Морфометрические особенности интрамуральных автономных нервных ганглиев межмышечного и подслизистого сплетений тонкой и толстой кишки крысы в постнатальном онтогенезе
- Авторы: Маслюков П.М.1, Будник А.Ф.2
-
Учреждения:
- федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Ярославский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
- федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Кабардино-Балкарский государственный университет им. Х.М. Бербекова»
- Раздел: Оригинальные исследования
- Статья получена: 06.04.2025
- Статья одобрена: 08.05.2025
- Статья опубликована: 17.08.2025
- URL: https://j-morphology.com/1026-3543/article/view/677905
- DOI: https://doi.org/10.17816/morph.677905
- ID: 677905
Цитировать
Полный текст



Аннотация
Обоснование. Морфология узлов межмышечного (МС) и подслизистого (ПС) сплетений кишечника взрослых животных достаточно изучена, тогда как данные о возрастных изменениях в современной литературе отрывочны.
Цель — исследование морфометрических особенностей интрамуральных узлов МС и ПС тонкой и толстой кишки крысы в постнатальном онтогенезе.
Методы. Работа выполнена на крысах различных возрастных групп: новорожденных, 10-, 20-, 30-, 60-суточных, 24-месячных крысах с использованием иммуногистохимического метода и флуоресцентных меченых антител к протеиновому генному продукту 9,5 (PGP9.5).
Результаты. В постнатальном онтогенезе происходило снижение числа ганглиев на 1 мм длины и увеличение площади ганглиев тонкой и толстой кишки. Средняя площадь узлов МС в тонкой и толстой кишке возрастала с момента рождения до 60 суток, а в ПС – в первые 30 суток жизни. Средняя плотность расположения узлов на 1 мм2 площади уменьшалась в МС в тонкой кишке – в первые 60 суток, а в толстой – на протяжении 12 месяцев; данный показатель в ПС снижался в тонкой и толстой кишке в первые 60 суток жизни. Среднее число PGP9.5-иммунореактивных (ИР) нейронов в одном ганглии в МС не изменялось в постнатальном онтогенезе, а в ПС увеличивалось в первые 10 суток жизни.
Заключение. В постнатальном онтогенезе в первые 30 суток жизни происходит увеличение размеров узлов МС и ПС и снижение плотности их расположения на единицу поверхности тонкой и толстой кишки. Форма узлов и число нейронов в узлах МС в постнатальном онтогенезе не меняется. Ганглии ПС, в отличие от МС тонкого и толстого кишечника крыс к моменту рождения являются незрелыми. Формирование сети узлов ПС происходит в первые 10 суток жизни.
Полный текст
Обоснование
Регуляция функции желудочно-кишечного тракта осуществляется сложной сетью интрамуральных узлов, которые относят к особому отделу автономной (вегетативной) нервной системы – метасимпатическому [1]. Интрамуральные узлы кишки млекопитающих и человека организованы в два основных нервных сплетения: межмышечное (МС) и подслизистое (ПС). МС и ПС сплетения состоят из скоплений нейронов и глиальных клеток в виде сети узлов, а также нервных волокон, связывающих эти ганглии между собой и эффекторными тканями. МС лежит между продольными и кольцевыми мышечными слоями, тогда как ПС находится внутри соединительной ткани подслизистой оболочки. ПС состоит из одного слоя довольно небольших ганглиев у грызунов, но у более крупных млекопитающих и человека представлено двумя слоями [2, 3].
Ранее считалось, что нейроны МС регулируют моторику желудка и кишечника, а нейроны ПС - транспорт ионов и воды через эпителий кишечника, а также секреторную функцию желез. Однако в последние годы было установлено, что связи сплетений являются более сложными. Доказано, что нейроны внешнего слоя ПС могут посылать волокна к циркулярным гладким мышцам, участвуя тем самым в регуляции моторики кишки, а также к нейронам симпатических превертебральных узлов [4].
Гистоархитектоника ганглиев МС и ПС животных различных видов в современной литературе изучена достаточно подробно [5-7]. Применение современных методов исследования, включая иммуногистохимические, позволило качественно и количественно охарактеризовать морфологию узлов различных отделов пищеварительной системы [8, 9].
В ходе постнатального развития происходит увеличение размеров нейронов узлов автономной нервной системы, изменение их нейрохимических характеристик [10-12]. Имеющиеся литературные данные свидетельствуют, что к моменту рождения ПС у грызунов отсутствует, и его формирование происходит после рождения [13, 14].
