ИЗМЕНЕНИЯ КАЛЬБИНДИН-СОДЕРЖАЩИХ НЕЙРОНОВ ЗАДНЕГО РОГА СЕРОГО ВЕЩЕСТВА СПИННОГО МОЗГА И ЧУВСТВИТЕЛЬНОГО УЗЛА СПИННОМОЗГОВОГО НЕРВА БЕЛОЙ КРЫСЫ ПОСЛЕ СЕНСОРНОЙ ДЕПРИВАЦИИ



Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

У крыс линии Вистар (n=4) иммуногистохимическим методом исследовали влияние капсаицина на морфометрические и структурные характеристики нейронов заднего рога серого вещества T II-сегмента спинного мозга (СМ) и второго грудного чувствительного узла спинномозгового нерва (ЧУСН), содержащих кальбиндин (КБ) с молекулярной массой 28 килодальтон. Капсаицин вводили взрослым животным 3-кратно с интервалом 24 ч в суммарной дозе 125 мг/кг, материал брали на 14-е сутки. Введение капсаицина вызвало уменьшение доли КБ-иммунопозитивных (КБ-ИП) нейронов в ЧУСН (на 60%) и в пластинах заднего рога I-II-III (на 8, 18 и 15% соответственно), средние размеры КБ-ИП-нейронов увеличились за счет внутриклеточного отека. В результате деафферентации развивались однотипные морфометрические и структурные изменения КБ-ИП-нейронов как в ЧУСН, так и в заднем роге серого вещества СМ, которые проявлялись центральным хроматолизом, вакуолизацией ядра и цитоплазмы, свидетельствуя о гидропической дистрофии. О необратимости выявленных изменений в нейронах ЧУСН и пластинах I, II и V заднего рога СМ свидетельствовали деформация ядра, лизис ядрышка, уменьшение числа КБ-содержащих нейронов, признаки нейронофагии с образованием остаточных узелков на месте погибших клеток.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Валентин Викторович Шилкин

Ярославская государственная медицинская академия

Email: shilkin39@mail.ru
кафедра нормальной физиологии с биофизикой 150000, г. Ярославль, ул. Революционная, 5

Валентина Вячеславовна Порсева

Ярославская государственная медицинская академия

Email: vvporseva@mail.ru
кафедра нормальной физиологии с биофизикой 150000, г. Ярославль, ул. Революционная, 5

Петр Михайлович Маслюков

Ярославская государственная медицинская академия

Email: mpm@yma.ac.ru
кафедра нормальной физиологии с биофизикой 150000, г. Ярославль, ул. Революционная, 5

Андрей Анатольевич Стрелков

Ярославская государственная медицинская академия

Email: strelkov-yar@mail.ru
кафедра нормальной физиологии с биофизикой 150000, г. Ярославль, ул. Революционная, 5

Список литературы

  1. Маслюков П. М., Коробкин А. А., Коновалов В. В. и др. Возрастное развитие кальбиндин-иммунопозитивных нейронов симпатических узлов крысы. Морфология, 2012, т. 141, вып. 1, с. 77-80.
  2. Маслюков П. М., Порсева В. В., Корзина М. Б. и Ноздрачев А. Д. Нейрохимические особенности сенсорных нейронов в онтогенезе. Росс. физиол. журн., 2013, т. 99, № 7, с. 777-792.
  3. Порсева В. В., Шилкин В. В., Корзина М. Б. и др. Особенности возрастных изменений НФ200+-нейронов чувствительных узлов различных сегментарных уровней при химической деафферентации. Морфология, 2012, т. 142, вып. 4, с. 37-42.
  4. Antal M., Freund T. F. and Polgár E. Calcium-binding proteins, parvalbumin- and calbindin-D28k-immunoreactive neurons in the rat spinal cord and dorsal root ganglia: a light and electron microscopic study. Comp. Neurol., 1990, v. 295, № 3, p. 467-484.
  5. Brouns I., Van Genechten J., Hayashi H. et al. Dual sensory innervation of pulmonary neuroepithelial bodies. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol., 2003, v. 28, № 3, р. 275-285.
  6. Сhen J. H., Weng H. R. and Dougherty P. M. Sensitization of dorsal root reflexes in vitro and hyperalgesia in neonatal rats produced by capsaicin. Neuroscience, 2004, v. 126, № 3, р. 743-751.
  7. Donnerer J., Liebmann I. and Schicho R. Differential regulation of 3-beta-hydroxysteroid dehydrogenase and vanilloid receptor TRPV1 mRNA in sensory neurons by capsaicin and NGF. Pharmacolojy, 2005, v. 73, № 2, р. 97-101.
  8. Fuchs A., Lirk P., Stucky C. et al. Painful nerve injuri decreased resting cytosolic calcium concentrations in sensory neurons of rats. Anesthesiology, 2005, v. 102, № 6, р. 1217-1225.
  9. Gibbons S. J., Brorson J. R., Bleakman D. et al. Calcium influx and neurodegeneration. Ann. N Y Acad. Sci., 1993, v. 679, p. 22-33.
  10. Holzer P. Local effector functions of capsaicin-sensitive sensory nerve endings: involvement of tachikinins, calcitonin gene-related peptide and other neuropeptides. Neuroscience, 1988, v. 24, № 3, р. 739-768.
  11. Holzer P. Capsaicin: cellular targets, mechanisms of action, and selectivity for thin sensory neurons. Pharmacol. Rev., 1991, v. 43, p. 143-201.
  12. Ichikawa H. and Sugimoto T. Co-expression of VRL-1 and calbindin D-28k in the rat sensory ganglia. Brain Res., 2002, v. 924, № 1, p. 109-112.
  13. Jin H. W., Ichikawa H., Fujita M. et al. Involvement of caspase cascade in capsaicin-induced apoptosis of dorsal root ganglion neurons. Brain Res., 2005, v. 1056, № 2, р. 139-146.
  14. Kim J. J., Chang I. Y., Chung Y. Y. et al. Immunohistochemical studies on the calbindin D-28K and parvalbumin positive neurons in the brain stem and spinal cord after transection of spinal cord of rats. Korean J. Phys. Anthropol., 2002, v. 15, № 4, p. 305-329.
  15. Li Y. N., Li Y. C., Kuramoto H. et al. Immunohistochemical de monst ration of the calcium channel alpha2 subunit in the chicken dorsal root ganglion and spinal cord: a special reference to colocalization with calbindin-D28k in dorsal root ganglion neurons. Neurosci. Res., 2007, v. 59, № 3, p. 304-308.
  16. Lu E., Llano D. A. and Sherman S. M. Different distributions of cal bindin and calretinin immunostaining across the medial and dorsal divisions of the mouse medial geniculate body. Hearing Res., 2009, v. 257, p. 16-23.
  17. Ma Q. P. Expression of capsaicin receptor (VR1) by myelinated primary afferent neurons in rats. Neurosci. Lett., 2002, v. 319, р. 87-90.
  18. Neher E. Details of Ca2+ dynamics matter. Physiology, 2008. v. 586, p. 2031.
  19. Piper A. S. and Docherty R. J. One-way cross-desensitization between P2X purinoceptors and vanilloid receptors in adult rat dorsal root ganglion neurons. J. Physiol., 2000, v. 15, № 523, р. 685-696.
  20. Punnakkal P., von Schoultz C., Haenraets K. et al. Morphological, biophysical and synaptic properties of glutamatergic neurons of the mouse spinal dorsal horn. J. Physiol., 2014, v. 592, № 4, p. 759-776.
  21. Rexed B. The cytoarchitectonic organization of the spinal cord of the cat. J. Сomp. Neurol., 1952, v. 96, p. 415-495.
  22. Schwaller B. The continuing disappearance of «pure» Ca2+ buffers. Cell Mol. Life Sci., 2009, v. 66, p. 275-300.
  23. Steiner T. J. and Turner L. M. Cytoarchitecture of the rat spinal cord. J. Physiol., 1972, v. 222, p. 123-125.
  24. Szallasi A. and Blumberg P. M. Vanilloid (capsaicin) receptors and mechanisms. Pharmacol. Rev., 1999, v. 51, № 2, p. 159-211.
  25. Torsney C., Meredith-Middleton J. and Fitzgerald M. Neonatal capsaicin treatment prevents the normal postnatal withdrawal of A fibres from lamina II without affecting fos responses to innocuous peripheral stimulation. Brain Res. Dev. Brain Res., 2000, v. 11, v. 121, № 1, p. 55-65.
  26. Yoshida S., Senba E., Kubota Y. et al. Calcium-binding proteins calbindin and parvalbumin in the superficial dorsal horn of the rat spinal cord. Neuroscience, 1990, v. 37, № 3, p. 839-848.
  27. Zheng J., Lu Y. and Perl E. R. Inhibitory neurones of the spinal substantia gelatinosa mediate interaction of signals from primary afferents. J. Physiol., 2010, v. 588, p. 2065-2075.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Эко-Вектор, 2014


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: № 0110212 от 08.02.1993.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах