MORPHOMETRIC ANALYSIS OF FOLLI CULAR STRUCTURE OF THE THYROID GLAND AFTER CHRONIC LOW-DOSE Γ-IRRADIATION



Cite item

Full Text

Abstract

A quantitative study of follicle average cross-sectional diameter distribution was conducted in the thyroid gland (TG) of mouse like rodents (25 tundra voles, 24 CBA mice, 16 Wistar rats) after chronic exposure to low-level external γ-radiation both in the environment and under the experimental condition (absorbed dose range 0.05–0.5 Gy). Spectrum analysis of TG follicle cross-sectional diameter distribution in the irradiated animals has demonstrated a universal regularity: in comparison with the unirradiated animals there was a significant (1.3–1.7fold) increase in content of small follicles (with a cross-sectional diameter lower than 36–41 μm in the studied animal species). A similar phenomenon was reproduced in the model experiments (TG regeneration in rats after hemithyroidectomy). The observed activation of the folliculogenesis processes after chronic low-dose irradiation in small doses may be interpreted as a nonspecific adaptive reaction of TG to radiation induced damage of its parenchyma.

Full Text

Строение щитовидной железы (ЩЖ) характеризуется высокой лабильностью в ответ на воздействие различных эндогенных и экзогенных факторов [3, 6, 12], что морфологически можно зарегистрировать на разных уровнях ее структурной организации: клеточном (изменения ультраструктуры, гипертрофия клеток, появление генетически аберрантных тироцитов), тканевом (изменения пролиферативной активности тироцитов), структурно-функциональных единиц (перестройки фолликулярной структуры), органном (изменения размеров органа, соотношения в нем основных тканевых элементов) [1, 2, 9]. Морфологические исследования ЩЖ при хроническом воздействии малых доз низкоинтенсивного ионизирующего излучения (диапазон поглощенных доз 0,05–0,5 Гр) немногочисленны [4, 7, 8, 15], ближайшие и отдаленные эффекты данного воздействия на орган неоднозначны и до настоящего времени являются дискуссионными [11, 19]. Известно, что многие техногенные факторы (мутагены, радионуклиды и др.) способны индуцировать развитие компенсаторных и патологических изменений в ЩЖ, сопровождающиеся модуляцией синтеза ДНК и пролиферацией железистых клеток, а также развитием повреждений их генома [3, 9, 13, 17, 20]. Поэтому для оценки интегральных эффектов хронического воздействия малых доз ионизирующего излучения существенный интерес может представлять вопрос о характере радиационно-индуцированных перестроек фолликулярной организации ЩЖ [10]. Цель настоящего исследования — количественное изучение распределения фолликулов по их величине в ЩЖ мышевидных грызунов после хронического воздействия внешнего низкоинтенсивного γ-излучения в природных условиях и эксперименте для установления возможного влияния данного фактора на активность морфогенетических процессов. Материал и методы. В качестве объектов исследования были использованы полевки-экономки (Microtus oeconomus Pall.), обитающие на участках с нормальным и повышенным фоном радиации, и лабораторные виды грызунов: мыши линии СВА и крысы линии Вистар. Серия 1. γ-Излучение в природных условиях. Участки, на которых отлавливали полевок (Ухтинский радиевый стационар в районе пос. Водный Республики Коми), различались