ULTRASTRUCTURAL CHARACTERISTICS OF THE ENDOMETRIAL EPITHELIUM DURING THE IMPLANTATION WINDOW IN HEALTHY WOMEN AND IN PATIENTS WITH REPRODUCTIVE FAILURE



Cite item

Full Text

Abstract

Objective - to study the ultrastructural pattern of endometrial receptivity in healthy women and in patients with reproductive failures. Material and methods. Scanning electron microscopy of the endometrial epithelium was performed in 119 patients with uterine factor infertility and miscarriage due to endometrial hypoplasia. Results. Ultramorphological picture of the epithelium of decidua in patients with infertility was characterized by aplasia and hypoplasia of pinopodia (67.39 %), tight junctions (69,53 %), and heteromorphy of secretory cells (15,22 %) in combination with atypia of cells of microenvironment (50 %). In patients with miscarriage, asynchronous development of pinopodia (46,67 %) and the lack of separation of intercellular contacts during the implantation window period (84,44 %) were noted. Conclusion. The revealed abnormalities determine the mechanisms of impaired blastocyst adhesion and trophoblast invasion at different stages of implantation in patients with uterine factor infertility and miscarriage.

Full Text

Введение. Нарушение имплантации человеческого эмбриона в связи с нерецептивным эндометрием является наиболее значимой причиной неудач вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ), занимая в их структуре до 70 %, при переносе эмбрионов хорошего качества [2, 5]. В настоящее время интенсивно ведутся поиски эндокринологических, морфологических, иммуногистохимических и молекулярно-биологических маркеров рецептивности [17]. Эпителий эндометрия состоит из секреторных и реснитчатых клеток. В середине лютеиновой фазы менструального цикла (МЦ) на апикальной поверхности секреторных клеток появляются выпячивания - пиноподии, которые считаются маркером рецептивности [15, 18], хотя не удалось подтвердить предиктивную ценность исследования пиноподий у человека [16]. Строение пиноподий меняется по мере прогрессирования секреторной фазы МЦ. С помощью метода сканирующей электронной микроскопии (СЭМ) установлено, что максимальное развитие пиноподий на поверхности клеток эндометрия приходится на период так называемого «окна имплантации» - периода времени, в течение которого эндометрий становится максимально чувствительным для имплантации бластоцисты [1, 6, 15]. Физиологическое значение развития пиноподий до конца не определено, однако есть ряд доказательств, что именно на поверхности пиноподий происходят начальные этапы адгезии бластоцисты к эндометрию [7, 16]. Так, в экспериментах in vitro бластоцисты преимущественно прикреплялись к зонам эпителия, покрытым пиноподиями [1, 16]. Продолжительность существования пиноподий является предметом спора [1]. По некоторым данным, они существуют менее 48 ч на протяжении средней лютеиновой фазы МЦ, в то время как по другим данным, пиноподии появляются вскоре после овуляции и сохраняются до конца лютеиновой фазы [16]. «Окно имплантации» может сдвигаться по времени, т. е. появляться несколько раньше или позже. Данная ситуация, асинхронность развития пиноподий определяют репродуктивные неудачи, аномалии имплантации, невынашивание беременности, нарушение плацентации и могут вызывать поздние осложнения гестации [3]. Целью настоящего исследования явилось изучение ультраструктуры эндометрия у здоровых женщин и пациенток с репродуктивными неудачами и установленной гипоплазией эндометрия в период «имплантационного окна». Материал и методы. Проведение исследования было одобрено локальным этическим комитетом ФГБУ «Уральского НИИ охраны материнства и младенчества» Минздрава России. В соответствии с положениями Хельсинкской декларации Всемирной медицинской ассоциации последнего пересмотра у всех пациенток и/или их законных представителей до момента включения в процесс было получено информированное согласие на участие в исследовании и использование биологического материала. Было проведено проспективное обсервационное сравнительное контролируемое исследование образцов эндометрия у 119 женщин с маточным фактором бесплодия и невынашиванием беременности. У всех пациенток была установлена гипоплазия эндометрия. Образцы были разделены на группы: в 1-ю - включили образцы эндометрия 46 женщин с маточным фактором бесплодия, во 2-ю - образцы эндометрия 45 женщин с привычным невынашиванием