Отправить статью по E-mail Распределение коннексина 43 в шишковидной железе человека
- Авторы: Суфиева Д.А.1, Фeдорова Е.А.1, Яковлев В.С.1, Григорьев И.П.1
-
Учреждения:
- Институт экспериментальной медицины
- Выпуск: Том 161, № 1 (2023)
- Страницы: 19-26
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://j-morphology.com/1026-3543/article/view/569156
- DOI: https://doi.org/10.17816/morph.569156
- ID: 569156
Цитировать
Полный текст
Открытый доступ
Доступ предоставлен
Доступ платный или только для подписчиков
Аннотация
Обоснование. Коннексин 43 (Cx43), один из важных белков щелевых контактов астроцитов, необходим для осуществления межклеточной коммуникации. На сегодня данные о щелевых контактах в клетках шишковидной железы человека единичны, а Cx43 ранее в этом органе не исследовался.
Цель исследования — изучить распределение щелевых контактов в шишковидной железе человека с применением методики одновременного выявления Cx43 и маркёра астроцитов — глиального фибриллярного кислого белка (GFAP).
Материалы и методы. Материалом для исследования служили фиксированные и залитые в парафин образцы шишковидной железы человека (n=4). Возраст обследуемых составил от 19 до 34 лет. Для одновременного выявления белков Cx43 и GFAP в эпифизе мозга человека применяли методы иммуногистохимии с последующим анализом с помощью конфокального лазерного сканирующего микроскопа LSM 800 (Carl Zeiss, Германия).
Результаты. Проведённое нами иммуногистохимическое исследование впервые показало наличие белка щелевых контактов Cx43 в эпифизе мозга человека. С помощью двойного иммуномечения белков Cx43 и GFAP и применения конфокального микроскопа удалось визуализировать отдельные скопления структур, содержащих Cx43, которые не различались при использовании микроскопии в проходящем свете, а также показать локализацию Cx43 на мембране астроцитов.
Заключение. Разработанный метод позволяет определять Cx43-позитивные структуры в ткани эпифиза человека, которые локализованы главным образом в области отростков астроцитов.
Полный текст
Об авторах
Дина Азатовна Суфиева
Институт экспериментальной медицины
Автор, ответственный за переписку.
Email: dinobrione@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-0048-2981
SPIN-код: 3034-3137
к.б.н.
Россия, Санкт-ПетербургЕлена Анатольевна Фeдорова
Институт экспериментальной медицины
Email: el-fedorova2014@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-0190-885X
SPIN-код: 5414-4122
к.б.н.
Россия, Санкт-ПетербургВладислав Станиславович Яковлев
Институт экспериментальной медицины
Email: 1547053@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-2136-6717
SPIN-код: 7524-9870
Россия, Санкт-Петербург
Игорь Павлович Григорьев
Институт экспериментальной медицины
Email: ipg-iem@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-3535-7638
SPIN-код: 1306-4860
к.б.н.
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Gheban B.A., Rosca I.A., Crisan M. The morphological and functional characteristics of the pineal gland // Med Pharm Rep. 2019. Vol. 92, N 3. P. 226–234. doi: 10.15386/mpr-1235
- Samanta S. Physiological and pharmacological perspectives of melatonin // Arch Physiol Biochem. 2022. Vol. 128, N 5. P. 1346–1367. doi: 10.1080/13813455.2020.1770799
- Ahmad S.B., Ali A., Bilal M., et al. Melatonin and health: insights of melatonin action, biological functions, and associated disorders // Cell Mol Neurobiol. 2023. Vol. 43, N 6. P. 2437–2458. doi: 10.1007/s10571-023-01324-w
- Coon S.L., Fu C., Hartley S.W., et al. Single cell sequencing of the pineal gland: the next chapter // Front Endocrinol (Lausanne). 2019. Vol. 10. P. 590. doi: 10.3389/fendo.2019.00590
- Eugenin E.A., Valdebenito S., Gorska A.M., et al. Gap junctions coordinate the propagation of glycogenolysis induced by norepinephrine in the pineal gland // J Neurochem. 2019. Vol. 151, N 5. P. 558–569. doi: 10.1111/jnc.14846
- Møller M., Midtgaard J., Qvortrup K., Rath M.F. An ultrastructural study of the deep pineal gland of the Sprague Dawley rat using transmission and serial block face scanning electron microscopy: cell types, barriers, and innervation // Cell Tissue Res. 2022. Vol. 389, N 3. P. 531–546. doi: 10.1007/s00441-022-03654-5
- Huang S.K., Taugner R. Gap junctions between guinea-pig pinealocytes // Cell Tissue Res. 1984. Vol. 235, N 1. P. 137–141. doi: 10.1007/BF00213733
- García-Mauriño J.E., Boya J. Postnatal development of the rabbit pineal gland. A light- and electron-microscopic study // Acta Anat (Basel). 1992. Vol. 143, N 1. P. 19–26. doi: 10.1159/000147224
- Berthoud V.M., Hall D.H., Strahsburger E., et al. Gap junctions in the chicken pineal gland // Brain Res. 2000. Vol. 861, N 2. P. 257–270. doi: 10.1016/s0006-8993(00)01987-9
- Omura Y. Pattern of synaptic connections in the pineal organ of the ayu, Plecoglossus altivelis (Teleostei) // Cell Tissue Res. 1984. Vol. 236, N 3. P. 611–617. doi: 10.1007/BF00217230
- Moller M. The ultrastructure of the human fetal pineal gland. I. Cell types and blood vessels // Cell Tissue Res. 1974. Vol. 152, N 1. P. 13–30. doi: 10.1007/BF00224208
- Belluardo N., Trovato-Salinaro A., Mudò G., et al. Structure, chromosomal localization, and brain expression of human Cx36 gene // J Neurosci Res. 1999. Vol. 57, N 5. P. 740–752.
- Морфологическая диагностика. Подготовка материала для гистологического исследования и электронной микроскопии: руководство / под ред. Д.Э. Коржевского. Санкт-Петербург: СпецЛит, 2013.
- Sufieva D.A., Kirik O.V., Korzhevskii D.E. Astrocyte markers in the tanycytes of the third brain ventricle in postnatal development and aging in rats // Russ J Dev Biol. 2019. Vol. 50. P. 146–153. doi: 10.1134/S1062360419030068
- Коржевский Д.Э. Особенности использования иммуногистохимических методов при проведении экспериментальных исследований. В кн.: Вопросы морфологии XXI века. Выпуск 6. Сборник научных трудов Всероссийской научной конференции «Гистогенез, реактивность и регенерации тканей» / под ред. Одинцовой И.А., Костюкевич С.В. Вопросы морфологии XXI века. Выпуск 6. Сборник научных трудов Всероссийской научной конференции «Гистогенез, реактивность и регенерации тканей»; 13–14 мая 2021, Санкт-Петербург. Санкт-Петербург : «Издательство ДЕАН»; 2021. С. 45–48.
- Безнин Г.В., Суфиева Д.А., Коржевский Д.Э. Различия в результатах реакции на белок C23 при выявлении его в нейронах гиппокампа разными способами. В кн.: Сборник материалов III Всероссийской молодёжной конференции с международным участием, посвящённой 100-летию Физиологического общества им. И.П. Павлова; 23–25 октября 2017; Санкт-Петербург. Санкт-Петербург : Институт экспериментальной медицины, 2017. С. 27–30.
- Карпенко М.Н. Современные методы микроскопии, основанные на использовании эффекта флуоресценции. В кн.: Иммуноцитохимия и конфокальная микроскопия / под редакцией Д.Э. Коржевского. Санкт-Петербург : СпецЛит, 2018. С. 8–19.
- Tovey S.C., Brighton P.J., Bampton E.T., et al. Confocal microscopy: theory and applications for cellular signaling // Methods Mol Biol. 2013. Vol. 937. P. 51–93. doi: 10.1007/978-1-62703-086-1_3
- Hodson D.J., Legros C., Desarménien M.G., Guérineau N.C. Roles of connexins and pannexins in (neuro)endocrine physiology // Cell Mol Life Sci. 2015. Vol. 72, N 15. P. 2911–2928. doi: 10.1007/s00018-015-1967-2
Дополнительные файлы
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).