по уровню γ-фона и содержанию радионуклидов в почве и воде, но были близки по другим экологическим условиям. На контрольном участке мощность дозы не превышала естественного фонового уровня (0,10–0,15 мкГр/ч), на радиевом участке — на 1–2 порядка превышала фон (0,5–20,0 мкГр/ч). Суммарные дозовые нагрузки за счет внешнего облучения, инкорпорированных радионуклидов и от газообразных 222Rn и 220Rn составили в среднем от 0,3 до 3,0 cГр/год [7, 15]. Изучена ЩЖ 25 половозрелых самцов массой 48–56 г (11 — опыт, 14 — контроль). Серия 2. γ-Излучение в условиях эксперимента. Опыты моделирования хронического облучения проведены в виварии, источником γ-излучения были 2 ампулы, содержащие 0,474·106 и 0,451·106 кБк 226Ra. Уровни облучения, используемые в эксперименте, имитировали условия внешнего γ-фона в природных условиях. Дозовая нагрузка на организм определялась мощностью экспозиционной дозы и сроками содержания в условиях облучения; измерения проводили радиометром ДРГ-01Т1 (НПП «Доза», Россия). Животные находились в зоне воздействия ионизирующего излучения круглосуточно с перерывами на кормление и уборку помещения. Контрольные группы животных того же возраста содержали при естественном радиационном фоне в условиях, строго идентичных с экспериментальными. Каждой группе животных соответствовал свой контроль. Животных умерщвляли передозировкой паров эфира. Опыт 1-й. Половозрелых мышей-самцов линии СВА массой 18–25 г облучали в течение 30 и 90 сут при постоянной мощности дозы γ-излучения; поглощенные дозы составили соответственно 1,6 и 4,8 сГр (по 8 животных в каждой подопытной группе и контроле). Материал для исследования ЩЖ брали через 30 сут после окончания радиационного воздействия. Опыт 2-й. Крыс линии Вистар (8 половозрелых самцов массой 170–220 г) подвергали хроническому облучению в течение 55 сут, поглощенная доза составила — 50 сГр. 8 животных служили контролем. Материал для исследования ЩЖ брали через 60 сут после окончания радиационного воздействия. В дополнительном эксперименте в качестве стандартной модели индукции пролиферации тироцитов и активизации процессов фолликулогенеза использовали левостороннюю гемитироидэктомию [9]. Опыты выполнены на 8 взрослых крысах линии Вистар (самцы) массой 180–230 г, 8 животных служили контролем. Операции проводили под общим гексеналовым наркозом, ЩЖ исследовали через 10 сут после начала эксперимента. Материал фиксировали в жидкости Буэна и 10% нейтральном формалине. Парафиновые срезы ЩЖ толщиной 4–5 мкм окрашивали гематоксилином — эозином. Препараты анализировали под микроскопом Бимам ЕС Р-11 (ЛОМО, СССР) при объективах 40 и 100. Диаметры сечений фолликулов измеряли с помощью винтового окулярного микрометра. У каждого животного на центральных срезах ЩЖ изучали по 100–150 фолликулов с попавшим в срез коллоидом. Каждый фолликул измеряли в двух взаимно перпендикулярных плоскостях (максимальный и минимальный диаметры), средний диаметр каждого фолликула рассчитывали как полусумму данных измерений. Для каждой серии опытов производили построение графиков распределения фолликулов по среднему диаметру их сечений у подопытных и контрольных животных, для выявления закономерностей процессов использовали сглаживание методом скользящей средней. Результаты исследования. Серия 1. γ-Излучение в природных условиях. В