CHANGES IN THE NUMBER OF REGENERATING MYELINATED FIBERS IN INJURED NERVE OF THE RAT AFTER ALLOTRANSPLANTATION OF THE DISSOCIATED CELLS OF THE EMBRYONIC CNS ANLAGES



Cite item

Full Text

Open Access Open Access
Restricted Access Access granted
Restricted Access Subscription or Fee Access

Abstract

The study was conducted on 6 female and 36 male adult Wistar rats to compare the effects of dissociated cells derived from different embryonic CNS anlages, on the growth of regenerating nerve fibers in the damaged nerve of the recipient. After the sciatic nerve was damaged by ligation, part of the animals received the injection into the proximal portion of the nerve with a suspension of the cells obtained by dissociation of the fragments of spinal cord or forebrain vesicle taken from rat embryos at Day 15 of development. The analysis of transverse semithin sections of the distal part of the nerves was performed 21 and 60 days after surgery. It was found that the number of regenerating myelinated nerve fibers was increased 60 days after the injection of dissociated embryonic spinal cord cells, but not the neocortical cells, into the damaged nerve of the recipient.

Full Text

Restricted Access

About the authors

Ye. S. Petrova

North-Western Branch Institute of Experimental Medicine

Laboratory of the Functional Morphology of the Central and Peripheral Nervous System, Department of General and Special Morphology

Ye. N. Isayeva

State Research Institute of Highly Pure Biopreparations

Laboratory of Immunopharmacology

References

  1. Варсегова Т. Н. Возрастная динамика морфометрических показателей большеберцового нерва собак // Морфология. 2012. Т. 142, вып. 6. С. 36-40.
  2. Карагяур М. Н. Влияние мезенхимальных стволовых клеток на восстановление периферического нерва после травмы: Автореф. дис. … канд. биол. наук. М., 2013.
  3. Масгутов Р. Ф., Масгутова Г. А., Рагинов И. С. и др. Посттравматическое выживание чувствительных нейронов при аллотрансплантации в нерв эмбриональных тканей крысы // Клеточные технологии в биологии и медицине. 2009. № 2. С. 103-104.
  4. Мирошникова М. Е., Чумасов Е. И. Регенерация седалищного нерва крысы после его различных экспериментальных повреждений // Арх. анат. 1988. Т. 95, вып. 1. С. 30-35.
  5. Ноздрачев А. Д., Чумасов Е. И. Периферическая нервная система. СПб.: Наука, 1999.
  6. Петрова Е. С., Исаева Е. Н. Изучение влияния аллотрансплантатов эмбриональных закладок спинного мозга крыс на рост регенерирующих волокон нерва реципиента // Изв. РАН. Серия биол. 2014, № 6. С. 545-553.
  7. Петрова Е. С., Исаева Е. Н., Коржевский Д. Э. Развитие диссоциированных клеток различных закладок ЦНС крысы в условиях пересадки в поврежденный нерв // Морфология. 2013. Т. 143, вып. 2. С. 30-34.
  8. Петрова Е. С., Чумасов Е. И., Отеллин В. А. Морфологическая оценка способности роста аксонов ЦНС в периферическом нерве // Бюл. экспер. биол. 1998. Т. 126, № 2. С. 233-236.
  9. Челышев Ю. А. Регенерация в нервной системе. Руководство по гистологии. СПб.: СпецЛит, 2011. Т. 1. С. 656-665.
  10. Щудло Н. А.,Борисова И. В.,Щудло М. М.Морфометрическая оценка эффективности посттравматической регенерации периферического нерва при однократном и повторном курсах электростимуляции // Морфология. 2012. Т. 142, вып. 6. С. 31-35.
  11. Franchi S., Valsecchi A. E., Borsani E. et al. Intravenous neural stem cells abolish nociceptive hypersensitivity and trigger nerve regeneration in experimental neuropathy // Pain. 2012. Vol. 153, № 4. P. 850-861.
  12. Grambles R. M., Almeida V. W., Thomas C. K. Embryonic neurons transplanted into the tibial nerve reinnervate muscle and reduce atrophy but NCAM expression persists // Neurol. Res. 2008. Vol. 30, № 2. P. 283-189.
  13. Lu P., Jones L. L., Snyder E. Y., Tuszynski M. H. Neural stem cells constitutively secrete neurotrophic factors and promote extensive host axonal growth after spinal cord injury // Exp. Neurol. 2003. Vol. 181, № 2. P. 115-129.
  14. Marconi S., Castiglione G., Turano E. et al. Human adiposederi ved mesenchymal stem cells systemically injected promote peripheral nerve regeneration in the mouse model of sciatic crush // Tissue engineering. 2012. Vol. 18, № 11-12. P. 1264- 1272.
  15. Ramasamy S., Narayanan G., Sankaran S. et al. Neural stem cell survival factors // Arch. Biochem. Biophys. 2013. Vol. 534, № 1-2. P. 71-87.
  16. Sun C., Zhang H., Li J. et al. Modulation of the major histocompatibility complex by neural stem cell-derived neurotrophic factors used for regenerative therapy in a rat model of stroke // J. Transl. Med. 2010. Vol. 20, № 8. P. 77-87.
  17. Walsh S., Midha R. Use of stem cells to augment nerve injury repair // Neurosurgery. 2009. Vol. 65, № 4. P. A80-86.
  18. Wang J., Ding F., Gu Y. et al. Bone marrow mesenchymal stem cells promote cell proliferation and neurotrophic function of Schwann cells in vitro and in vivo // Brain Res. 2009. Vol. 1262. P. 7-15.
  19. Xiong G., Ozaki N., Sugiura Y. Transplanted embryonic spinal tissue promotes severed sciatic nerve regeneration in rats // Arch. Histol. Cytol. 2009. Vol. 72. P. 127-138.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2015 Eco-Vector


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: № 0110212 от 08.02.1993.

This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies