ВИМЕНТИН И БЕЛОК S100 В КЛЕТКАХ ФОРМИРУЮЩЕГОСЯ ЧУВСТВИТЕЛЬНОГО УЗЛА СПИННОМОЗГОВОГО НЕРВА
- Авторы: Колос Е.А.1, Коржевский Д.Э.1
-
Учреждения:
- Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины СЗО РАМН
- Выпуск: Том 143, № 3 (2013)
- Страницы: 074-076
- Раздел: Статьи
- Статья получена: 09.05.2023
- Статья опубликована: 15.06.2013
- URL: https://j-morphology.com/1026-3543/article/view/398639
- DOI: https://doi.org/10.17816/morph.398639
- ID: 398639
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Целью настоящего исследования было изучение экспрессии одного из белков промежуточных филаментов — виментина и белка S100 в клетках формирующегося чувствительного узла спинномозгового нерва (ЧУСН) у крыс линии Вистар на 12–19-е сутки внутриутробного развития (n=22) и новорожденных крысят (n=6). Формирование глиоцитов ЧУСН изучали иммуногистохимическими методами. Установлено, что виментин-иммунопозитивные предшественники нейронов и глиоцитов присутствуют в закладках ЧУСН у зародышей крысы на 12–17-е сутки развития. В более поздние сроки (19-е сутки внутриутробного и 1-е сутки постнатального развития) виментин синтезируется только в клетках дифференцирующейся глии. Показано, что в эти же сроки в глиоцитах ЧУСН у крысы начинает выявляться белок S100. В 1-е сутки постнатального развития проявляется тенденция к накоплению белка S100 в более крупных нейронах, характерная для зрелых ЧУСН.
Ключевые слова
Полный текст
Чувствительный узел спинномозгового нерва (ЧУСН) содержит тела нейронов различных типов, которые передают сенсорную информацию от периферии (кожа, мышцы, внутренние органы) в ЦНС. Знание морфологических и цитохимических особенностей и изменений в ЧУСН важно при исследовании хронического болевого синдрома [7] и нарушений сенсорной иннервации, вызванных различными патологическими процессами [5]. Несмотря на то, что ЧУСН занимает ключевое место в цепи передачи сенсорной информации в ЦНС, закономерности его эмбрионального развития изучены недостаточно. Основные работы выполнены классическими нейрогистологическими методами и с помощью электронной микроскопии [1, 3]. Экспрессия дифференцировочных маркеров, к которым относятся белки промежуточных филаментов и белок S100, в клетках развивающегося ЧУСН изучена лишь фрагментарно. Цель настоящего исследования — изучение экспрессии белка промежуточных филаментов — виментина и белка S100 в клетках формирующегося ЧУСН крысы в пренатальном онтогенезе. Материал и методы. При выполнении работы использовали беременных самок крыс линии Вистар (n=10). Исследовали ЧУСН, соответствующие шейному отделу спинного мозга на 12-, 14-, 15-, 17-еи 19-е сутки внутрибей каждого срока). Первым днем беременности считался день обнаружения сперматозоидов в вагинальном мазке после подсадки самцов к самкам. Содержание, умерщвление животных, экспериментальные мероприятия осуществляли с учетом «Правил проведения работ с использованием экспериментальных животных» (Приказ № 755 от 12.08.1977 г. МЗ СССР). Материал фиксировали в цинкэтанол-формальдегиде [2], обезвоживали в спиртах возрастающей концентрации и заливали в парафин с использованием петролейного эфира (Вектон, Россия) в качестве промежуточной среды. Для исследования изготавливали серийные срезы толщиной 5 мкм. Виментин выявляли с помощью мышиных моноклональных антител (V9, Dako, Дания) в разведении 1:100. Белок S100 определяли с помощью кроличьих поликлональных антител (Z0311, Dako, Дания) в разведении 1:600. В качестве вторичных антител для реакции на виментин применяли антитела из набора EnVision+System Labbeled Polymer-HRP Anti-Mouse (K4001;Dako, Дания), для выявления белка S100 использовали набор Super Sensitive Polymer-HRP Detection Kit HRP/Dab (Bio Genex, США). Визуализацию прореагировавших антител проводили с использованием диаминобензидинового хромогена DAB+ (Dako, Дания). Затем часть срезов докрашивали толуидиновым синим по Нисслю, гематоксилином или астровым синим. Результаты исследования. На 12-е сутки эмбрионального развития закладки ЧУСН у крысы представляют собой небольшие скопления мелких клеток с округлыми ядрами и тонким ободком цитоплазмы, расположенные рядом с формирующимся спинным мозгом. При иммуногистохимической реакции на виментин цитоплазма этих клеток интенсивно окрашивается. На 14-е сутки развития число клеток в формирующемся узле увеличивается. Среди них выявляются мелкие Vim-иммунопозитивные и крупные Vimиммунонегативные клетки. Последние локализуются преимущественно в вентральной части ЧУСН. Позднее, на 15-еи 17-е сутки, крупные клетки, не экспрессирующие виментин, обнаруживаются и в дорсальной части ганглия. Белок S100 на 12–17-е сутки развития в клетках ЧУСН не экспрессируется. У плодов 19-х суток развития клетки узла приобретают топографию, сходную с таковой в узле взрослой крысы. В структуре ЧУСН можно четко дифференцировать нейробласты и окружающие их презумптивные клетки-сателлиты. Виментин