ЩЖ контрольных полевок-экономок преобладают (49%) фолликулы диаметром сечения 31–51 мкм (рисунок, а). У животных, отловленных на территориях с повышенной радиоактивностью, суммарная доля фолликулов данных размерных классов снижается до 39% и одновременно в 1,3 раза возрастает частота более мелких фолликулов диаметром 6–31 мкм (соответственно 37% в опыте и 29% в контроле). Серия 2. γ-Излучение в условиях эксперимента. Распределение фолликулов в ЩЖ облученных мышей линии СВА (опыт 1-й) имеет унимодальный характер (см. рисунок, б) с максимальной частотой (13–14,7%) фолликулов диаметром сечения 46 мкм, отчетливо превышающей частоту фолликулов данного размерного класса в контроле (10,2%). Суммарная доля мелких фолликулов (диаметр сечения 6–46 мкм) у облученных животных оказалась соответственно в 1,3 и 1,4 раза выше, чем в контроле (1,6 сГр — 52%, 4,8 сГр — 56%, необлученные животные — 40%). В ЩЖ контрольных крыс линии Вистар (опыт 2-й) преобладают фолликулы диаметром сечения 41–51 мкм, а при хроническом облучении в дозе 50 сГр отмечено отчетливое возрастание частоты мелких фолликулов с максимальным диаметром 36 мкм (см. рисунок, в). Суммарная доля мелких фолликулов (диаметр сечения 6–41 мкм) у подопытных животных оказалась в 1,7 раза выше, чем в контроле (соответственно 48 и 28%). В условиях модельного эксперимента по стимуляции процессов пролиферации и фолликулогенеза (гемитироидэктомия) у крыс линии Вистар также отмечен рост частоты встречаемости мелких фолликулов с максимальными значениями диаметра сечения 36 мкм (см. рисунок, в). Суммарная доля мелких фолликулов (диаметр сечения 6–41 мкм) у оперированных животных в 1,5 раза превышала контроль (соответственно 42 и 28%). Обсуждение полученных данных. Анализ спектра распределения фолликулов по диаметру их сечения в ЩЖ у полевок, отловленных на участках с повышенной радиоактивностью, а также у мышей и крыс в эксперименте с хроническим облучением демонстрирует универсальную закономерность: по сравнению с необлученными животными в условиях хронического низкоинтенсивного γ-излучения наблюдается отчетливый рост (в 1,3–1,7 раза) содержания мелких фолликулов. Подобный феномен, воспроизводящийся в модельных опытах (регенерация ЩЖ крыс после гемитироидэктомии), свидетельствует об активизации процессов фолликулогенеза [1]. В основе обнаруженных перестроек фолликулярной структуры ЩЖ может лежать растянутое во времени радиоиндуцированное возрастание пролиферативной активности тироцитов. Об этом свидетельствуют результаты экспериментов, проведенных как на культурах железистых клеток [13, 14], так и in vivo: в ЩЖ облученных крыс (серия 2, опыт 2-й) обнаружено повышение в 3 раза по сравнению с контролем содержания микронуклеированных тироцитов, имеющих постмитотическую природу и накапливающихся в органе на протяжении длительного времени [4]. Рост содержания мелких фолликулов, обладающих, по данным ряда авторов, повышенным пролиферативным потенциалом и уровнем метаболизма [5, 16], может быть расценен как неспецифическая адаптивная реакция органа на хроническое радиоиндуцированное повреждение железистых клеток [6, 15, 18]. Результаты исследования свидетельствуют о стимулирующем влиянии хронического внешнего низкоинтенсивного γ-излучения на активность морфогенетических процессов в паренхиме ЩЖ.
×

About the authors

A. V. Pavlov

Yaroslavl State Medical Academy

Email: pavlov@yma.ac.ru

O. V. Yermakova

Institute of Biology, Komi science centre, Ural branch of RAS

Email: ermakova@ib.komisc.ru

T. V. Korablyova

Yaroslavl State Medical Academy

O. V. Raskosha

Institute of Biology, Komi science centre, Ural branch of RAS

Email: raskosha@ib.komisc.ru

References

  1. Быков В. Л. Гетерогенность щитовидной железы млекопитающих и возрастные изменения органа. Арх. анат., 1979, т. 77, вып. 10, с. 61–71.
  2. Глумова В. А. Щитовидная железа. В кн.: Структурные основы адаптации и компенсации нарушенных функций. М., Медицина, 1987, с. 320–328.
  3. Глумова В. А., Черенков И. А., Семенов В. Р. и др. Экологическая лабильность морфологических параметров щитовидной железы человека в раннем постнатальном онтогенезе. Морфология, 2000, т. 66, вып. 3, с. 36.
  4. Ермакова О. В. Павлов А. В. и Кораблева Т. В. Цитогенетические эффекты в фолликулярном эпителии при длительном воздействии низкоинтенсивного гамма-излучения. Радиационная биология. Радиоэкология, 2008, т. 48, № 2, с. 160–166.
  5. Кораблева Т. В. Изучение клеток с микроядрами в оценке возрастных закономерностей щитовидной железы: Автореф. дис. … канд. мед. наук. М., 2007.
  6. Лягинская А. М., Маханькова Н. Г. и Терещенко Н. Я. Влияние ионизирующего излучения на щитовидную железу. В кн.: Метаболическое и биологическеое действие радионуклидов при оральном поступлении в организм. М., изд. Инт-та биофизики, 1989, с. 119–139.
  7. Маслова К. И., Материй Л. Д., Ермакова О. В. и Таскаев А. И. Атлас патоморфологических изменений у полевок-экономок из очагов локального радиоактивного загрязнения. СПб., Наука, 1994.
  8. Надольник Л. И., Нецецкая З. В. и Виноградов В. В. Влияние длительного воздействия гамма-излучения в малых дозах на тиреоидный статус крыс. Радиационная биология. Радиоэкология, 2004, т. 44., № 1, с. 76–80.
  9. Павлов А. В., Гансбургский А. Н., Гансбургский М. А. и др. Использование микроядерного теста для выявления генотоксических повреждений щитовидной железы. Бюл. экспер. биол., 2006, т. 141, № 1, с. 99–102.
  10. Павлов А. В., Ермакова О. В., Кораблева Т. В. и Раскоша О. В. Формирование микрофолликулов щитовидной железы под влиянием хронического гамма-облучения. Морфология, 2012, т. 141, вып. 3, с. 119.
  11. Цыб А. Ф. и Поверенный А. М. Повреждения щитовидной железы в период Чернобыльской аварии: вероятные последствия. В кн.: Последствия Чернобыльской катастрофы: Здоровье человека. М., Медицина, 1996, с. 219–228.
  12. Щитовидная железа: Фундаментальные аспекты. Под ред. А. И. Кубарко и С. Ямасита. Минск, Нагасаки, 1998.
  13. Abou-El-Ardat K., Derradji H., de Vos W. et al. Response to low-dose X-irradiation is p53-dependent in a papillary thyroid carcinoma model system. Int. J. Oncol., 2011, v. 39, № 6, p. 1429–1441.
  14. Abou-El-Ardat K., Monsieurs P., Anastasov N. et al. Low dose irradiation of thyroid cells reveals a unique transcriptomic and epigenetic signature in RET/PTC-positive cells. Mutat. Res., 2012, v. 73, № 1–2, p. 27–40.
  15. Ermakova O. V. Comparative morphological analysis of peripheral endocrine glands of small mammals inhabiting areas with high levels of radioactivity and exposed to chronic irradiation in model experiments. Biophysics, 2011, v. 56, № 1, p. 135–139.
  16. Faggiano A., Coulot J., Bellon N. et al. Age-dependent variation of follicular size and expression of iodine transporters in human thyroid tissue. J. Nucl. Med., 2004, v. 45, № 2, p. 232–237.
  17. Krohn K., Fuhrer D., Bayer Y. et al. Molecular pathogenesis of euthyroid and toxic multinodular goiter. Endocr. Rev., 2005, v. 26, № 4, p. 504–524.
  18. Nagayama Y., Kaminoda K., Mizutori Y. et al. Exacerbation of autoimmune thyroiditis by a single low dose of wholebody irradiation in non-obese diabetic-H2(h4) mice. Int. J. Radiat. Biol., 2008, v. 84, № 9, p. 761–769.
  19. Suzuki K. and Yamashita S. Low-dose Radiation Exposure and Carcinogenesis. Jap. J. Clin. Oncol., 2012, v. 42, № 7, p. 563–568.
  20. Tallini G. Molecular pathobiology of thyroid neoplasms. Endocrinol. Pathol., 2002, v. 13, № 4, p. 271–288.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2013 Eco-Vector



Периодический печатный журнал зарегистрирован как СМИ Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор): 0110212 от 08.02.1993.
Сетевое издание зарегистрировано как СМИ Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор): ЭЛ № ФС 77 - 84733 от 10.02.2023.