ИЗМЕНЕНИЕ ФОРМИРОВАНИЯ Y-НЕЙРОНОВ ЗРИТЕЛЬНОЙ СИСТЕМЫ КОШКИ В РАННЕМ ПОСТНАТАЛЬНОМ ОНТОГЕНЕЗЕ ПОД ВЛИЯНИЕМ БИНОКУЛЯРНОЙ РИТМИЧЕСКОЙ СВЕТОВОЙ СТИМУЛЯЦИИ



Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

С целью изучения влияния искусственной бинокулярной ритмической световой стимуляции на развитие структурнофункциональной организации Y-нейронов зрительной системы кошки в онтогенезе исследовали распределение в наружном коленчатом теле (НКТ) и заднемедиальном поле латеральной супрасильвиевой борозды (PMLS) нейронов, иммунопозитивных к антителам SMI-32. Анализировали послойное распределение SMI-32-позитивных нейронов и площадь сечения их тел у интактных животных (n=4) и у котят (n=4), росших в условиях ритмической световой стимуляции с частотой 15 Гц в течение 4 мес. У стимулированных животных выявлено изменение в послойном распределении иммунопозитивных нейронов как в НКТ (снижение доли иммунопозитивных клеток в слое С М), так и в PMLS (снижение доли иммунопозитивных клеток в слое V). Морфометрический анализ показал, что у стимулированных котят происходит значимое снижение площади сечения тел иммунопозитивных нейронов только в слоях III и V области PMLS. Полученные данные позволяют предположить наличие у стимулированных животных функциональных нарушений Y-проводящего канала, обусловленных выявленными структурнометаболическими изменениями Y-нейронов.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Наталья Сергеевна Меркульева

Институт физиологии им. И. П. Павлова РАН

Email: mer-natalia@yandex.ru
лаборатория нейроморфологии 199034, Санкт-Петербург, наб. Макарова, 6

Александр Александрович Михалкин

Институт физиологии им. И. П. Павлова РАН

Email: michalkin@mail.ru
лаборатория нейроморфологии 199034, Санкт-Петербург, наб. Макарова, 6

Нина Ивановна Никитина

Институт физиологии им. И. П. Павлова РАН

лаборатория нейроморфологии 199034, Санкт-Петербург, наб. Макарова, 6

Денис Александрович Нефёдов

Институт физиологии им. И. П. Павлова РАН

Email: den-nefedov86@rambler.ru
лаборатория нейроморфологии 199034, Санкт-Петербург, наб. Макарова, 6

Феликс Николаевич Макаров

Институт физиологии им. И. П. Павлова РАН

Email: felixmakarov@mail.ru
лаборатория нейроморфологии 199034, Санкт-Петербург, наб. Макарова, 6

Список литературы

  1. Меркульева Н. С., Михалкин А. А., Никитина Н. И. и Макаров Ф. Н. Развитие связей первичной зрительной коры с центром анализа движений: роль зрительного окружения. Морфология, 2011, т. 140, вып. 6, с. 24–31.
  2. Anderson J. C., Da Costa N. M. and Martin K. A.C. The W cell pathway to cat primary visual cortex. J. Comp. Neurol., 2009, v. 516, p. 20–35.
  3. Berson D. M. Cat lateral suprasylvian cortex: Y-cell inputs and corticotectal projection. J. Neurophysiol., 1985, v. 53, p. 544–556.
  4. Bickford M. E., Guido W. and Godwin D. W. Neurofilament proteins in Y-cells of the cat lateral geniculate nucleus: normal expression and alteration with visual deprivation. J. Neurosci., 1998, v. 18, p. 6549–6557.
  5. Burnat K., Vandenbussche E. and Zernicki B. Global motion detection is impaired in cats deprived early of patterned vision. Behav. Brain Res., 2002, v. 134, p. 59–65.
  6. Carden W. B., Guido W., Ziburkus J. et al. A novel means of Y cell identification in the developing lateral geniculate nucleus of the cat. Neurosci. Letters, 2000, v. 295, p. 5–8.
  7. Cynader H., Berman N. and Hein A. Cats reared in stroboscopic illumination: effects on receptive fields in visual cortex. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1973, v. 70, p. 1353–1354.
  8. Daw N. W. Visual development. New York, Springer, 2006.
  9. DeAngelis G. C., Ohzawa I. and Freeman R. D. Spatiotemporal organization of simple-cell receptive fields in the cat’s striate cortex. I. General characteristics and postnatal development. J. Neurophysiol., 1993, v. 69, p. 1091–1117.
  10. Dreher B., Wang C., Turlejski K. J. et al. Areas PMLS and 21a of cat visual cortex: two functionally distinct areas. Cerebral Cortex, 1996, v. 6, p. 585–599.
  11. Duffy K. R. and Livingstone M. S. Loss of neurofilament labeling in the primary visual cortex of monocularly deprived monkeys. Cerebral Cortex, 2005, v. 15, p. 1146–1154.
  12. Garraghty P. E., Roe A. and Sur M. Specification of retinogeniculate X and Y axon arbors in cat: fundamental differences in developmental programs. Dev. Brain Res., 1998, v. 107, p. 227–231.
  13. Guillery R. W. A study of Golgi preparations from the dorsal lateral geniculate nucleus of the adult cat. J. Comp. Neurol., 1966, v. 128, p. 21–50.
  14. Kawasaki H., Crowley J. C., Livesey F. J. and Katz L. C. Molecular organization of the ferret visual thalamus. J. Neurosci., 2004, v. 24, p. 9962–9970.
  15. Kennedy H. and Orban G. A. Response properties of visual cortical neurons in cats reared in stroboscopic illumination. J. Neuro physiol., 1983, v. 49, p. 686–704.
  16. Kogan C. S., Zangenehpour S. and Chaudhuri A. Developmental profiles of SMI-32 immunoreactivity in monkey striate cortex. Dev. Brain Res., 2000, v. 119, p. 85–95.
  17. Kumar S., Yin X., Trapp B.D et al. Relating interactions between neurofilaments to the structure of axonal neurofilament distributions through polymer brush models. Biophys. J., 2002, v. 82, p. 2360–2372.
  18. Lomber S. G., MacNeil M. A. and Payne B. R. Amplification of thalamic projections to middle suprasylvian cortex following ablation of immature primary visual cortex in the cat. Cerebr. Cortex, 1995, v. 2, p. 166–191.
  19. McCall M. A., Tong L. and Spear P.D. Development of neuronal responses in cat posteromedial lateral suprasylvian visual cortex. Brain Res., 1988, v. 447, p. 67–78.
  20. O’Leary T. P., Kutcher M. R., Mitchell D. E. and Duffy K. R. Re covery of neurofilament following early monocular deprivation. Front. Neurosci., 2012, v. 6, p. 1–11.
  21. Pasol J., Feuer W., Yang C. et al. Phosphorylated neurofilament heavy chain correlations to visual function, optical coherence tomography, and treatment. Multiple Sclerosis Int. J., 2010, v. 2010, p. 1–15.
  22. Rosenquist A. C. Connections of visual cortical areas in the cat. In: Cerebral Cortex. New York, London, Plenum Press, 1985, p. 81–117.
  23. Sireteanu R. and Best J. Squint-induced modification of visual receptive fields in the lateral suprasylvian cortex of the cat: binocular interaction, vertical effect and anomalous correspondence. Eur. J. Neurosci., 1992, v. 4, p. 235–242.
  24. Sternberger L. A. and Sternberger N. H. Monoclonal antibodies distinguish phosphorylated and nonphosphorylated forms of neurofilaments in situ. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1983, v. 80, p. 6126–6130.
  25. Stone J. Parallel processing in the visual system. New York, London, Plenum Press, 1983.
  26. Sur M. Development and plasticity of retinal X and Y axon terminations in the cat’s lateral geniculate nucleus. Brain Behav. Evol., 1988, v. 31, p. 243–251.
  27. Wilson P. D., Rowe M. H. and Stone J. Properties of relay cells in cat’s lateral geniculate nucleus: a comparison of W-cells with X- and Y-cells. J. Neurophysiol., 1976, v. 39, p. 1193–1209.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Эко-Вектор, 2014


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: № 0110212 от 08.02.1993.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах