. Am. J. Pathol., 1986, v. 123, № 1, p. 1-8.
  12. LeBel C.P., Langlois L., Bell D.P. et al. Pharmacokinetic, pharmacodynamic, and pharmacotoxic profiles of recombinant-methionyl human interleukin-2alanine-125. (r-metHuIL-2ala125.) following intravenous and subcutaneous administration in rats. Hum. Exp. Toxicol., 1995, v. 14, № 11, p. 909-915.
  13. Maurer T. and Kimber I. Draining lymph node cell activation in guinea pigs: comparisons with the murine local lymph node assay. Toxicology., 1991, v. 69, № 2, p. 209-218.
  14. McCulloch P., Gallagher G., Walsh L.P. et al. Lymphokine-activated killer (LAK) cells modulate the effects of IL-2 on a T cellmediated immune response. Clin. Exp. Immunol., 1991, v. 85, № 3, p. 519-524.
  15. Musiani P., Campora de E., Valitutti S. et al. Effect of low doses of interleukin-2 injected perilymphatically and peritumorally in patients with advanced primary head and neck squamous cell carcinoma. J. Biol. Response Mod., 1989, v. 8, № 6, p. 571-578.
  16. Nomura K. and Fujioka T. Study of adoptive immunotherapy for metastatic renal cell carcinoma with lymphokine-activated killer (LAK) cells and interleukin-2. II. Clinical evaluation. Nippon Hinyokika Gakkai Zasshi., 1993, v. 84, № 5, p. 831-840.
  17. Pectasides D., Varthalitis J., Kostopoulou M. et al. An outpatient phase II study of subcutaneous interleukin-2 and interferon-alpha-2b in combination with intravenous vinblastine in meta-static renal cell cancer. Oncology, 1998, v. 55, № 1, p. 10-15.
  18. Poudrier J. and Owens T. Th1 and Th2 help for B cells: differential capacity for induction of autonomous responsiveness to IL-2. Int. Immunol., 1995, v. 7, № 6, p. 1021-1027.
  19. Quan W.Jr., Ramirez M., Taylor C. et al. High-dose continuous infusion plus pulse interleukin-2 and famotidine in metastatic kidney cancer. Cancer Biother. Radiopharm., 2005, v. 20, № 1, p. 36-40.
  20. Spieker-Polet H., Yam P.C., Arbieva Z. et al. In vitro induction of the expression of multiple IgA isotype genes in rabbit B cells by TGF-beta and IL-2. J. Immunol., 1999, v. 162, № 9, p. 5380-5388.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Эко-Вектор, 2009


Периодический печатный журнал зарегистрирован как СМИ Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор): № 0110212 от 08.02.1993.
Сетевое издание зарегистрировано как СМИ Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор): ЭЛ № ФС 77 - 84733 от 10.02.2023.