ДИНАМИКА ИЗМЕНЕНИЯ ЭКСПРЕССИИ GLUR2-СУБЪЕДИНИЦЫ ИОНОТРОПНОГО РЕЦЕПТОРА ГЛУТАМАТА В ВЕНТРОЛАТЕРАЛЬНОЙ ЧАСТИ ЯДРА ОДИНОЧНОГО ТРАКТА В РАННЕМ ПОСТНАТАЛЬНОМ ПЕРИОДЕ В НОРМЕ И ПРИ ПРЕНАТАЛЬНОМ ДЕФИЦИТЕ СЕРОТОНИНА



Цитировать

Полный текст

Аннотация

В опытах на крысах Вистар (n=18) изучена динамика экспрессии субъединицы ионотропного рецептора глутамата (GluR2) в респираторных субъядрах (вентральном и латеральном) ядра одиночного пути (ЯОП). Наблюдения проводили в раннем постнатальном периоде (5-, 10-еи 20-е сутки, по 5-6 животных в группе) в норме и при пренатальном снижении содержания серотонина, которое осуществляли путем ингибирования триптофангидроксилазы парахлорфенилаланином. Иммуноцитохимическое выявление GluR2 показало, что в ЯОП в ранние постнатальные сроки в респираторных субъядрах уровень его экспрессии примерно одинаков. К ювенильному возрасту происходит значительное повышение экспрессии GluR2 (в латеральном субъядре в 2 раза, в вентральном - в 2,6 раза). Пренатальный дефицит серотонина изменяет экспрессию GluR2 в респираторных субъядрах ЯОП. В ранние сроки имеется значительная задержка экспрессии GluR2, которая на 2-й неделе после рождения повышается до контрольных значений, однако к ювенильному возрасту экспрессия GluR2 ниже (в 2 раза), чем в контроле. Нарушение глутаматергической рецепторной сети в дыхательных ядрах может быть основой респираторных дисфункций.

Полный текст

Одной из основных функцией ядра одиночного пути (ЯОП) является интеграция информации, поступающей от внутренних органов [3], где респираторные, кардиоваскулярные и другие афферентные импульсы опосредуются глутаматом [5]. Вентральное и латеральное субъядра представляют собой группу дорсальных респираторных ядер и входят в состав бульбарного дыхательного центра. Значительная часть нейронов этих ядер являются инспираторными [3], регуляция взаимодействий между которыми осуществляется, главным образом, через высвобождение глутамата и гамма-аминомасляной кислоты (ГАМК). Передача возбуждения, как правило, осуществляется действием глутамата на два основных ионотропных рецептора - NMDA (связывающего N-метил-D-аспартат) и AMPA (2-альфа-амино-3-гидрокси-5-метил-4-изоксазольпропионовую кислоту). AMPA является тетрамером, состоящим из субъединиц, сочетание которых определяет структуру, ионную селективность, проводимость и кинетику активации рецептора [22]. Установлено, что проницаемость для кальция АМРА-зависимых ионных каналов определяется наличием в составе рецептора субъединицы (GluR2), причем, как полагают, приток кальция через синапсы в период активного синаптогенеза является необходимым для формирования и специализации структурных и функциональных свойств нейральных сетей [9, 12]. Однако данных о динамике экспрессии GluR2 в респираторных субъядрах ЯОП в ранний постнатальный период (т. е. период созревания респираторной системы у млекопитающих и человека) практически нет. В ЯОП серотонин (5-hydroxytryptamine; 5-HT), наряду с другими трансмиттерами, также вовлекается в нейротрансмиссию глутамата из висцеральных афферентных окончаний [17]. В субъядрах ЯОП содержится значительное количество серотониновых волокон, которые, как показано, приходят из медуллярных ядер шва [20]. Установлено, что в ЯОП имеется постоянное спонтанное высвобождение серотонина из терминалей серотонинергических волокон, причем выделение медиатора является регулируемым при помощи системы его обратного захвата [7]. В ЯОП обнаружена самая интенсивная в мозгу экспрессия ионотропных рецепторов 5-HT. Эти пресинаптические рецепторы, активируемые 5-HT, вызывают высвобождение глутамата из афферентных терминалей, который, в свою очередь, приводит к возбуждению постсинаптических нейронов в ЯОП [11, 14, 16]. Однако неизвестно, будет ли влиять пренатальное изменение содержания серотонина на экспрессию ионотропных глутаматных GluR2-содержащих рецепторов и, как следствие, на возбудимость нейральной сети. В связи с этим, цель настоящей работы - изучить динамику экспрессии GluR2 в респираторных субъядрах (вентральном и латеральном) ЯОП в ранний постнатальный период в норме и при пренатальном снижении содержания серотонина. Материал и методы. Работа проведена на лабораторных крысах Вистар (n=18). Содержание животных и все экспериментальные процедуры проведены в соответствии с «Правилами содержания и проведения работ с использованием экспериментальных животных» (приказ № 755 от 12.08.1977 г. МЗ СССР). Для снижения эндогенного содержания серотонина использовали метод ингибирования триптофангидроксилазы (фермента его синтеза) парахлорфенилаланином (пХФА) (Sigma, США), который вводили внутрибрюшинно в дозе 400 мг/кг самкам на 9-е сутки беременности (для длительного снижения эндогенного содержания серотонина до 50-80% в период формирования у плодов ЯОП одиночного пути и собственной серотонинергической системы). Головной мозг у родившихся крысят исследовали на 5-, 10-еи 20-е сутки. В качестве контроля использовали животных соответствующих сроков развития, родившихся у интактных самок (по 5-6 крысят каждого срока как подопытных, так и контрольных). Материал фиксировали в цинк-этанол-формальдегиде на фосфатносолевом буфере (рH 7,4), заливали в парафин по общепринятой методике и готовили серийные поперечные срезы продолговатого мозга толщиной 5 мкм на уровне Bregma 11.88 - 12.00 [15]. Иммуноцитохимическую реакцию выявления ионотропного рецептора глутамата проводили с использованием мышиных моноклональных антител к GluR2 (Abcam, США). В качестве вторичных реагентов для выявления GluR2 использовали реактивы из набора EnVision+System-HRP Labelled Polymer Anti-Rabbit (DakoCytomation, США). Для визуализации продукта реакции использовали хромоген DAB+ (Dako, Дания). Клеточная локализация GluR2: плазмолемма, в цитоплазме - мембраны эндоплазматической сети, клеточные контакты - синапсы, постсинаптическая мембрана. Условия проведения иммуноцитохимической реакции были стандартизированы, все процедуры с гистологическими срезами продолговатого мозга, полученными от контрольных и подопытных животных, осуществляли