Влияние природы растворителя на биологическую активность золотосодержащих систем

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Методом металло-парового синтеза с использованием изопропанола, ацетона или толуола в качестве дисперсионной среды получены наночастицы золота. Изучено электронное состояние металла и природа сорбированного слоя на поверхности наночастиц. Анализ фотоэлектронных спектров полученных наночастиц показал, что, независимо от условий синтеза, золото во всех образцах находится в состояниях Au0, Au+ и Au3+ и на всех типах металлических частиц присутствует углеродосодержащая оболочка. Исследование противораковой активности наночастиц in vitro в отношении ряда клеточных линий человека показало зависимость биологической активности от времени взаимодействия образцов, полученных в дисперсионной среде толуола. Метаболическая активность наночастиц золота, полученных в среде изопропанола или ацетона, снижалась в самом раннем периоде тестирования.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

А. А. Воронова

Институт элементоорганических соединений им. А.Н. Несмеянова Российской академии наук

Email: alexandervasilkov@yandex.ru
Россия, 119334 Москва

А. В. Наумкин

Институт элементоорганических соединений им. А.Н. Несмеянова Российской академии наук

Email: alexandervasilkov@yandex.ru
Россия, 119334 Москва

А. Ю. Переяславцев

Всероссийский научно-исследовательский институт автоматики им. Н.Л. Духова

Email: alexandervasilkov@yandex.ru
Россия, 127030 Москва

Ц. Бацалова

Пловдивский университет имени Паисия Хилендарского

Email: alexandervasilkov@yandex.ru

Faculty of Biology

Болгария, 4000 Пловдив

Б. Джамбазов

Пловдивский университет имени Паисия Хилендарского

Email: alexandervasilkov@yandex.ru

Faculty of Biology

Болгария, 4000 Пловдив

А. Ю. Васильков

Институт элементоорганических соединений им. А.Н. Несмеянова Российской академии наук

Автор, ответственный за переписку.
Email: alexandervasilkov@yandex.ru
Россия, 119334 Москва

Список литературы

  1. Mioc A., Mioc M., Ghiulai R., Voicu M., Racoviceanu R., Trandafirescu C., Dehelean C., Coricovac D., Soica C. // Curr. Med. Chem. 2019. V. 26. № 35. P. 6493–6513. https://doi .org/10.2174/0929867326666190506123721
  2. Riley R.S., Day E.S. // Wiley Interdiscip. Rev. Nanomed. Nanobiotechnol. 2017. V. 9. № 4. P. e1449. https://doi .org/10.1002/wnan.1449
  3. Penders J., Stolzoff M., Hickey D.J., Andersson M., Webster T.J. // Int. J. Nanomedicine. 2017. V. 12. P. 2457–2468. https://doi .org/10.2147/IJN.S124442
  4. Zhang J., Mou L., Jiang X. // Chem. Sci. 2020. V. 11. № 4. P. 923–936. https://doi .org/10.1039/C9SC06497D
  5. Vigderman L., Zubarev E.R. // Adv. Drug Deliv. Rev. 2013. V. 65. № 5. P. 663–676. https://doi .org/10.1016/j.addr.2012.05.004
  6. Siddique S., Chow J.C.L. // Appl. Sci. 2020. V. 10. № 11. P. 3824–3844. https://doi .org/10.3390/app10113824
  7. Voronova A.A., Naumkin A.V., Vasil’kov A.Yu. // INEOS OPEN. 2022. V. 5. № 3. P. 79–84. https://doi .org/10.32931/io2215a
  8. Wang P., Wang X., Wang L., Hou X., Liu W., Chen C. // Sci. Technol. Adv. Mater. 2015. V. 16. № 3. P. 034610. https://doi .org/10.1088/1468-6996/16/3/034610
  9. Srijampa S., Buddhisa S., Ngernpimai S., Leelayuwat C., Proungvitaya S., Chompoosor A., Tippayawat P. // Bioconjugate Chem. 2020. V. 31. № 4. P. 1133–1143. https://doi .org/10.1021/acs.bioconjchem.9b00847
  10. Schaeublin N.M., Braydich-Stolle L.K., Schrand A.M., Miller J.M., Hutchison J., Schlager J.J., Hussain, S.M. // Nanoscale. 2011. V. 3. № 2. P. 410–420. https://doi .org/10.1039/C0NR00478B
  11. Zhang R., Kiessling F., Lammers T., Pallares R.M. // Drug Deliv. Transl. Res. 2023. V. 13. № 2. P. 378–385. https://doi .org/10.1007/s13346-022-01232-4
  12. Vasil’kov A., Tseomashko N., Tretyakova A., Abidova A., Butenko I., Pereyaslavtsev A., Arkharova N., Volkov V., Shtykova E. // Coatings. 2023. V. 13. № 8. P. 1315. https://doi .org/10.3390/coatings13081315
  13. Rubina M.S., Pigaleva M.A., Butenko I.E., Budnikov A.V., Naumkin A.V., Gromovykh T.I., Lutsenko S.V., Vasil’kov A.Yu. // Dokl. Phys. Chem. 2019. V. 488. P. 146–150. https://doi .org/10.1134/S0012501619100026
  14. Vasil’kov A., Migulin D., Naumkin A., Volkov I., Butenko I., Golub A., Sadykova V., Muzafarov A. // Pharmaceutics. 2023. V. 15. № 3. P. 809. https://doi .org/10.3390/pharmaceutics15030809
  15. Vasil’kov A., Voronova A., Batsalova T., Moten D., Naumkin A., Shtykova E., Volkov V., Teneva I., Dzhambazov B. // Materials. 2023. V. 16. № 8. P. 3238. https://doi .org/10.3390/ma16083238
  16. Davis S.C., Klabunde K.J. // J. Am. Chem. Soc. 1978. V. 100. № 18. P. 5973–5974. https://doi .org/10.1021/Ja00486A076
  17. Davis S.C., Severson S.J., Klabunde K.J. //J. Am. Chem. Soc. 1981. V. 103. № 11. P 3024–3029. https://doi .org/10.1021/Ja00401A019.
  18. Beamson G., Briggs D. High resolution XPS of Organic Polymers. Chichester, Wiley, 1992. 295 p.
  19. Casaletto M.P., Longo A., Martorana A., Prestianni A., Venezia A.M. // Surf. Interface Anal. 2006. V. 38. № 4. P. 215–218. https://doi .org/10.1002/sia.2180
  20. Pireaux J.J., Chtaïb M., Delrue J.P., Thiry P.A., Liehr M., Caudano R. // Surf. Sci. 1984. V. 1. № 141. P. 211–220. https://doi .org/10.1016/0039-6028(84)90206-1
  21. Pireaux J.J., Liehr M., Thiry P.A., Delrue J.P., Caudano R. // Surf. Sci. 1984. V. 1. № 141. P. 221–232. https://doi .org/10.1016/0039-6028(84)90207-3
  22. Peters S., Peredkov S., Neeb M., Eberhardt W., Al-Hada M. // Surf. Sci. 2013. V. 608. P. 129–134. https://doi .org/10.1016/j.susc.2012.09.024
  23. Koslowski B., Boyen H.G., Wilderotter C., Kästle G., Ziemann P., Wahrenberg R., Oelhafen P. // Surf. Sci. 2001. V. 475. №1–3. P. 1–10. https://doi .org/10.1016/S0039-6028(00)00986-9
  24. Tsai H., Hu E., Perng K., Chen M., Wu J.C., Chang Y.S. // Surf. Sci. 2003. V. 537. № 1–3. P. L447–L450. https://doi .org/10.1016/S0039-6028(03)00640-X
  25. Xiong P., Huang X., Ye N., Lu Q., Zhang G., Peng S., Wang H., Liu Y. // Adv. Sci. 2022. V. 9. № 16. P. 2106049. https://doi .org/10.1002/advs.202106049
  26. Repetto G., Del Peso A., Zurita J.L. // Nat. Protoc. 2008. V. 3. № 7. P. 1125–1131. https://doi .org/10.1038/nprot.2008.75

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Микрофотографии образца AuIs: ПЭМ высокого разрешения (а), электронная дифракционная картина ПЭМ вы- сокого разрешения (б) и СЭМ (в).

Скачать (411KB)
Метаданные
3. Рис. 2. СЭМ-изображение морфологии наночастиц AuAc (a) и их элементных отображений: C (б), O (в) и Au (г).

Скачать (1MB)
Метаданные
4. Рис. 3. Энергодисперсионный рентгеновский спектр образца АuAc: C, 56.6 aт. %; О, 43.3 aт. %; Au, 0.1 aт. %.

Скачать (113KB)
Метаданные
5. Рис. 4. Фотоэлектронные спектры C 1s образцов AuIs (а), AuAc (б), AuTol (в) и Au 4f всех исследуемых образцов (г).

Скачать (750KB)
Метаданные
6. Рис. 5. Оценка цитотоксичности наночастиц золота in vitro в зависимости от времени инкубирования. Ингибирование кле- точной метаболической активности, определенное с помощью МТТ-теста с клетками A549 (a), FL (в), HeLa (д) и HT-29 (ж). Результаты теста на НК для клеток A549 (б), FL (г), HeLa (е) и HT-29 (з). Клетки культивировали в среде, содержащей 200 мкг мл–1 AuIs, AuAc или AuTol в течение 24, 48, 72, 96 и 120 ч. Все образцы были проанализированы трижды.

Скачать (854KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2024