обнаруживается в цитоплазме всех развивающихся сателлитоцитов, в то время как в нейробластах он не экспрессируется (рисунок, а). На 19-е сутки развития в части клеток ЧУСН выявляется белок S100. S100-иммунопозитивными оказываются некоторые нейробласты, нейролеммоциты формирующихся нервных стволов, а также прилежащие к нейробластам дифференцирующиеся клетки-сателлиты (рисунок, б, в). При изучении ЧУСН новорожденных крысят было установлено, что все клетки-сателлиты синтезируют виментин, а молодые нейроны соответствующего маркера не содержат. После рождения белок S100 начинает синтезироваться не только в клетках-сателлитах, но и в молодых чувствительных нейронах. При этом отмечено, что в зависимости от размеров клеток интенсивность реакции на белок S100 меняется. Молодые нейроны меньшего диаметра (10–12 мкм) имеют слабую реакцию на S100, более крупные клетки (25–30 мкм) более интенсивно окрашены. Клетки-сателлиты обладают интенсивной иммунореактивностью, в них белок S100 локализуется преимущественно в околоядерной зоне. Положительная реакция на S100 наблюдается также в цитоплазме нейролеммоцитов. Обсуждение полученных данных. В иммуногистохимических исследованиях, касающихся развития ЧУСН, анализируется в основном нейроногенез, но мало внимания уделяется сателлитной глии. Однако надлежащее функционирование нейронов ЧУСН не может не зависеть от состава и функционального статуса окружающих их глиоцитов. Известно, что для глиальных элементов зрелого ЧУСН характерна экспрессия виментина и белка S100 [6]. В настоящем исследовании показано, что данные белки могут служить маркерами сателлитных глиоцитов в поздние сроки внутриутробного развития и ранний постнатальный период. При этом на ранних стадиях эмбриогенеза ни один из них не обладает избирательностью по отношению к предшественникам сателлитоцитов. Как известно, нейральные и глиальные элементы ЧУСН возникают из нервного гребня, а его мигрирующие клетки экспрессируют виментин [4]. Выявленные в настоящем исследовании виментин-содержащие клетки на 12–17-е сутки внутриутробного развития могут являться предшественниками как чувствительных нейронов, так и сателлитных глиоцитов, а также нейролеммоцитов. Предполагается, что на этом этапе развития среди них также могут присутствовать и недифференцированные клетки нервного гребня. В более поздние сроки (19-е сутки внутриутробного и 1-е сутки постнатального развития) нейробласты и молодые нейроны перестают экспрессировать виментин. Этот белок остается только в клетках дифференцирующейся глии. В эти же сроки в глиальных элементах ЧУСН начинается экспрессия белка S100, что свидетельствует об их вступлении в более позднюю стадию дифференцировки. Таким образом, установлено, что на 19-е сутки внутриутробного развития формирующиеся глиоциты ЧУСН у крыс приобретают локализацию, характерную для ЧУСН у взрослых животных: они располагаются вокруг нейронов, тесно контактируя с ними. В этот срок при использовании иммуногистохимических маркеров (виментина и белка S100) можно четко дифференцировать клетки-сателлиты. Показано, что уже в 1-е сутки постнатального развития проявляется тенденция к накоплению белка S100 в более крупных нейронах, характерная для зрелых ЧУСН.×
Об авторах
Елена Андреевна Колос
Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины СЗО РАМНлаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы, отдел общей и частной морфологии 197376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, 12
Дмитрий Эдуардович Коржевский
Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины СЗО РАМН
Email: iemmorphol@yandex.ru
лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы, отдел общей и частной морфологии 197376, Санкт-Петербург, ул. Академика Павлова, 12
Список литературы
- Кнорре А. Г. Эмбриональный гистогенез. Л., Медицина, 1971.
- Коржевский Д. Э., Сухорукова Е. Г., Гилерович Е. Г. и др. Преимущества и недостатки цинк-этанол-формальдегида как фиксатора для иммуногистохимических исследований и конфокальной лазерной микроскопии. Морфология, 2013, т. 143, вып. 2, с. 81–85.
- Ноздрачев А. Д. и Чумасов Е. И. Периферическая нервная система. СПб., Наука, 1999.
- Boisseau S. and Simonneau M. Mammalian neuronal differentiation: early expression of a neuronal phenotype from mouse neural crest cells in a chemically defined culture. Development, 1989, v. 106, № 4, p. 665–674.
- Kishi M., Tanabe J., Schmelzer J. D. and Low P. A. Morphometry of dorsal root ganglion in chronic experimental diabetic neuropathy. Diabetes, 2002, v. 51, № 3, р. 819–824.
- Nascimento R. S., Santiago M. F., Marques S. A. et al. Diversity among satellite glial cells in dorsal root ganglia of the rat. Braz. J. Med. Biol. Res., 2008, v. 41, № 11, р. 1011–1017.
- Sapunar D., Kostic S., Banozic A. and Puljak L. Dorsal root gang lion — a potential new therapeutic target for neuropathic pain. J. Pain. Res., 2012, № 5, р. 31–38.
Дополнительные файлы
