INTERSTRAIN DIFFERENCES IN THE PARAMETERS OF SPERMATOGENESIS IN INBRED MICE



如何引用文章

全文:

详细

The aim of the present work was a comparative study of basic parameters of spermatogenesis in mice of inbred PT (n=99) and CBA/Lac (n=81) strains, starting with the puberal period of development until Day 80. The number of spermatozoa was measured in the caudal portions of both epididymides (epididymal reserve), morphological characteristics and spermatozoa motility were evaluated, and body, testes and epididymal weight was determined. Starting from puberty and thereafter, it was found that CBA/Lac males as compared with RT mice had lower testicular mass and epididymal spermatozoa number. However, spermatozoa functional capacity of CBA/Lac males was higher as compared to that of PT mice, since starting with the puberal period, they were characterized by a lower frequency of abnormal forms, and in the post-puberal period - by higher relative concentrations of motile spermatozoa. Thus, in the males of laboratory mice studied, the interstrain differences in the key parameters of spermatogenesis related to fertility, began to emerge in the puberal period, and their interstrain variability may have a compensatory character.

全文:

Одним из важнейших компонентов, определяющих мужскую плодовитость, является сперматогенез. Выработка сперматозоидов и приобретение ими функциональной активности представляет собой сложный процесс, который проходит в семеннике, придатке семенника и завершается в репродуктивном тракте самки [3, 5]. Он регулируется эндокринными и паракринными факторами, среди которых тестостерон и фолликулостимулирующий гормон (ФСГ) принципиально важны для инициации и поддержания сперматогенеза [3, 7]. Сустентоциты (клетки Сертоли) семенника играют ведущую роль в сперматогенезе, организуя его пространственно и функционально, обеспечивая функционирование гематотестикулярного барьера и снабжая развивающиеся половые клетки нутриентами и ростовыми факторами [10, 11]. Количество сустентоцитов определяет размеры семенников, число половых клеток в них и выработку сперматозоидов [3, 8, 10]. Инбредные линии мышей являются перспективной моделью для изучения физиологической и наследственной природы сперматогенеза, поскольку могут сильно отличаться различными функциональными маркерами сперматогенеза [1, 2]. Многие гены и процессы, вовлеченные в сперматогенез, по-видимому, идентичны у мыши, человека и сельскохозяйственных животных, что позволяет с известной осторожностью переносить полученные данные на человека и другие виды животных [3]. Мыши многих инбредных линий, как правило, хорошо размножаются и не имеют серьезных репродуктивных нарушений и, таким образом, могут представлять собой мощный источник естественного наследственного разнообразия плодовитости. Основными функциональными маркерами сперматогенеза являются выработка, подвижность и строение сперматозоидов, которые тесно связаны с плодовитостью [3, 4, 6, 8, 9]. В наших предыдущих исследованиях у взрослых самцов мышей 13 инбредных линий обнаружены межлинейные различия количества сперматозоидов в придатке семенника, доли подвижных и морфологически аномальных сперматозоидов, при этом наиболее контрастными оказались линии PT и CBA/Lac [1, 2]. Цель настоящей работы - установить, когда у самцов мышей инбредных линий PT и CBA/Lac появляются межлинейные различия перечисленных выше показателей и выявить характер их взаимосвязи, начиная с пубертатного и заканчивая постпубертатным периодом онтогенеза (возраст от 35 до 80 сут). Материал и методы. Исследование проведено на самцах мышей (n=180) двух инбредных линий PT (n=99) и CBA/Lac (n=81) в возрасте 35, 45, 70 и 80 сут, не имевших сексуального опыта. Все экспериментальные процедуры выполнены с соблюдением принципов гуманности, изложенных в директивах Европейского сообщества (86/609/ЕЕС) и Хельсинской декларации по защите позвоночных животных, используемых для лабораторных целей. Мыши росли в стандартных условиях вивария при фиксированном световом режиме 12 ч/12 ч (день-ночь соответственно) и температуре 22 ºС, воду и корм животные получали без ограничений. Самок на последней неделе беременности отсаживали в отдельные клетки, день родов считали 1-ми сутками жизни потомства. На следующие сутки после родов подсчитывали величину помета у каждой самки. Через 1 нед после родов число детёнышей в помёте корректировали до 3-5 (в среднем 4,0±0,1). Потомство отсаживали от матерей в возрасте 30 сут, формируя группы самцов из разных пометов, но одного возраста и одной линии по 4-6 особей. Для снятия эффекта группового содержания за 4 сут до декапитации животных отсаживали в индивидуальные клетки (изоляция). Самцов декапитировали в одно и то же время суток (12.00-13.00), предварительно проводили их взвешивание. Немедленно после декапитации у самцов выделяли семенники и каудальную часть обоих придатков семенника и взвешивали. Подсчитывали количество сперматозоидов в каудальном отделе обоих придатков (эпидидимальный резерв сперматозоидов), которое у крыс и мышей положительно коррелирует с суточной выработкой сперматозоидов семенниками и фертильностью [3, 4, 6, 8, 9]. Каждую пару придатков семенника измельчали в 200 мкл культуральной среды DMEM (Биолот, Россия), добавляли 800 мкл среды, после встряхивания в шейкере в течение 10 мин суспензию фильтровали через нейлоновый фильтр Falcon (диаметр сетки 70 мкм). Температуру среды поддерживали на уровне 37 ºС при всех манипуляциях. Количество сперматозоидов подсчитывали в камере Горяева под световым микроскопом при увеличении 200 после окраски суспензии сперматозоидов 1% водным раствором эозина. Долю подвижных сперматозоидов оценивали с помощью спермоанализатора SFA 500-2 (Биола, Россия). Для подсчета аномальных головок сперматозоидов аликвоту суспензии сперматозоидов, окрашенных эозином, помещали на предметное стекло, делали мазок. После высыхания мазок заключали в канадский бальзам и покрывали предметным стеклом. Подсчет аномальных головок сперматозоидов проводили под световым микроскопом при увеличении 400 по методике, описанной ранее [1, 2]. Проводили двухфакторный дисперсионный анализ (главные факторы - генотип и возраст) с использованием пакета программ «STATISTICA 8.0». Для всех исследованных показателей высчитывали выборочную среднюю и ошибку выборочной средней. Различия между выборочными средними оценивали с использованием теста Duncan в рамках двухфакторного дисперсионного анализа. Различия считали статистически значимыми при P<0,05. Результаты исследования. При внутрилинейных скрещиваниях величина помета у мышей линии РТ оказалась значимо меньше, чем у CBA/Lac, и составила 5,3±0,2 (n=36) и 6,1±0,2 (n=21) соответственно (P<0,01). Двухфакторный дисперсионный анализ позволил установить влияние генотипа (F1,156=202,19; P<0,001), возраста=218,03; P<0,001) на массу тела, а также взаимодействие факторов (F=6,13; P<0,001). Масса тела значимо росла у самцов обоих генотипов от 35-х до 70-х суток, достигая в этот период максимального уровня (P<0,001) и не увеличиваясь в дальнейшем. В каждом возрастном периоде самцы CBA/Lac по сравнению с РТ характеризовались большей массой тела (P<0,001, таблица). Двухфакторный дисперсионный анализ выявил значимое влияние гено=4,88; P<0,05) и возраста (F3,156=68,22; типа (F1,156P<0,001) на массу семенников, которая у самцов обеих линий прогрессивно и значимо росла от 35-х до 70-х суток постнатальной жизни, достигая на 70-е сутки максимальных значений и не увеличиваясь в дальнейшем. Самцы линии PT, начиная с 45-х суток и позже, имели бóльшую массу семенников, чем мыши линии CBA/Lac (см. таблицу). В изученный период онтогенеза обнаружено значимое влияние возраста только на массу обоих придатков семенника (F3,156=257,76; P<0,001). Значение этого признака прогрессивно росло у самцов обеих линий от 35-х до 70-х суток, не увеличиваясь в дальнейшем (см. таблицу). Установлено значимое влияние генотипа =22,18; P<0,001) и возраста (F3,153=496,70; (F1,153) увеличивалось в исследуемый период онтогенеза у самцов обеих линий и в возрасте 70 сут достигало максимального уровня. Таким образом, у самцов мышей обеих линий к 70-м суткам постнатальной жизни развитие этого признака завершалось. Начиная с 45-х суток и позже, количество сперматозоидов в придатках у самцов мышей линии PT было значимо выше, чем у CBA/Lac (P<0,01; рисунок, а). Двухфакторный дисперсионный анализ доли подвижных сперматозоидов позволил выявить значимое влияние генотипа (F1,149=11,23; P<0,01), возраста (F3,149=160,85; P<0,0001) и взаимодействие факторов (F=6,55; P<0,001). Доля подвижных сперматозоидов значительно увеличивалась к 70-м суткам у самцов обеих линий, достигая в этот период максимального значения лишь у самцов РТ, в то время как у самцов CBA/ Lac этот показатель продолжал расти до 80-х суток (P<0,001; см. рисунок, б). На 80-е сутки доля подвижных сперматозоидов у самцов линии CBA/ Lac была значимо выше, чем у мышей линии РТ (P<0,001; см. рисунок, б). Двухфакторный дисперсионный анализ позволил выявить значимое влияние генотипа (F=33,42; P<0,0001) и возраста (F=257,21; 1,1263,126 P<0,0001) на долю морфологически аномальных сперматозоидов. Последняя значительно снижалась к 70-м суткам постнатального развития у самцов обеих линий, достигая к этому возрасту минимальных значений и не меняясь в дальнейшем (P<0,001; см. рисунок, в). В любом возрасте доля аномальных сперматозоидов у самцов линии CBA/Lac была значимо ниже, чем у РТ (P<0,05; см. рисунок, в). Обсуждение полученных данных. У самцов мышей линии РТ и СВА масса тела и репродуктивных органов (семенников и придатков) достигала дефинитивных значений к возрасту 70 сут, так же как количество эпидидимальных сперматозоидов, доля подвижных и морфологически аномальных сперматозоидов, за исключением самцов линии СВА/Lac, у которых доля подвижных сперматозоидов продолжала увеличиваться до 80-х суток. Таким образом, половой зрелости, если ее определять по доле подвижных сперматозоидов, самцы линии СВА/Lac достигают позже, чем мыши линии РТ, в период, когда другие показатели сперматогенеза у самцов этой линии уже находятся на дефинитивном уровне. Плодовитость у самцов млекопитающих одного и того же вида значительно варьирует, что может быть обусловлено влиянием генетических факторов на выработку, нормальное строение и подвижность сперматозоидов [4, 6]. В нашей работе установлено, что самцы линии PT характеризуются более высоким эпидидимальным резервом сперматозоидов и большей массой семенников, чем самцы линии CBA/Lac, начиная с периода полового созревания, т. е. изменчивость этих признаков имеет координированный характер. Учитывая функциональную взаимосвязь количества сустентоцитов в семеннике, выработки сперматозоидов и размера семенников [10], вероятно, что обнаруженные межлинейные различия могут быть обусловлены бóльшим количеством сустентоцитов в семенниках у самцов линии PT, чем CBA/Lac. Прямой подсчет сустентоцитов мог бы дать дополнительную информацию о причинах межлинейных различий выработки сперматозоидов и массы семенников у самцов этих линий. Более низкое количество эпидидимальных сперматозоидов у самцов линии CBA/Lac, чем РТ, сопряжено с пониженной долей морфологически аномальных сперматозоидов и повышенной - подвижных сперматозоидов, т. е. наблюдается компенсаторное усиление одних параметров сперматогенеза при понижении других. Полученные данные показывают, что изменчивость параметров сперматогенеза может иметь компенсаторный характер, что позволяет поддерживать фертильность самцов на оптимальном уровне, достаточном для успешного размножения. Нормальное строение и адекватная подвижность сперматозоидов, влияющая на способность преодолевать физические барьеры в репродуктивном тракте самок и оплодотворять яйцеклетку, имеют решающее значение в формировании репродуктивного потенциала самцов, таким образом, плодовитость самцов в значительной степени может определяться этими показателями [3, 6, 8]. В настоящее время поиску конкретных признаков сперматозоидов, связанных с мужской плодовитостью, стали уделять большое внимание в самом разном контексте: в репродуктивной медицине, при разведении крупного рогатого скота и поддержании высокого репродуктивного потенциала животных в природных популяциях. Можно надеяться, что дальнейшее исследование фенотипической и генетической гетерогенности компонентов мужской плодовитости и связанных с ней морфологических и функциональных дефектов сперматозоидов позволит найти четкие прогностические критерии, пригодные для практического применения в диагностике мужского бесплодия и субфертильности, а также селекционных программах улучшения репродуктивного потенциала домашних животных.
×

作者简介

L. Osadchuk

RAS SB Institute of Cytology and Genetics; Novosibirsk State Agrarian University

Email: losadch@bionet.nsc.ru
Sector of Endocrinological Genetics; Scientific Research Department

M. Kleshyov

RAS SB Institute of Cytology and Genetics; Novosibirsk State Agrarian University

Email: max82cll@bionet.nsc.ru
Sector of Endocrinological Genetics; Scientific Research Department

参考

  1. Осадчук Л. В. Тестикулярная функция у мышей инбредных линий BALB/cLAC, PT и CBA/Lac // Росс. физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 2010. Т. 96, № 2. С. 183-190.
  2. Осадчук Л. В., Тупикин А. Е., Морозов И. В. и др. Фенотипическая вариабельность сперматогенеза и поиск ассоциаций с генным полиморфизмом у мышей 13 инбредных линий // Генетика. 2012. Т. 48, № 8. С. 966-975.
  3. Borg C. L., Wolski K. M., Gibbs G. M., O’Bryan M. K. Phenotyping male infertility in the mouse: how to get the most out of a ‘nonperformer’ // Hum. Reprod. Update. 2010. Vol. 16. P. 205-224.
  4. Chapin R. E., Sloane R. A., Haseman J. K. The relationships among reproductive endpoints in Swiss mice, using the reproductive assessment by Continuous Breeding database // Fundam. Appl. Toxicol. 1997. Vol. 38. P. 129-142.
  5. Cooper T. G. Sperm maturation in the epididymis: a new look at an old Problem // Asian J. Androl. 2007. Vol. 9. P. 533-539.
  6. Gomendio M., Malo A. F., Garde J., Roldan E. R. S. Focus on determinants of male fertility. Sperm traits and male fertility in natural populations // Reproduction. 2007. Vol. 134. P. 19-29.
  7. Holdcraft R. W., Braun R. E. Hormonal regulation of spermatogenesis // Int. J. Androl. 2004. Vol. 27. P. 335-342.
  8. Perreault S. D., Cancel A. M. Significance of incorporating measures of sperm production and function into rat toxicology studies // Reproduction. 2001. Vol. 121. P. 207-216.
  9. Robb G. W., Amann R. P., Killian G. J. Daily sperm production and epididymal sperm reserves of pubertal and adult rats // J. Reprod. Fertil. 1978. Vol. 54. P. 103-107.
  10. Sharpe R. M., McKinnell C., Kivlin C., Fisher J. S. Proliferation and functional maturation of Sertoli cells, and their relevance to disorders of testis function in adulthood // Reproduction. 2003. Vol. 125. P. 769-784.
  11. Tarulli G. A., Stanton P.G., Meachem S. J. Is the adult Sertoli cell terminally differentiated? // Biol. Reprod. 2012. Vol. 87. P. 1-11.

补充文件

附件文件
动作
1. JATS XML

版权所有 © Eco-Vector, 2016



Периодический печатный журнал зарегистрирован как СМИ Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор): 0110212 от 08.02.1993.
Сетевое издание зарегистрировано как СМИ Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор): ЭЛ № ФС 77 - 84733 от 10.02.2023.