одновременно. После проведения иммуноцитохимической реакции часть срезов докрашивали тионином (Serva, США, Германия) и заключали в синтетическую среду Permount (Thermo Fisher Scientific, США). Морфологический анализ и количественное исследование проводили на цифровых изображениях серийных срезов, полученных при помощи светового микроскопа Leica DME (Leica, Германия) и цифровой камеры Leica EC3 (Leica, Германия). Подсчитывали число иммунопозитивных нейронов на стандартной площади, равной 0,1 мм², и учитывали плотность сплетения терминальных отростков в нейропиле, определяли плотность распределения зерен и крупных гранул (последние, предположительно, считаются терминальными синаптическими структурами и их скоплениями) [10]. Для проведения оценки оптической плотности продукта реакции в цитоплазме нейронов и нейропиле использовали изображения, полученные с помощью цифровой видеокамеры, и програмное обеспечение ВидеоТест Мастер Морфология (ООО «Видео Тест», Санкт-Петербург). Вычисляли среднее арифметическое значение и его ошибку, критическим уровнем значимости считали P<0,05, статистическую обработку проводили средствами анализа ANOVA (Statistica 7.0, Statsoft Inc., США). Результаты исследования. Латеральное субъядро ЯОП. На 5-е сутки у контрольных животных на единице площади выявляются 16,3±1,1 нейронов со слабо окрашенной цитоплазмой (оптическая плотность равна 0,0751) (рисунок, а). На 9-е сутки число иммунопозитивных нейронов сохраняется - 15,7±1,4, но интенсивность реакции слегка увеличивается (0,0857) (см. рисунок, в). На 20-е сутки численность иммунопозитивных нейронов возрастает в 2 раза и составляет 31,6±0,9, а интенсивность реакции (0,0872) практически не меняется (см. рисунок, д). В нейропиле во все исследованные сроки слабо иммунопозитивные отростки образуют рыхлую сеть. На 5-е сутки у экспериментальных животных в латеральном субъядре на единице площади выявляется 3,1±0,3 нейрона со слабо иммунопозитивной цитоплазмой (0,0491) (см. рисунок, б). В нейропиле практически нет иммунопозитивных отростков. На 9-е сутки выявляется 12,4±1,2 иммунопозитивных нейрона, интенсивность окраски цитоплазмы и сети отростков в нейропиле практически не изменяется (0,0489) (см. рисунок, г). На 20-е сутки число иммунопозитивных нейронов - 16,2±1,5, что в 2 раза меньше, чем в контроле, интенсивность иммунной реакции цитоплазмы и отростков слабая (0,0504) (см. рисунок, е). Вентральное субъядро ЯОП. На 5-е сутки у контрольных животных в вентральном субъядре на единице площади выявляется 15,5±1,6 нейрона, имеющих слабую иммунопозитивную реакцию цитоплазмы (0,0714). На 9-е сутки число иммунопозитивных нейронов - 18,5±1,3 и интенсивность реакции цитоплазмы (0,0796) примерно соответствуют таковым на 5-е сутки. На 20-е сутки численность иммунопозитивных нейронов резко возрастает до 47,6±1,8 (в 2,6 раза), при этом интенсивность окрашивания увеличивается незначительно (0,0841). В нейропиле во все исследованные сроки слабо окрашенные отростки образуют рыхлую сеть. На 5-е сутки у подопытных животных в вентральном субъядре иммунопозитивные нейроны не выявляются. В нейропиле окрашены отдельные отростки. На 9-е сутки число иммунопозитивных нейронов составляет 19,7±1,2, при этом интенсивность окрашивания цитоплазмы нейронов слабая (0,0412). На 20-е сутки выявляется 17,6±1,8 иммунопозитивных нейрона, что в 2,4 раза меньше, чем в контроле, интенсивность иммунной реакции не изменяется (0,0498). Обсуждение полученных данных. Проведенное исследование показало, что в ЯОП в ранние постнатальные сроки в обоих респираторных субъядрах имеется примерно одинаковый уровень экспрессии GluR2-содержащих рецепторов, об этом свидетельствует как число нейронов, экспрессирующих GluR2, так и интенсивность иммуноцитохимической реакции. К ювенильному возрасту происходит значительное повышение экспрессии GluR2, в латеральном - в 2 раза, в вентральном субъядре - в 2,6 раза, при этом интенсивность реакции повышается незначительно (в 1,1 раза). Установлено, что в эмбриогенезе у крыс нейроны ЯОП появляются рано между 10-ми и 14-и сутками развития, а афферентные волокна одиночного пути начинают появляться в ЯОП на 15-е сутки [2, 18], при этом слабая возбуждающая синаптическая активность здесь была зарегистрирована на 18-е сутки [23]. Исследования показали, что реакция на GluR2 выявлялась также на 18-е сутки, и места окрашивания практиче ски совпадали с точками при реакции на синаптофизин. Более того, локализация синаптических структур при выявлении GluR2, была подтверждена одновременным обнаружением глутаматергических терминалей [13]. Наблюдения показали, что между 18-и сутками внутриутробного развития и началом