беременности. Группу сравнения составили образцы эндометрия 28 здоровых фертильных женщин, не имеющих в анамнезе случаев невынашивания беременности, имеющих в анамнезе срочные роды через естественные родовые пути без отклонения от физиологического течения беременности и родового акта, закончившиеся рождением здоровых детей. Критерии включения: репродуктивный возраст (18- 45 лет), маточный фактор бесплодия (для пациенток 1-й группы) или привычного невынашивания беременности (для пациенток 2-й группы), ассоциированный с гипоплазией эндометрия, толщина маточного эха (М-эхо), по данным ультразвукового исследования (УЗИ), на 19-22-е сутки МЦ 8 мм и менее (кроме женщин группы сравнения), овуляторный МЦ, информированное добровольное согласие пациентки или ее законного представителя на участие в исследовании. Критерии исключения: возраст менее 18 и более 45 лет, онкологические заболевания, соматическая патология, при которой вынашивание беременности противопоказано, аномалии кариотипа супругов, другие причины бесплодия, не связанные с гипоплазией эндометрия. Исследовали образцы эндометрия, взятые методом pipellebiopsy (вакуумной аспирации тонким катетером) в период предполагаемого «окна имплантации», соответствующего 7-му дню после овуляции, определяемой по данным мочевого теста, чувствительного к пику концентрации в крови лютеинезирующего гормона (ЛГ7+). Исследуемые образцы представляли собой кусочки эпителия эндометрия толщиной около 2-3 мм и размером 2-3×4- 5 мм. Материал отмывали от эритроцитов в изотоническом растворе NaCl и помещали в 2,5 % раствор глутарового альдегида на 0,1М какодилатном буфере (рН 7,2-7,4). Фиксация продолжалась от 60 мин до 7 сут (Holstein, Roosen-Runge, 1981). Материал дофиксировали 1 % осмиевой кислотой на том же буфере, обезвоживали в серии спиртов и высушивали в критической точке возгонки углекислоты (Critical Point Dryer HCP-2, Hitachi). Напыление проводили в ионнораспылительной установке IB-3 (Eiko, Япония) сплавом золота и палладия. Микрофотографии получали при помощи сканирующего электронного микроскопа CamScan S-2 (Cambridge Instruments, Великобритания) при ускоряющем напряжении 20 кВ. В каждом образце просматривали 10-15 полей зрения при ув. 3000. Оценку состояния клеток эпителия проводили при ув. 8000-10 000. Оценку эндометрия проводили по временным и морфологическим параметрам. Статистическую обработку результатов исследований проводили с использованием пакетов прикладных программ Microsoft Excel (2010), StatSoft Statistica 6.0 (StatSoft, США), SPSS Statistics версия 22.0 (IBM Microsoft, США). В случае подчинения распределения признака закону нормального распределения данные представляли в виде средней величины (М) и стандартной ошибки средней (m). Проверку статистических гипотез об отсутствии межгрупповых различий количественных признаков в независимых группах осуществляли с использованием процедуры однофакторного дисперсионного анализа (ANOVA). Для показателей, характеризующих качественные признаки, указывали абсолютное значение и относительную величину (%), проверку статистических гипотез осуществляли с использованием критерия хи-квадрат (χ2). Критический уровень значимости различий (p), при котором нулевая гипотеза об отсутствии различий отвергалась и принималась альтернативная, устанавливали равным 0,025 (критерий Краскела-Уоллиса) и при p<0,05 (критерий Вилкоксона). При отклонении распределения признака от закона нормального распределения данные представляли в виде медианы (Ме) и нижнего и верхнего квартилей (25-го и 75-го процентилей, Р25-Р75). Проверку статистических гипотез об отсутствии межгрупповых различий количественных признаков осуществляли с помощью непараметрического критерия Краскела-Уоллиса (Kruskel-Wallis), при отклонении нулевой гипотезы в ходе анализа проводили попарное сравнение групп. Проверку статистических гипотез об отсутствии межгрупповых различий количественных признаков в зависимых группах (до и после лечения) осуществляли с помощью непараметрического критерия Вилкоксона. Результаты исследования. Оценивали частоту встречаемости в образцах эндометрия у пациенток групп наблюдения временных и морфологических параметров. Для оценки временных характеристик формирования «имплантационного окна» определяли состояние присутствующих в момент взятия материала пиноподий. Пиноподии характеризовали как развивающиеся, зрелые, регрессирующие. Развивающиеся пиноподии - куполообразные апикальные выпячивания секреторных клеток, неравномерно покрытые укороченными утолщенными микроворсинками диаметром 0,10-0,15 мкм, в некоторых клетках часть апикальной поверхности была лишена микроворсинок (рис. 1). Зрелые пиноподии - куполообразные апикальные выпячивания секреторных клеток с гладкой апикальной поверхностью (рис. 2). Реснитчатые клетки были «углублены» под поверхность пиноподий. Характерной чертой зрелых пиноподий являлось отсутствие межклеточного соединения и наличие щелей между соседними клетками (рис. 3). Регрессирующие пиноподии - куполообразные апикальные выпячивания секреторных клеток, равномерно покрытые короткими микроворсинками диаметром 0,10 мкм (рис. 4). Выявление регрессирующих пиноподий позволяло сделать заключение об акселерации формирования «имплантационного окна», наличие развивающихся пиноподий - о задержке формирования «имплантационного окна». Наличие в поле зрения пиноподий на разных стадиях развития свидетельствовало об асинхронности формирования пиноподий (рис. 5). Акселерация и асинхронный характер созревания пиноподий чаще наблюдались у пациенток с невынашиванием беременности - в 46,66 % случаев против 17,39 % в группе женщин с бесплодием (р=0,003), превышая значения в группе сравнения 14,30 % более чем в 3 раза (р=0,004) (таблица). Отставание в созревании пиноподий, неравномерность их созревания и развития наблюдались у большинства женщин основных групп: у пациенток с бесплодием - в 82,61 %, у женщин с невынашиванием беременности - в 65,67 %, что значимо превышает уровень значений в группе сравнения - 21,4 %; р1=0,0011, р2=0,0017 (см. таблицу). Зрелые пиноподии определялись в образцах эндометрия у женщин основных групп наблюдения, как правило, только в сочетании с созревающими пиноподиями, имели неравномерный характер распределения на поверхности эндометрия и чаще всего располагались в устьях желез. Зрелые пиноподии встречались у 34,7 % женщин с бесплодием и у 55,56 % женщин с невынашиванием беременности, что достоверно ниже, чем у женщин в группе сравнения - 71,42 %; р1=0,002. Морфологические характеристики включали в себя следующее: «спокойный» эпителий, гипоплазия пиноподий, гетероморфный эпителий. «Спокойный» эпителий - эпителиальные секреторные клетки с плоской апикальной поверхностью, покрытые микроворсинками диаметром 0,10 мкм и длиной около 0,50 мкм. Хорошо выраженные межклеточные контакты на микрофотографиях имели вид выпуклых валиков, позволяя видеть многоугольную форму эпителиальных клеток. В эпителии выявлялись равномерно расположенные реснитчатые клетки (рис. 6). В образцах эндометрия у пациенток с бесплодием значимо более часто визуализировались поля «спокойного» эпителия с ровной апикальной поверхностью, отсутствием секреторной активности. «Спокойный» эпителий выявлен у 67,39 % пациенток с бесплодием, в группе сравнения - у 14,28 % женщин (р=0,001), у пациенток с невынашиванием беременности - в 42,20 % случаев, что также достоверно превышает значения в группе сравнения (р=0,012) (см. таблицу). Гипоплазия пиноподий - присутствие в образце единичных «островков», содержащих 5-15 пиноподий (рис. 7). Островки пиноподий с характерным отсутствием межклеточных контактов обнаруживались на фоне «спокойного» эпителия с хорошо выраженными межклеточными контактами. Гипоплазия пиноподий в период «имплантационного окна» наблюдалась у 52,17 % женщин с бесплодием и у 37,78 % женщин с невынашиванием беременности, что выше уровня значений в группе сравнения (р1=0,001, р2=0,013) (см. таблицу). Гетероморфность секреторных клеток определялась нечасто и характеризовалась различной формой, размерами и строением секреторных клеток эндометрия (рис. 8). Форма клеток могла быть овальной и полигональной, размеры отличались в 2 раза и более. Пиноподии имели, как правило, различную хронологическую картину созревания. Такое строение железистого эпителия часто сопровождалось наличием атипичных клеток микроокружения - реснитчатых клеток. Возможно, именно от их строения и функции зависели правильный «каркас» клеточной мембраны и межклеточные взаимодействия, формирующие конфигурацию секреторных клеток эндометрия. Гетероморфность секреторных клеток определяли у 15,22±5,45 % женщин с бесплодием иу 2,22±0,20 % пациенток с невынашиванием беременности. В группе сравнения подобные структурные нарушения не выявлены. Реснитчатые клетки при созревании пиноподий «углублены» под их поверхность, так что при исследовании с помощью СЭМ на поверхности образца выявляются кончики ресничек. Мы определяли наличие атипичных реснитчатых клеток. Их поверхность становилась куполообразной с небольшим числом редко расположенных на апикальной поверхности ресничек (см. рис. 8). Другой атипией реснитчатых клеток являлась высокая плотность их распределения - гиперплазия реснитчатых клеток либо, напротив, низкая плотность распространения, гипоплазия, другие нарушения. Данная патология часто сочеталась с гетероморфными секреторными клетками либо асинхронностью созревания пиноподий (рис. 9). Наличие атипичных реснитчатых клеток отмечалось у 50,0 % женщин с бесплодием, что значимо выше, чем в образцах эндометрия в контрольной группе - 7,14 % (р=0,0016), и превышало аналогичный показатель у женщин с невынашиванием беременности - 28,88 %, не достигая уровня значимости (см. таблицу). Характерной чертой при формировании пиноподий являются разрушение межклеточных контактов и наличие «щелей» между клетками эпителия, необходимое для имплантации эмбриона (см. рис. 3). Сохранение межклеточных контактов может быть одним из факторов, приводящих к отсутствию имплантации (рис. 10). В основных группах наблюдения визуализировалось наличие межклеточных контактов между секреторными клетками эндометрия - в 69,56 % в группе женщин с бесплодием ив 84,44 % случаев в группе женщин с невынашиванием беременности, что чаще, чем в группе контроля, на 7,14 % (р1, 2<0,001) (см. таблицу). Обсуждение полученных данных. Покровный эпителий эндометрия первым «встречает» бластоцисту в период имплантации. Ультраструктурные изменения его поверхности, исследуемые с помощью сканирующей электронной микроскопии, открыли новый уровень рецептивности эндометрия - тканевый. Падение экспрессии рецепторов к эстрадиолу и прогестерону в имплантационном эндометрии совпадает с изменением ультраструктуры апикальной поверхности мембран эпителия с образованием пиноподий [8]. Именно на поверхности пиноподий и происходит адгезия бластоцисты, потенцируемая взаимодействием лейкемия-ингибирующего фактора (LIF) и его рецептора (LIFR), экспрессией молекул адгезии (αvβ3), остеопонтина и эпидермального фактора роста (HB-EGF) [16]. В нашем исследовании ультраструктурная морфологическая картина эндометрия у пациенток основных групп наблюдения характеризовалась высокой частотой гипоплазии и аплазии пиноподий в период «окна имплантации», наличием плотных межклеточных контактов в секреторных клетках эндометрия, частым асинхронным развитием и неравномерным созреванием полей пиноподий. У пациенток с бесплодием в ультраструктурной картине эндометрия доминировали поля отсутствия пиноподий, их гипоплазия, гетероморфность секреторных клеток в сочетании с атипией клеток микроокружения. Зрелые пиноподии редки и распределены в полях эндометрия неравномерно, располагаясь в основном в устьях желез. Клетки микроокружения (реснитчатые клетки) экспрессируют на своей поверхности трансмембранный эпителиальный муцин - MUC1, который отсутствует на поверхности пиноподий. Его биологическая роль заключается в отталкивании бластоцисты и ее правильной ориентации для инвазии только в области пиноподий [10]. У пациенток с невынашиванием беременности проблема связана с хронометрическим отставанием в созревании пиноподий, асинхронном их развитии, а также с отсутствием разобщения межклеточных контактов в период «имплантационного окна». Доказано, что одним из этапов в созревании пиноподий является нарушение межклеточных контактов поверхностного эпителия, «разобщение» клеток [16]. Биологический смысл этого явления, на наш взгляд, заключается в «облегчении» инвазии бластоцисты в эндометрий. Зрелые пиноподии визуализировались в половине исследованных образцов эндометрия у женщин с невынашиванием беременности, однако их поля также располагались неравномерно. Заключение. Таким образом, выявленные нарушения определяют механизмы нарушения адгезии бластоцисты и инвазии трофобласта на разных стадиях имплантации у пациенток с маточным фактором бесплодия и невынашивания беременности. Вклад авторов: Концепция и дизайн исследования: О. А. М., Г. Н. Ч. Сбор и обработка материала: Е. Е. Б., И. Д. Щ., А. А. Г. Статистическая обработка данных: О. А. М., И. Д. Щ., А. А. Г. Анализ и интерпретация данных: Б. Е. Е., О. А. М., Г. Н. Ч. Написание текста: О. А. М. Авторы сообщают об отсутствии в статье конфликта интересов.
×

About the authors

O. A. Melkozerova

Federal Research Institution of Maternity and Child Care

Email: abolmed1@mail.ru
1 Repina St., Yekaterinburg 620014

G. N. Chistyakova

Federal Research Institution of Maternity and Child Care

1 Repina St., Yekaterinburg 620014

Ye. Ye. Bragina

M. V. Lomonosov Moscow State University; A. N. Belozersky Research Institute of Physico-Chemical Biology

GSP-1 build. 40 Leninskie Gory, Moscow 119992

A. A. Grishkina

Federal Research Institution of Maternity and Child Care

1 Repina St., Yekaterinburg 620014

I. D. Shchedrina

Federal Research Institution of Maternity and Child Care

1 Repina St., Yekaterinburg 620014

References

  1. Агаджанова Л. М. Эндометриальные пиноподии как маркер имплантации человека // Проблемы репродукции. 2010. Т. 3. С. 6-11.
  2. Боярский К. Ю., Гайдуков С. Н., Пальченко Н. А. Современный взгляд на проблему рецептивности и тонкого эндометрия в программах ВРТ. Обзор литературы // Проблемы репродукции. 2013. № 4. С. 3-7.
  3. Брагина Е. Е. Морфологические маркёры рецептивности эндометрия // Проблемы репродукции. 2013. № 4. С. 17-24.
  4. Пальцев М. А. Молекулярные механизмы заболеваний репродуктивной системы. СПб.: Эко-вектор, 2017. 256 с.
  5. Регистр ВРТ РАРЧ. Отчет за 2017 год: [Электронный ресурс]. СПб., 2018. 48 с. Режим доступа: http://www.rahr.ru. SPb., 2018. 48 p. Access mode: http://www.rahr.ru. In Russ.].
  6. Шуршалина А. В. Морфофункциональные перестройки эндометрия в «окно имплантации» // Акушерство и гинекология. 2011. Т. 7. С. 9-13.
  7. Bentin-Ley U., Sjögren A., Nilsson L. Presence of uterine pinopodes at the embryo-endometrial interface during human implantation in vitro // Hum. Reprod. 1999. Vol. 14, № 2. P. 515-520.
  8. Carr B. R. Endometrium and implantation // Semin. Reprod. Med. 2014. Vol. 32, № 5. P. 331-332.
  9. Carranza-Lira S., Blanquet J., Tserotas K. Endometrial progesterone and estradiol receptors in patients with recurrent early pregnancy loss of unknown etiology preliminary report // Med. Sci. Monit. 2010. Vol. 6. № 4. P. 759-762.
  10. Dharmaraj N., Chapela P. J., Morgado M. Expression of the transmembrane mucins, MUC1, MUC4 and MUC16, in normal endometrium and in endometriosis // Hum. Reprod. 2014. Vol. 29, № 8. P. 1730-1738.
  11. Dong X., Sui C., Huang K. MicroRNA-223-3p suppresses leukemia inhibitory factor expression and pinopodes formation during embryo implantation in mice // Am. J. Transl. Res. 2016. Vol. 8, № 2. P. 1155-1163.
  12. Gargett С.E., Ye L. Endometrial reconstruction from stem cells // Fertil. Steril. 2012. Vol. 98, № 1. P. 11-20.
  13. Heryanto B., Lipson K. E. Effect of angiogenesis inhibitors on oestrogen-mediated endometrial endothelial cell proliferation in the ovariectomized mouse // Reproduction. 2003. Vol. 125, № 3. P. 337-346.
  14. Nicola N. A., Babon J. J. Leukemia inhibitory factor (LIF) // Cytokine Growth. Factor. Rev. 2015. Vol. 26, № 5. P. 533-544.
  15. Nikas G. Cell-surface morphological events relevant to human implantation // Hum Reprod. 2009. Vol. 14 (Suppl. 2). P. 7-44.
  16. Quinn С., Ryan E., Claessens E. A., Greenblatt E., Hawrylyshyn P., Cruickshank B., Hannam T., Dunk C., Casper R. F. The presence of pinopodes in the human endometrium does not delineate the implantation window // Fertil. Steril. 2007. Vol. 87, № 5. P. 1015-1021.
  17. Rarani F. Z., Borhani F., Rashidi B. Endometrial pinopode biomarkers: Molecules and microRNAs // J. Cell. Physiol. 2018. Vol. 233, № 12. P. 9145-9158.
  18. Sudoma I., Goncharova Y., Zukin V. Optimization of cryocycles by using pinopode detection in patients with multiple implantation failure: preliminary report // Reprod. Biomed. Online. 2011. Vol. 22, № 6. P. 590-596.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2020 Melkozerova O.A., Chistyakova G.N., Bragina Y.Y., Grishkina A.A., Shchedrina I.D.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: № 0110212 от 08.02.1993.

This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies