Распределение коннексина 43 в шишковидной железе человека
- Авторы: Суфиева Д.А.1, Фeдорова Е.А.1, Яковлев В.С.1, Григорьев И.П.1
-
Учреждения:
- Институт экспериментальной медицины
- Выпуск: Том 161, № 1 (2023)
- Страницы: 19-26
- Раздел: Оригинальные исследования
- Статья получена: 07.09.2023
- Статья одобрена: 26.09.2023
- Статья опубликована: 22.11.2023
- URL: https://j-morphology.com/1026-3543/article/view/569156
- DOI: https://doi.org/10.17816/morph.569156
- ID: 569156
Цитировать
Полный текст
![Открытый доступ](https://j-morphology.com/lib/pkp/templates/images/icons/text_open.png)
![Доступ закрыт](https://j-morphology.com/lib/pkp/templates/images/icons/text_unlock.png)
![Доступ закрыт](https://j-morphology.com/lib/pkp/templates/images/icons/text_lock.png)
Аннотация
Обоснование. Коннексин 43 (Cx43), один из важных белков щелевых контактов астроцитов, необходим для осуществления межклеточной коммуникации. На сегодня данные о щелевых контактах в клетках шишковидной железы человека единичны, а Cx43 ранее в этом органе не исследовался.
Цель исследования — изучить распределение щелевых контактов в шишковидной железе человека с применением методики одновременного выявления Cx43 и маркёра астроцитов — глиального фибриллярного кислого белка (GFAP).
Материалы и методы. Материалом для исследования служили фиксированные и залитые в парафин образцы шишковидной железы человека (n=4). Возраст обследуемых составил от 19 до 34 лет. Для одновременного выявления белков Cx43 и GFAP в эпифизе мозга человека применяли методы иммуногистохимии с последующим анализом с помощью конфокального лазерного сканирующего микроскопа LSM 800 (Carl Zeiss, Германия).
Результаты. Проведённое нами иммуногистохимическое исследование впервые показало наличие белка щелевых контактов Cx43 в эпифизе мозга человека. С помощью двойного иммуномечения белков Cx43 и GFAP и применения конфокального микроскопа удалось визуализировать отдельные скопления структур, содержащих Cx43, которые не различались при использовании микроскопии в проходящем свете, а также показать локализацию Cx43 на мембране астроцитов.
Заключение. Разработанный метод позволяет определять Cx43-позитивные структуры в ткани эпифиза человека, которые локализованы главным образом в области отростков астроцитов.
Полный текст
![Доступ закрыт](https://j-morphology.com/lib/pkp/templates/images/icons/text_lock.png)
Об авторах
Дина Азатовна Суфиева
Институт экспериментальной медицины
Автор, ответственный за переписку.
Email: dinobrione@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-0048-2981
SPIN-код: 3034-3137
к.б.н.
Россия, Санкт-ПетербургЕлена Анатольевна Фeдорова
Институт экспериментальной медицины
Email: el-fedorova2014@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-0190-885X
SPIN-код: 5414-4122
к.б.н.
Россия, Санкт-ПетербургВладислав Станиславович Яковлев
Институт экспериментальной медицины
Email: 1547053@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-2136-6717
SPIN-код: 7524-9870
Россия, Санкт-Петербург
Игорь Павлович Григорьев
Институт экспериментальной медицины
Email: ipg-iem@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-3535-7638
SPIN-код: 1306-4860
к.б.н.
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Gheban B.A., Rosca I.A., Crisan M. The morphological and functional characteristics of the pineal gland // Med Pharm Rep. 2019. Vol. 92, N 3. P. 226–234. doi: 10.15386/mpr-1235
- Samanta S. Physiological and pharmacological perspectives of melatonin // Arch Physiol Biochem. 2022. Vol. 128, N 5. P. 1346–1367. doi: 10.1080/13813455.2020.1770799
- Ahmad S.B., Ali A., Bilal M., et al. Melatonin and health: insights of melatonin action, biological functions, and associated disorders // Cell Mol Neurobiol. 2023. Vol. 43, N 6. P. 2437–2458. doi: 10.1007/s10571-023-01324-w
- Coon S.L., Fu C., Hartley S.W., et al. Single cell sequencing of the pineal gland: the next chapter // Front Endocrinol (Lausanne). 2019. Vol. 10. P. 590. doi: 10.3389/fendo.2019.00590
- Eugenin E.A., Valdebenito S., Gorska A.M., et al. Gap junctions coordinate the propagation of glycogenolysis induced by norepinephrine in the pineal gland // J Neurochem. 2019. Vol. 151, N 5. P. 558–569. doi: 10.1111/jnc.14846
- Møller M., Midtgaard J., Qvortrup K., Rath M.F. An ultrastructural study of the deep pineal gland of the Sprague Dawley rat using transmission and serial block face scanning electron microscopy: cell types, barriers, and innervation // Cell Tissue Res. 2022. Vol. 389, N 3. P. 531–546. doi: 10.1007/s00441-022-03654-5
- Huang S.K., Taugner R. Gap junctions between guinea-pig pinealocytes // Cell Tissue Res. 1984. Vol. 235, N 1. P. 137–141. doi: 10.1007/BF00213733
- García-Mauriño J.E., Boya J. Postnatal development of the rabbit pineal gland. A light- and electron-microscopic study // Acta Anat (Basel). 1992. Vol. 143, N 1. P. 19–26. doi: 10.1159/000147224
- Berthoud V.M., Hall D.H., Strahsburger E., et al. Gap junctions in the chicken pineal gland // Brain Res. 2000. Vol. 861, N 2. P. 257–270. doi: 10.1016/s0006-8993(00)01987-9
- Omura Y. Pattern of synaptic connections in the pineal organ of the ayu, Plecoglossus altivelis (Teleostei) // Cell Tissue Res. 1984. Vol. 236, N 3. P. 611–617. doi: 10.1007/BF00217230
- Moller M. The ultrastructure of the human fetal pineal gland. I. Cell types and blood vessels // Cell Tissue Res. 1974. Vol. 152, N 1. P. 13–30. doi: 10.1007/BF00224208
- Belluardo N., Trovato-Salinaro A., Mudò G., et al. Structure, chromosomal localization, and brain expression of human Cx36 gene // J Neurosci Res. 1999. Vol. 57, N 5. P. 740–752.
- Морфологическая диагностика. Подготовка материала для гистологического исследования и электронной микроскопии: руководство / под ред. Д.Э. Коржевского. Санкт-Петербург: СпецЛит, 2013.
- Sufieva D.A., Kirik O.V., Korzhevskii D.E. Astrocyte markers in the tanycytes of the third brain ventricle in postnatal development and aging in rats // Russ J Dev Biol. 2019. Vol. 50. P. 146–153. doi: 10.1134/S1062360419030068
- Коржевский Д.Э. Особенности использования иммуногистохимических методов при проведении экспериментальных исследований. В кн.: Вопросы морфологии XXI века. Выпуск 6. Сборник научных трудов Всероссийской научной конференции «Гистогенез, реактивность и регенерации тканей» / под ред. Одинцовой И.А., Костюкевич С.В. Вопросы морфологии XXI века. Выпуск 6. Сборник научных трудов Всероссийской научной конференции «Гистогенез, реактивность и регенерации тканей»; 13–14 мая 2021, Санкт-Петербург. Санкт-Петербург : «Издательство ДЕАН»; 2021. С. 45–48.
- Безнин Г.В., Суфиева Д.А., Коржевский Д.Э. Различия в результатах реакции на белок C23 при выявлении его в нейронах гиппокампа разными способами. В кн.: Сборник материалов III Всероссийской молодёжной конференции с международным участием, посвящённой 100-летию Физиологического общества им. И.П. Павлова; 23–25 октября 2017; Санкт-Петербург. Санкт-Петербург : Институт экспериментальной медицины, 2017. С. 27–30.
- Карпенко М.Н. Современные методы микроскопии, основанные на использовании эффекта флуоресценции. В кн.: Иммуноцитохимия и конфокальная микроскопия / под редакцией Д.Э. Коржевского. Санкт-Петербург : СпецЛит, 2018. С. 8–19.
- Tovey S.C., Brighton P.J., Bampton E.T., et al. Confocal microscopy: theory and applications for cellular signaling // Methods Mol Biol. 2013. Vol. 937. P. 51–93. doi: 10.1007/978-1-62703-086-1_3
- Hodson D.J., Legros C., Desarménien M.G., Guérineau N.C. Roles of connexins and pannexins in (neuro)endocrine physiology // Cell Mol Life Sci. 2015. Vol. 72, N 15. P. 2911–2928. doi: 10.1007/s00018-015-1967-2
Дополнительные файлы
![](/img/style/loading.gif)