постнатального периода плотность GluR2-иммунопозитивных структур возрастала приблизительно в 3 раза, а в первую неделю после рождения и до 21-х суток она увеличивалась еще в 2 раза [4]. Полученные результаты подтверждают эти данные и свидетельствуют о том, что к ювенильному возрасту в респираторных субъядрах ЯОП происходит значительное увеличение экспрессии GluR2 (в 2-2,6 раза) по сравнению с таковой в ранний неонатальный срок. Установлено, что АМРА-рецептор является тетрамером, состоящим из различных комбинаций четырех основных субъединиц, называемых GluR1, GluR2, GluR3 и GluR4. АМРА-рецептор, не содержащий GluR2, является высокопроницаемым для ионов кальция [12], при этом присутствие одной GluR2субъединицы в составе гетеромерного АМРАрецептора обеспечивает его непроницаемость для ионов кальция [21]. Наблюдения показали, что в ходе раннего развития и формирования синаптических сетей сначала имеет место экспрессия АМРА-рецепторов, не содержащих GluR2-субъединицу, которая, впоследствии постепенно включается в его состав. Отмечено, что во время нейрального развития этот процесс является общим для других областей мозга [8, 12, 19]. Полагают, что в ранние сроки (во время раннего синаптогенеза) внутриклеточный приток кальция через AMPA-зависимые ионные каналы является важным в формировании и созревании синаптических структур, а также подчеркивают роль кальция в процессах, стимулирующих трансформацию самих синапсов [6, 12, 19], которые в результате определяют формирование структурных и функциональных свойств нейральных сетей. Более того, присутствие GluR2 в составе АМРА-рецептора влияет не только на проницаемость АМРА-зависимых каналов для ионов кальция, но и создает молекулярную основу для развития синаптической пластичности [12]. Установлено, что в ЯОП возбуждающие глутаматные ионотропные GluR2-содержащие рецепторы появляются в конце пренатального периода [13]. Результаты данного исследования показали, что в респираторных субъядрах ЯОП на ранних этапах перинатального периода экспрессия GluR2 начинает повышаться, а в постнатальный период к ювенильному возрасту значительно увеличивается. Вероятно, первые 3 нед постнатального развития в респираторных субъядрах ЯОП являются критическим периодом в формировании и созревании глутаматергической синаптической сети. Установлено, что в ЯОП серотонин играет роль в трансмиссии глутамата. Его возбуждающее действие проявляется через активацию своих ионотропных рецепторов (5-HT3), локализующихся в основном пресинаптически на афферентных терминалях волокон одиночного пути [14, 16], что приводит к высвобождению глутамата, который, в свою очередь, вызывает активацию ионотропных постсинаптических АМРА-рецепторов и возбуждение нейронов ЯОП [11]. Результаты исследования показали, что в респираторных субъядрах ЯОП в ранний постнатальный период пренатальный дефицит серотонина изменяет экспрессию GluR2. В ранние сроки имеет место либо задержка экспрессии GluR2, либо незначительная его экспрессия. На 9-е сутки экспрессия GluR2 повышается и примерно соответствует таковой в контроле, однако, к ювенильному возрасту она не изменяется и оказывается в 2 раза ниже контрольных значений. Такое снижение экспрессии GluR2, вероятно, может быть вызвано нарушением процессов синтеза рецепторных белков и сокращением их количества, что в результате будет приводить к нарушению формирования синапсов и возбуждающей глутаматергической рецепторной сети в постнатальный период, также одной из причин может быть уменьшение числа постсинаптических мишеней для афферентных волокон одиночного пути, являющееся результатом структурных нарушений развития самого ЯОП. С другой стороны, вероятно, пренатальное снижение содержания серотонина может приводить к уменьшению количества серотониновых волокон, приходящих от медуллярных ядер шва, и, как следствие, вызывать вторичное снижение уровня высвобождаемого в ЯОП серотонина, а также к нарушению развития иннервации респираторных органов и уменьшению числа афферентных волокон, приходящих от них в ЯОП и, как результат, резкому снижению содержания рецепторов серотонина, локализующихся на их терминалях и участвующих в высвобождении глутамата. Проведенное исследование показало, что в респираторных субъядрах ЯОП первые 3 нед постнатального периода развития являются критическими для формирования возбуждающей рецепторной сети. Выявленное снижение экспрессии возбуждающих глутаматных ионотропых GluR2-содержащих рецепторов, вызванное пренатальным дефицитом серотонина [1], будет несомненно нарушать нормальный баланс возбуждения и торможения в респираторных субъядрах уже в ранние сроки развития и приводить к респираторным дисфункциям.
×

Об авторах

Людмила Ивановна Хожай

Институт физиологии им. И. П. Павлова РАН

Email: astarta0505@mail.ru
лаборатория онтогенеза нервной системы 199034, Санкт-Петербург, наб. Макарова, 6

Список литературы

  1. Хожай Л. И., Шишко Т. Т. Изменение структурной организации бледного ядра шва при снижении содержания эндогенного серотонина в пренатальный период развития у крыс // Морфология. 2013. Т. 143, вып. 2. С. 75-78.
  2. Altman S., Bayer S. A. Development of the brain stem in the rat. I. Thymidine-autoradiographic study of the origin of neurons of the lower medulla // J. Comp. Neurol. 1980. Vol. 194. P. 1-25.
  3. Andresen M. C., Kunze D. L. Nucleus tractus solitarius-gateway to neural circulatory control // Annu. Rev. Physiol. 1994. Vol. 56. P. 93-116.
  4. Balland B., Lachamp P., Strube C. et al. Glutamatergic synapses in the rat nucleus tractus solitarii develop by direct insertion of calcium-impermeable AMPA receptors and without activation of NMDA receptors // J. Physiol. 2006. Vol. 574, № 1. P. 245-61.
  5. Baude A., Strube C., Tell F., Kessler J. P. Glutamatergic neurotransmission in the nucleus tractus solitarii: structural and functional characteristics // J. Chem. Neuroanat. 2009. Vol. 38. P. 145-153.
  6. Bregestovski P., Spitzer N. Calcium in the function of the nervous system: new implications // Cell Calcium. 2005. Vol. 37. P. 371-374.
  7. Daws L. C. Unfaithful neurotransmitter transporters: focus on serotonin uptake and implications for antidepressant efficacy // Pharmacol. Ther. 2009. Vol. 121. P. 89-99.
  8. Furuta A., Martin L. J. Laminar segregation of the cortical plate during corticogenesis is accompanied by changes in glutamate receptor expression // J. Neurobiol. 1999. Vol. 39. P. 67-80.
  9. Geiger J. R., Melcher T., Koh D. S. et al. Relative abundance of subunit mRNAs determines gating and Ca2+ permeability of AMPA receptors in principal neurons and interneurons in rat CNS // Neuron. 1995. Vol. 15. P. 193-204.
  10. Guthmann A., Fritschy J. M., Ottersen O. P. et al. GABA, GABA transporters, GABA (A) receptor subunits and GAD mRNAs in the rat parabrachial and Kölliker-Fuse nuclei // J. Comp. Neurol. 1998. Vol. 400, № 2. P. 229-243.
  11. Jeggo R. D., Kellett D. O., Wang Y. et al. The role of central 5-HT3 receptors in vagal reflex inputs to neurones in the nucleus tractus solitarius of anaesthetized rats // J. Physiol. 2005. Vol. 566. P. 939-953.
  12. Kumar S. S., Bacci A., Kharazia V., Huguenard J. R. A developmental switch of AMPA receptor subunits in neocortical pyramidal neurons // J. Neurosci. 2002. Vol. 22. P. 3005-3015.
  13. Lachamp P., Crest M., Kessler J. P. Vesicular glutamate transporters type 1 and 2 expression in axon terminals of the rat nucleus of the solitary tract // Neuroscience. 2006. Vol. 137. P. 73-81.
  14. Leslie R. A., Reynolds D. J. M., Andrews P. L. R. et al. Evidence for presynaptic 5-hydroxytryptamine3 recognition sites on vagal afferent terminals in the brainstem of the ferret // Neuroscience. 1990. Vol. 38. P. 667-673.
  15. Paxinos G., Watson C. The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. 5th edn. Sydney: Acad. Press, 2004.
  16. Pratt G. D., Bowery N. G. The 5-HT3 receptor ligand, [3H]BRL 43694, binds to presynaptic sites in the nucleus tractus solitarius of the rat // Neuropharmacology. 1989. Vol. 28. P. 1367-1376.
  17. Ramage A. G., Villalón C. M. 5-Hydroxytryptamine and cardiovascular regulation // Trends Pharmacol. Sci. 2008. Vol. 29. P. 472-481.
  18. Rinaman L., Levitt P. Establishment of vagal sensorimotor circuits during fetal development in rats // J. Neurobiol. 1993. Vol. 24. P. 641-659.
  19. Rohrbough J., Spitzer N. C. Ca2+-permeable AMPA receptors and spontaneous presynaptic transmitter release at developing excitatory spinal synapses // J. Neurosci. 1999. Vol. 19. P. 8528-8541.
  20. Schaffar N., Kessler J. P., Bosler O., Jean A. Central serotonergic projections to the nucleus tractus solitarii: evidence from a double labeling study in the rat // Neuroscience. 1988. Vol. 26. P. 951-958.
  21. Washburn M. S., Numberger M., Zhang S., Dingledine R. Differential dependence on GluR2 expression of three characteristic features of AMPA receptors // J. Neurosci. 1997. Vol. 17. P. 9393-9406.
  22. Wu G., Malinow R., Cline H. T. Maturation of a central glutamatergic synapse // Science. 1996. Vol. 274. P. 972-976.
  23. Zhang L. L., Ashwell K. W. The development of cranial nerve and visceral afferents to the nucleus of the solitary tract in the rat // Anat. Embryol. 2001. Vol. 204. P. 135-151.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Эко-Вектор, 2017



Периодический печатный журнал зарегистрирован как СМИ Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор): 0110212 от 08.02.1993.
Сетевое издание зарегистрировано как СМИ Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор): ЭЛ № ФС 77 - 84733 от 10.02.2023.