Тем не менее, имеющиеся количественные данные относительно формы и площади узлов, числа нейронов в узлах, размеров нейронов у животных различных возрастных групп от момента рождения до наступления старости являются неполными и отрывочными.
Цель
Целью исследования явилось исследование морфометрических особенностей интрамуральных узлов МС и ПС тонкой и толстой кишки крысы в постнатальном онтогенезе.
Материалы и Методы
Дизайн исследования
Проведено экспериментальное одноцентровое сплошное неконтролируемое неослеплённое исследование.
Работа выполнена на крысах различных возрастных групп: новорожденных, 10-, 20-, 30-, 60-суточных, 24-месячных крысах (по 5 в каждой возрастной группе). Эксперименты проводились в соответствии с отечественными и международными положениями о гуманном обращении с животными. Эвтаназию животных осуществляли летальной дозой уретана (3 г/кг, внутрибрюшинно).
Процедура иммуногистохимического анализа подробно описана в наших предыдущих работах [15]. Животных перфузировали вначале раствором стандартного фоcфатно-cолевого буфеpа (PBS), затем 4% pаcтвоpом паpафоpмальдегида на PBS. После перфузии участки двенадцатиперстной кишки и поперечной ободочной кишки длиной 0,5 см и извлекались и дофиксировались в той же смеси в течение 1-2 часов. Полученный материал разрезался вдоль оси кишки и расправлялся. На криостате изготавливались серийные продольные срезы толщиной 12 мкм.
Для выявления нервных структур использовался универсальный нейроиммуногистологический маркёр - протеиновый генный продукт 9,5 (PGP 9.5) [8, 9]. Использовались первичные антитела морской свинки к PGP9.5 (Abcam, США, разведение 1:200). Вторичные антитела были конъюгированы с флюорохромом - индокарбоцианином (Cy3, Jackson, США, разведение 1:100), дающим красную флюоресценцию.
Визуализацию препаратов на флуоресцентном микроскопе Olympus BX43 с соответствующим набором светофильтров (Япония). Фотографирование проводили с использованием цифровой CCD камерой Tucsen TCC 6.1ICE c программным обеспечением ISCapture 3.6 (Китай). Размеры отдельных нейронов и узлов определяли при помощи некоммерческой программы Fiji (Версия 2.11.0, США). Только нервные клетки, содержащие ядро, были включены в анализ. При отборе полей зрения для микрофотографирования использовался метод наименьших квадратов [16].
Этическая экспертиза
На проведение исследования получено разрешение Этического комитета Ярославского государственного медицинского университета (№ 29 от 21.02.2019 г.).
Статистический анализ
Размер выборки рассчитывался на основании ресурсного уравнения по Mead [17], где число животных для каждого возраста считали равным 5. Использовался метод многоэтапной гнездной выборки, при котором подсчет производился на 5 ганглиях в каждом из 5 срезов каждого из 5 животного для каждого сплетения, отдела кишечника и возраста [16].
Статистический анализ данных и построение графиков проводился с использованием программ Sigma Plot (Systat Software, США) и GraphPad Prism 8 (GraphPad Software, США). Проверка выборки на нормальность осуществлялась с использованием теста Шапиро-Уилка. Для нормального распределения величины представлены как средняя арифметическая ± стандартное отклонение, М±SD (n), где n - число значений, использовавшихся для подсчета среднего. Для оценки различий между разными группами использовали непарный параметрический one-way ANOVA тест. За уровень статистической значимости был взят p<0,05.
Результаты
Нейроны, содержащие универсальный нейроиммуногистологический маркёр PGP9.5, обнаруживались в тонкой и толстой кишке в МС и ПС с момента рождения и на протяжении всех исследованных периодов.
У всех животных ганглии МС в тонкой кишке были расположены параллельно, тогда как в толстой кишке предпочтительной ориентации ганглиев не отмечено. Ганглии МС были соединены между собой короткими пучками нервных волокон (рис. 1). Ганглии ПС были меньше по размерам, имели звездчатую неправильную форму и соединялись более тонкими пучками волокон (рис. 2).
У новорожденных крыс число ганглиев на 1 мм длины тонкой и толстой кишки было максимальным, а площадь ганглиев минимальной. В постнатальном онтогенезе происходило снижение числа ганглиев на 1 мм длины и увеличение площади ганглиев тонкой и толстой кишки в обоих сплетениях (рис. 3, 4).
Средняя площадь узлов МС возрастала с момента рождения до 60 суток жизни от 3865±335 до 8388±973 мкм2 (тонкая кишка) и от 3657±283 до 7758±871 мкм2 (толстая) и далее достоверно не изменялась (рис. 3). Не было выявлено достоверных различий между данным параметром в тонкой и толстой кишке (p>0,05).
В ПС тонкой и толстой кишки средняя площадь узлов также возрастала с момента рождения до 30 суток жизни от 520±137 до 1956±564 мкм2 (тонкая кишка) и от 240±33 до 871±67 мкм2 (толстая), после чего оставалась неизменной (рис. 3). Тем не менее, она была в несколько раз меньше по сравнению с МС в каждой возрастной группе. При этом средняя площадь узлов ПС в толстой кишке была достоверно меньше по сравнению с тонкой во всех возрастных группах (p<0,05).
В МС средняя плотность расположения узлов на 1 мм2 площади уменьшалась в тонкой и толстой кишке (рис. 4). При этом в тонкой кишке уменьшение плотности происходило с момента рождения (54±6,2) до 60 суток (13±2,3), а в толстой – от момента рождения (64±6,2) до 12 месяцев жизни (15±2,1). Не было отмечено достоверной разницы по этому показателю между различными возрастными группами за исключением 60 суток, где средняя плотность расположения узлов на 1 мм2 площади была достоверно выше в толстой кишке (p<0,05).
В ПС значение данного параметра также снижалось в первые 60 суток жизни от 348±45,1 до 61±6,4 (тонкая кишка) и от 276±38,3 до 81±9,1 (толстая). При этом в первые 10 суток жизни не наблюдалось достоверной разницы по этому показателю между тонкой и толстой кишкой. В то же время, начиная с 20 суток жизни и до старости плотность расположения узлов была выше в толстой кишке по сравнению с тонкой (p<0,05).
Среднее число нейронов в одном узле в МС было постоянным в постнатальном онтогенезе и не отличалось между различными возрастными группами, а также тонкой и толстой кишкой, при этом значение варьировали между 19±2,7 и 22±2,8 (рис. 5). Однако в ПС всех крыс в одном узле в среднем выявлялось меньшее число нейронов по сравнению с МС. При этом в ПС новорожденных крысят выявлялось меньше нервных клеток в одном узле (6±0,6 в тонкой и 7±0,5 в толстой кишке) по сравнению с 10-суточными крысятами (11±2,1 в тонкой и 12±2,8 в толстой кишке) (p<0,05). Далее количество нейронов в ПС между 10-суточными и более взрослыми животными в обоих отделах кишечника достоверно не отличалось (p>0,05).
Средняя площадь сечения нейронов возрастает с момента рождения до 60 суток жизни в МС и ПС тонкой и толстой кишки (рис. 6). Между данными показателями в тонкой и толстой кишке не было отмечено достоверных отличий. При этом начиная с 10-суточного возраста до 60 суток, средняя площадь сечения нейронов МС становится достоверно большей по сравнению с ПС (p<0,05). У старых крыс в ПС средняя площадь сечения нейронов опять возрастает по сравнению с предыдущими возрастными группами.
Обсуждение
Полученные результаты свидетельствуют, что у крысы МС и ПС тонкой и толстой кишки присутствуют к моменту рождения. В постнатальном онтогенезе происходит увеличение размеров нейронов, а также самих узлов МС и ПС. В МС число нейронов в узле не меняется после рождения животного, в то время как у крыс число нейронов ПС достоверно увеличивается в первые 10 суток жизни.
В отличие от прежних представлений [13, 14], нам удалось доказать наличие сформированного ПС уже у новорожденных крыс. Тем не менее, средняя площадь ганглиев и число нейронов в узле ПС меньше по сравнению с МС в каждой возрастной группе. При этом число нейронов в ПС возрастает в первые 10 суток жизни и далее достоверно не меняется.
Площадь узлов возрастает, а плотность нейронов и ганглиев на единице площади кишки снижается в раннем постнатальном онтогенезе, что соответствует литературным данным [18, 19]. Тем не менее, имеются противоречивые данные относительно изменения числа нейронов и плотности узлов на срезах у старых животных. Ряд авторов утверждает, что при старении происходит уменьшение числа нейронов, прежде всего в узлах МС [20, 21]. Результаты нашего исследования, а также данные других источников [7, 22] свидетельствуют, что значимого снижения числа нейронов в узлах при старении не происходит. Вероятно, различия между источниками можно объяснить видовыми различиями и особенностями примененных методик. Также есть данные, что при старении не происходит снижения общего числа нейронов, а происходит изменение нейрохимического состава. Например, уменьшается доля холинергических нейронов, но возрастает процент клеток, экспрессирующих нейрональную синтазу оксида азота [23, 24].
Размеры нейронов увеличиваются в раннем постнатальном онтогенезе в первые два месяца жизни в МС и ПС. Интересно, что у старых крыс размеры нейронов в МС остаются постоянными, но возрастают в ПС. Имеющиеся литературные данные на этот счет противоречивы [20, 21].
Заключение
В постнатальном онтогенезе в первые 30 суток жизни происходит увеличение размеров узлов МС и ПС и снижение плотности их расположения на единицу поверхности тонкой и толстой кишки. Форма узлов и число нейронов в узлах МС в постнатальном онтогенезе не меняется. Ганглии ПС, в отличие от МС тонкого и толстого кишечника крыс к моменту рождения являются незрелыми. Формирование гистотопографии сети узлов ПС происходит в первые 10 суток жизни. Таким образом, развитие МС и ПС кишечника происходит неравномерно по темпам и срокам, что нужно учитывать в экспериментальной практике, а также разработке новых лекарственных препаратов для гастроэнтерологии в педиатрии.
Обоснование
Регуляция функции желудочно-кишечного тракта осуществляется сложной сетью интрамуральных узлов, которые относят к особому отделу автономной (вегетативной) нервной системы – метасимпатическому [1]. Интрамуральные узлы кишки млекопитающих и человека организованы в два основных нервных сплетения: межмышечное (МС) и подслизистое (ПС). МС и ПС сплетения состоят из скоплений нейронов и глиальных клеток в виде сети узлов, а также нервных волокон, связывающих эти ганглии между собой и эффекторными тканями. МС лежит между продольными и кольцевыми мышечными слоями, тогда как ПС находится внутри соединительной ткани подслизистой оболочки. ПС состоит из одного слоя довольно небольших ганглиев у грызунов, но у более крупных млекопитающих и человека представлено двумя слоями [2, 3].
Ранее считалось, что нейроны МС регулируют моторику желудка и кишечника, а нейроны ПС - транспорт ионов и воды через эпителий кишечника, а также секреторную функцию желез. Однако в последние годы было установлено, что связи сплетений являются более сложными. Доказано, что нейроны внешнего слоя ПС могут посылать волокна к циркулярным гладким мышцам, участвуя тем самым в регуляции моторики кишки, а также к нейронам симпатических превертебральных узлов [4].
Гистоархитектоника ганглиев МС и ПС животных различных видов в современной литературе изучена достаточно подробно [5-7]. Применение современных методов исследования, включая иммуногистохимические, позволило качественно и количественно охарактеризовать морфологию узлов различных отделов пищеварительной системы [8, 9].
В ходе постнатального развития происходит увеличение размеров нейронов узлов автономной нервной системы, изменение их нейрохимических характеристик [10-12]. Имеющиеся литературные данные свидетельствуют, что к моменту рождения ПС у грызунов отсутствует, и его формирование происходит после рождения [13, 14].
Тем не менее, имеющиеся количественные данные относительно формы и площади узлов, числа нейронов в узлах, размеров нейронов у животных различных возрастных групп от момента рождения до наступления старости являются неполными и отрывочными.
Цель
Целью исследования явилось исследование морфометрических особенностей интрамуральных узлов МС и ПС тонкой и толстой кишки крысы в постнатальном онтогенезе.
Материалы и Методы
Дизайн исследования
Проведено экспериментальное одноцентровое сплошное неконтролируемое неослеплённое исследование.
Работа выполнена на крысах различных возрастных групп: новорожденных, 10-, 20-, 30-, 60-суточных, 24-месячных крысах (по 5 в каждой возрастной группе). Эксперименты проводились в соответствии с отечественными и международными положениями о гуманном обращении с животными. Эвтаназию животных осуществляли летальной дозой уретана (3 г/кг, внутрибрюшинно).
Процедура иммуногистохимического анализа подробно описана в наших предыдущих работах [15]. Животных перфузировали вначале раствором стандартного фоcфатно-cолевого буфеpа (PBS), затем 4% pаcтвоpом паpафоpмальдегида на PBS. После перфузии участки двенадцатиперстной кишки и поперечной ободочной кишки длиной 0,5 см и извлекались и дофиксировались в той же смеси в течение 1-2 часов. Полученный материал разрезался вдоль оси кишки и расправлялся. На криостате изготавливались серийные продольные срезы толщиной 12 мкм.
Для выявления нервных структур использовался универсальный нейроиммуногистологический маркёр - протеиновый генный продукт 9,5 (PGP 9.5) [8, 9]. Использовались первичные антитела морской свинки к PGP9.5 (Abcam, США, разведение 1:200). Вторичные антитела были конъюгированы с флюорохромом - индокарбоцианином (Cy3, Jackson, США, разведение 1:100), дающим красную флюоресценцию.
Визуализацию препаратов на флуоресцентном микроскопе Olympus BX43 с соответствующим набором светофильтров (Япония). Фотографирование проводили с использованием цифровой CCD камерой Tucsen TCC 6.1ICE c программным обеспечением ISCapture 3.6 (Китай). Размеры отдельных нейронов и узлов определяли при помощи некоммерческой программы Fiji (Версия 2.11.0, США). Только нервные клетки, содержащие ядро, были включены в анализ. При отборе полей зрения для микрофотографирования использовался метод наименьших квадратов [16].
Этическая экспертиза
На проведение исследования получено разрешение Этического комитета Ярославского государственного медицинского университета (№ 29 от 21.02.2019 г.).
Статистический анализ
Размер выборки рассчитывался на основании ресурсного уравнения по Mead [17], где число животных для каждого возраста считали равным 5. Использовался метод многоэтапной гнездной выборки, при котором подсчет производился на 5 ганглиях в каждом из 5 срезов каждого из 5 животного для каждого сплетения, отдела кишечника и возраста [16].
Статистический анализ данных и построение графиков проводился с использованием программ Sigma Plot (Systat Software, США) и GraphPad Prism 8 (GraphPad Software, США). Проверка выборки на нормальность осуществлялась с использованием теста Шапиро-Уилка. Для нормального распределения величины представлены как средняя арифметическая ± стандартное отклонение, М±SD (n), где n - число значений, использовавшихся для подсчета среднего. Для оценки различий между разными группами использовали непарный параметрический one-way ANOVA тест. За уровень статистической значимости был взят p<0,05.
Результаты
Нейроны, содержащие универсальный нейроиммуногистологический маркёр PGP9.5, обнаруживались в тонкой и толстой кишке в МС и ПС с момента рождения и на протяжении всех исследованных периодов.
У всех животных ганглии МС в тонкой кишке были расположены параллельно, тогда как в толстой кишке предпочтительной ориентации ганглиев не отмечено. Ганглии МС были соединены между собой короткими пучками нервных волокон (рис. 1). Ганглии ПС были меньше по размерам, имели звездчатую неправильную форму и соединялись более тонкими пучками волокон (рис. 2).
У новорожденных крыс число ганглиев на 1 мм длины тонкой и толстой кишки было максимальным, а площадь ганглиев минимальной. В постнатальном онтогенезе происходило снижение числа ганглиев на 1 мм длины и увеличение площади ганглиев тонкой и толстой кишки в обоих сплетениях (рис. 3, 4).
Средняя площадь узлов МС возрастала с момента рождения до 60 суток жизни от 3865±335 до 8388±973 мкм2 (тонкая кишка) и от 3657±283 до 7758±871 мкм2 (толстая) и далее достоверно не изменялась (рис. 3). Не было выявлено достоверных различий между данным параметром в тонкой и толстой кишке (p>0,05).
В ПС тонкой и толстой кишки средняя площадь узлов также возрастала с момента рождения до 30 суток жизни от 520±137 до 1956±564 мкм2 (тонкая кишка) и от 240±33 до 871±67 мкм2 (толстая), после чего оставалась неизменной (рис. 3). Тем не менее, она была в несколько раз меньше по сравнению с МС в каждой возрастной группе. При этом средняя площадь узлов ПС в толстой кишке была достоверно меньше по сравнению с тонкой во всех возрастных группах (p<0,05).
