MORPHOMETRIC PROPERTIES OF DORSAL CLARKE’S NUCLEI IN ROSTRAL SEGMENTS OF LUMBAR PORTION OF SPINAL CORD IN CAT
- Authors: Merkulyeva N.S.1, Veshchitskiy A.A.1, Shkorbatova P.Y.1, Shenkman B.S.2, Musienko P.E.3,4, Makarov F.N.1
-
Affiliations:
- I. P. Pavlov Institute of Physiology
- Research Institute of Phthisiopulmonology
- Institute of Biomedical Problems
- Issue: Vol 150, No 5 (2016)
- Pages: 18-23
- Section: Articles
- URL: https://j-morphology.com/1026-3543/article/view/397721
- DOI: https://doi.org/10.17816/morph.397721
- ID: 397721
Cite item
Abstract
Keywords
Full Text
About the authors
N. S. Merkulyeva
I. P. Pavlov Institute of Physiology
Email: mer-natalia@yandex.ru
A. A. Veshchitskiy
I. P. Pavlov Institute of Physiology
Email: veschickiyalex@mail.ru
P. Yu. Shkorbatova
I. P. Pavlov Institute of Physiology
Email: polinavet@yandex.ru
B. S. Shenkman
Email: bshenkman@mail.ru
P. E. Musienko
Research Institute of Phthisiopulmonology; Institute of Biomedical Problems
Email: pol-spb@mail.ru
F. N. Makarov
I. P. Pavlov Institute of Physiology
Email: felixmakarov@mail.ru
References
- Меркульева Н. С., Михалкин А. А., Вещицкий А. А. Особенности распределения ацетилхолинэстеразы в заднелатеральном ядре таламуса кошки // Морфология. 2015. Т. 148, вып. 4. С. 46-48.
- Меркульева Н. С., Михалкин А. А., Никитина Н. И. и др. Формирование Y нейронов зрительной системы кошки во время раннего постнатального онтогенеза под влиянием бинокулярной ритмической световой стимуляции // Морфология. 2014. Т. 145, вып. 1. С. 13-18.
- Сухорукова Е. Г., Григорьев И. П., Кирик О. В., Коржевский Д. Э. Дополнительные гистологические и иммуноцитохимические методы, используемые при изучении нейродегенерации // Молекулярная нейроморфология. Нейродегенерация и оценка реакции нервных клеток на повреждение. СПб.: СпецЛит, 2015. С. 87-105.
- Aoyama M., Hongo T., Kudo N. Sensory input to cells of origin of uncrossed spinocerebellar tract located below Clarke’s column in the cat // J. Physiol. 1988. Vol. 398. P. 233-257.
- Arber S. Motor circuits in action: specification, connectivity, and function // Neuron. 2012. Vol. 74. P. 975-989.
- Bancroft J. D., Gamble M. Theory and Practice of Histological Techniques. Amsterdam: Elsevier Health Sciences, 2008.
- Clarke J. L. Further researches on the gray substance of the spinal cord // Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 1859. Vol. 149. P. 437-467.
- Clowry G. J., Moss J. A., Clough R. L. An immunohistochemical study of the development of sensorimotor components of the early fetal human spinal cord // J. Anat. 2005. Vol. 207. P. 313-324.
- Hantman A. W., Jessell T. M. Clarke’s column neurons as the focus of a corticospinal corollary circuit // Nature Neurosci. 2010. Vol. 13. P. 1233-1240.
- Jankowska E. Spinal interneuronal networks in the cat: elementary components // Brain Res. Rev. 2008. Vol. 57. P. 46-55.
- Mann M. D. Clarke’s column and the dorsal spinocerebellar tract: a review // Brain Behav. Evol. 1973. Vol. 7. P. 34-83.
- Maxwell D. J., Christie W. M., Ottersen O. P. et al. Terminals of group Ia primary afferent fibres in Clarke’s column are enriched with L-glutamate-like immunoreactivity // Brain Res. 1990. Vol. 510. P. 346-350.
- Petras J. M., Cummings J. F. The Origin of spinocerebellar pathways. I. The nucleus centrobasalis of the cervical enlargement and the nucleus dorsalis of the thoracolumbar spinal cord // J. Comp. Neurol. 1977. Vol. 173. P. 693-716.
- Rexed B. A cytoarchitectonic atlas of the spinal cord in the cat // J. Comp. Neurol. 1954. Vol. 100. P. 297-379.
- Schatz C. R., Geula C., Morecraft R. J. et al. A one-step cobalt-ferrocyanide method for histochemical demonstration of acetylcholinesterase activity in central nervous system tissue // Histochem. Cytochem. 1992. Vol. 40. P. 431-434.
- Silver A., Wolstencroft J. H. The distribution of cholinesterases in relation to the structure of the spinal cord in the cat // Brain Res. 1971. Vol. 34. P. 205-227.
- Takahashi K., Schwarz E., Ljubetic C. et al. DNA plasmid that codes for human bcl-2 gene preserves axotomized Clarke’s nucleus neurons and reduces atrophy after spinal cord hemisection in adult rats // J. Comp. Neurol. 1999. Vol. 404. P. 159-171.
- Yick L. W., Cheung P.-T., So K.-F. et al. Axonal regeneration of Clarke’s neurons beyond the spinal cord injury scar after treatment with chondroitinase ABC // Exp. Neurol. 2003. Vol. 182. P. 160-168.