В МС средняя плотность расположения узлов на 1 мм2 площади уменьшалась в тонкой и толстой кишке (рис. 4). При этом в тонкой кишке уменьшение плотности происходило с момента рождения (54±6,2) до 60 суток (13±2,3), а в толстой – от момента рождения (64±6,2) до 12 месяцев жизни (15±2,1). Не было отмечено достоверной разницы по этому показателю между различными возрастными группами за исключением 60 суток, где средняя плотность расположения узлов на 1 мм2 площади была достоверно выше в толстой кишке (p<0,05).
В ПС значение данного параметра также снижалось в первые 60 суток жизни от 348±45,1 до 61±6,4 (тонкая кишка) и от 276±38,3 до 81±9,1 (толстая). При этом в первые 10 суток жизни не наблюдалось достоверной разницы по этому показателю между тонкой и толстой кишкой. В то же время, начиная с 20 суток жизни и до старости плотность расположения узлов была выше в толстой кишке по сравнению с тонкой (p<0,05).
Среднее число нейронов в одном узле в МС было постоянным в постнатальном онтогенезе и не отличалось между различными возрастными группами, а также тонкой и толстой кишкой, при этом значение варьировали между 19±2,7 и 22±2,8 (рис. 5). Однако в ПС всех крыс в одном узле в среднем выявлялось меньшее число нейронов по сравнению с МС. При этом в ПС новорожденных крысят выявлялось меньше нервных клеток в одном узле (6±0,6 в тонкой и 7±0,5 в толстой кишке) по сравнению с 10-суточными крысятами (11±2,1 в тонкой и 12±2,8 в толстой кишке) (p<0,05). Далее количество нейронов в ПС между 10-суточными и более взрослыми животными в обоих отделах кишечника достоверно не отличалось (p>0,05).
Средняя площадь сечения нейронов возрастает с момента рождения до 60 суток жизни в МС и ПС тонкой и толстой кишки (рис. 6). Между данными показателями в тонкой и толстой кишке не было отмечено достоверных отличий. При этом начиная с 10-суточного возраста до 60 суток, средняя площадь сечения нейронов МС становится достоверно большей по сравнению с ПС (p<0,05). У старых крыс в ПС средняя площадь сечения нейронов опять возрастает по сравнению с предыдущими возрастными группами.
Обсуждение
Полученные результаты свидетельствуют, что у крысы МС и ПС тонкой и толстой кишки присутствуют к моменту рождения. В постнатальном онтогенезе происходит увеличение размеров нейронов, а также самих узлов МС и ПС. В МС число нейронов в узле не меняется после рождения животного, в то время как у крыс число нейронов ПС достоверно увеличивается в первые 10 суток жизни.
В отличие от прежних представлений [13, 14], нам удалось доказать наличие сформированного ПС уже у новорожденных крыс. Тем не менее, средняя площадь ганглиев и число нейронов в узле ПС меньше по сравнению с МС в каждой возрастной группе. При этом число нейронов в ПС возрастает в первые 10 суток жизни и далее достоверно не меняется.
Площадь узлов возрастает, а плотность нейронов и ганглиев на единице площади кишки снижается в раннем постнатальном онтогенезе, что соответствует литературным данным [18, 19]. Тем не менее, имеются противоречивые данные относительно изменения числа нейронов и плотности узлов на срезах у старых животных. Ряд авторов утверждает, что при старении происходит уменьшение числа нейронов, прежде всего в узлах МС [20, 21]. Результаты нашего исследования, а также данные других источников [7, 22] свидетельствуют, что значимого снижения числа нейронов в узлах при старении не происходит. Вероятно, различия между источниками можно объяснить видовыми различиями и особенностями примененных методик. Также есть данные, что при старении не происходит снижения общего числа нейронов, а происходит изменение нейрохимического состава. Например, уменьшается доля холинергических нейронов, но возрастает процент клеток, экспрессирующих нейрональную синтазу оксида азота [23, 24].
Размеры нейронов увеличиваются в раннем постнатальном онтогенезе в первые два месяца жизни в МС и ПС. Интересно, что у старых крыс размеры нейронов в МС остаются постоянными, но возрастают в ПС. Имеющиеся литературные данные на этот счет противоречивы [20, 21].
Заключение
В постнатальном онтогенезе в первые 30 суток жизни происходит увеличение размеров узлов МС и ПС и снижение плотности их расположения на единицу поверхности тонкой и толстой кишки. Форма узлов и число нейронов в узлах МС в постнатальном онтогенезе не меняется. Ганглии ПС, в отличие от МС тонкого и толстого кишечника крыс к моменту рождения являются незрелыми. Формирование гистотопографии сети узлов ПС происходит в первые 10 суток жизни. Таким образом, развитие МС и ПС кишечника происходит неравномерно по темпам и срокам, что нужно учитывать в экспериментальной практике, а также разработке новых лекарственных препаратов для гастроэнтерологии в педиатрии.
Дополнительная информация
Источник финансирования. Авторы заявляют об отсутствии внешнего финансирования при проведении исследования.
Конфликт интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.
Вклад авторов: П.М. Маслюков — разработка концепции и дизайна, обзор литературы, сбор и анализ литературных источников, написание текста и редактирование статьи; А.Ф. Будник — обзор литературы, сбор и анализ литературных источников, подготовка и написание текста статьи. Все авторы подтверждают соответствие своего авторства международным критериям ICMJE (все авторы внесли существенный вклад в разработку концепции, проведение исследования и подготовку статьи, прочли и одобрили финальную версию перед публикацией).
Об авторах
Петр Михайлович Маслюков
федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Ярославский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Email: mpm@ysmu.ru
ORCID iD: 0000-0002-6230-5024
доктор медицинских наук, профессор, заведующий кафедрой нормальной физиологии с биофизикой
Россия, 150000, Ярославская область, г. Ярославль, ул. Революционная, 5Антонина Францевна Будник
федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Кабардино-Балкарский государственный университет им. Х.М. Бербекова»
Автор, ответственный за переписку.
Email: budnik74@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-3333-5865
Кандидат медицинских наук, доцент. Медицинская академия, кафедра нормальной и патологической анатомии человека
Россия, Россия, г. Нальчик, ул. Чернышевского, 173Список литературы
- 1. Nozdrachev AD. A brief history of Russian research on the autonomic nervous system // Anat. Rec. (Hoboken). 2023. Vol. 306, N 9. P. 2230-2248. doi: 10.1002/ar.24944.
- 2. Furness J.B. Comparative and Evolutionary Aspects of the Digestive System and Its Enteric Nervous System Control // Adv. Exp. Med. Biol. 2022. Vol. 1383. P. 165-177. doi: 10.1007/978-3-031-05843-1_16.
- 3. Fung C., Vanden Berghe P. Functional circuits and signal processing in the enteric nervous system. Cell Mol. Life Sci. 2020. Vol. 77, N 22. P. 4505-4522. doi: 10.1007/s00018-020-03543-6.
- 4. Furness J.B., Stebbing M.J. The first brain: Species comparisons and evolutionary implications for the enteric and central nervous systems // Neurogastroenterol. Motil. 2018. Vol. 30, N 2. e13234. doi: 10.1111/nmo.13234.
- 5. Eisenberg J.D., Bradley R.P., Graham K.D., Ceron R.H., Lemke A.M., Wilkins B..J, Naji A., Heuckeroth R.O. Three-Dimensional Imaging of the Enteric Nervous System in Human Pediatric Colon Reveals New Features of Hirschsprung's Disease // Gastroenterology. 2024. Vol. 167, N 3. P. 547-559. doi: 10.1053/j.gastro.2024.02.045.
- 6. Fujiwara N., Miyahara K., Lee D., Nakazawa-Tanaka N., Akazawa C., Hatano M., Pierro A., Yamataka A. A novel mouse model of intestinal neuronal dysplasia: visualization of the enteric nervous system // Pediatr. Surg Int. 2023. Vol. 39, N 1. P. 298. doi: 10.1007/s00383-023-05585-w.
- 7. Тихонов Е.А., Макарова О.В., Голиченков В.А. Возрастные изменения гистоархитектоники миентерального нервного сплетения в разных отделах ободочной кишки у крыс вистар //Журнал анатомии и гистопатологии. 2017. Т. 6, №. 3. С. 75-81. doi: 10.18499/2225-7357-2017-6-3-75-81
- 8. Чумасов Е.И., Майстренко Н.А., Ромащенко П.Н., Самедов В.Б., Петрова Е.С., Коржевский Д.Э. Иммуногистохимическое исследование симпатической иннервации толстой кишки при хроническом медленно-транзитном запоре // Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2022. Т. 207, № 11. С. 191-197. doi: 10.31146/1682-8658-ecg-207-11-191-197.
- 9. Чумасов Е.И., Петрова Е.С., Коржевский Д.Э. Исследование иннервации двенадцатиперстной кишки крысы с использованием нейральных иммуногистохимических маркеров // Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. 2020. Т. 106, № 7. С. 853-865. doi: 10.31857/S086981392007002X.
- 10. Masliukov P.M. Sympathetic neurons of the cat stellate ganglion in postnatal ontogenesis: morphometric analysis // Auton. Neurosci. 2001. Vol. 89, N 1-2. P. 48-53. doi: 10.1016/S1566-0702(01)00246-6.
- 11. Nagy N., Goldstein A.M. Enteric nervous system development: A crest cell's journey from neural tube to colon // Semin. Cell Dev. Biol. 2017. Vol. 66, P. 94-106. doi: 10.1016/j.semcdb.2017.01.006.
- 12. Маслюков П.М., Будник А.Ф., Ноздрачев А.Д. Нейрохимические особенности узлов метасимпатической системы в онтогенезе // Успехи геронтологии. 2017. Т. 30, № 3. С. 347-355.
- 13. Rao M., Gershon M.D. Enteric nervous system development: what could possibly go wrong? // Nat. Rev. Neurosci. 2018. Vol. 19, N 9. P. 552-565. doi: 10.1038/s41583-018-0041-0.
- 14. Wallace A.S., Burns A.J. Development of the enteric nervous system, smooth muscle and interstitial cells of Cajal in the human gastrointestinal tract // Cell Tissue Res. 2005. Vol. 319, N 3. P. 367-82. doi: 10.1007/s00441-004-1023-2.
- 15. Budnik A.F., Aryaeva D., Vyshnyakova P., Masliukov P.M. Age related changes of neuropeptide Y-ergic system in the rat duodenum // Neuropeptides. 2020. Vol. 80. P. 101982. doi: 10.1016/j.npep.2019.101982.
- 16. Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия. М.: Медицина, 1990.
- 17. Festing M.F., Overend P., Gaines Das R., Cortina-Borja M., Berdoy M. The design of animal experiments: reducing the use of animals in research through better experimental design. London (United Kingdom): The Royal Society of Medicine Press Limited, 2002.
- 18. Schäfer K.H., Hänsgen A., Mestres P. Morphological changes of the myenteric plexus during early postnatal development of the rat // Anat. Rec. 1999. Vol. 256, N 1. P. 20-28. doi: 10.1002/(SICI)1097-0185(19990901)256:1<20::AID-AR4>3.0.CO;2-8.
- 19. Eisenberg J.D., Bradley R.P., Graham K.D., Ceron R.H., Lemke A.M., Wilkins B.J., Naji A., Heuckeroth R.O. Three-Dimensional Imaging of the Enteric Nervous System in Human Pediatric Colon Reveals New Features of Hirschsprung's Disease // Gastroenterology. 2024. Vol. 167, N 3. P. 547-559. doi: 10.1053/j.gastro.2024.02.045.
- 20. Nguyen T.T., Baumann P., Tüscher O., Schick S., Endres K. The Aging Enteric Nervous System // Int. J. Mol. Sci. 2023. Vol. 24, N 11. P. 9471. doi: 10.3390/ijms24119471.
- 21. Saffrey M.J. Cellular changes in the enteric nervous system during ageing // Dev. Biol. 2013. Vol. 382, N1. P. 344-55. doi: 10.1016/j.ydbio.2013.03.015.
- 22. Peck C.J., Samsuria S.D., Harrington A.M., King S.K., Hutson J.M., Southwell B.R. Fall in density, but not number of myenteric neurons and circular muscle nerve fibres in guinea-pig colon with ageing // Neurogastroenterol. Motil. 2009. Vol. 21, N 10. P. 1075-e90. doi: 10.1111/j.1365-2982.2009.01349.x.
- 23. Phillips R.J., Kieffer E.J., Powley T.L. Aging of the myenteric plexus: neuronal loss is specific to cholinergic neurons // Auton. Neurosci. 2003. Vol. 106, N 2. P. 69-83. doi: 10.1016/S1566-0702(03)00072-9.
- 24. Budnik A.F., Masliukov P.M. Postnatal development of the enteric neurons expressing neuronal nitric oxide synthase // Anat. Rec (Hoboken). 2023. Vol. 306, N 9. P. 2276-2291. doi: 10.1002/ar.24947.
Дополнительные файлы
