Morphometric features of intramural autonomic nerve ganglia of the intermuscular and submucous plexuses of the small and large intestine of rats in postnatal ontogenesis



如何引用文章

全文:

开放存取 开放存取
受限制的访问 ##reader.subscriptionAccessGranted##
受限制的访问 订阅或者付费存取

详细

BACKGROUND: The morphology of the ganglia of the myenteric (MP) and submucous (SP) plexuses of the gut of adult animals is sufficiently studied, whereas the data on age-related changes in the current literature are incomplete.

AIM: To investigate the morphometrical properties of the intramural ganglia of the MP and SP of the rat small and large intestine in postnatal ontogenesis.

METHODS: The work was performed on rats of different age groups: newborn, 10-, 20-, 30-, 60-day-old, 24-month-old rats using immunohistochemical method and fluorescent labelled antibodies to protein gene product 9.5 (PGP9.5).

RESULTS: During postnatal ontogeny, there was a decrease in the number of ganglia per per 1 mm2 area and an increase in the area of ganglia in the small and large intestine. The mean area of MP ganlia in the small and large intestine increased from birth to 60 days of age, and in the SP - during the first 30 days of life. Mean of the ganglionic density decreased in the MP in the small intestine in the first 60 days, and in the colon at 12 months; this index decreased in the SP in the small and large intestine in the first 60 days of life. The mean number of PGP9.5-immunoreactive (IR) neurons per ganglion in MP did not change in postnatal ontogeny, while in PS it increased in the first 10 days of life.

CONCLUSION: In postnatal ontogenesis, the size of the MP and SP ganglia increases and the density of their location per unit of surface of the small and large intestine decreases in the first 30 days of life. The shape of the ganglia and the number of neurons in the MP ganglia do not change in postnatal ontogenesis. The SP ganglia, in contrast to the MP of the small and large intestine of rats, are immature at the time of birth. The formation of the network of the SP ganglia occurs in the first 10 days of life.

全文:

Обоснование

Регуляция функции желудочно-кишечного тракта осуществляется сложной сетью интрамуральных узлов, которые относят к особому отделу автономной (вегетативной) нервной системы – метасимпатическому [1]. Интрамуральные узлы кишки млекопитающих и человека организованы в два основных нервных сплетения: межмышечное (МС) и подслизистое (ПС). МС и ПС сплетения состоят из скоплений нейронов и глиальных клеток в виде сети узлов, а также нервных волокон, связывающих эти ганглии между собой и эффекторными тканями. МС лежит между продольными и кольцевыми мышечными слоями, тогда как ПС находится внутри соединительной ткани подслизистой оболочки. ПС состоит из одного слоя довольно небольших ганглиев у грызунов, но у более крупных млекопитающих и человека представлено двумя слоями [2, 3].

Ранее считалось, что нейроны МС регулируют моторику желудка и кишечника, а нейроны ПС - транспорт ионов и воды через эпителий кишечника, а также секреторную функцию желез. Однако в последние годы было установлено, что связи сплетений являются более сложными. Доказано, что нейроны внешнего слоя ПС могут посылать волокна к циркулярным гладким мышцам, участвуя тем самым в регуляции моторики кишки, а также к нейронам симпатических превертебральных узлов [4].

Гистоархитектоника ганглиев МС и ПС животных различных видов в современной литературе изучена достаточно подробно [5-7]. Применение современных методов исследования, включая иммуногистохимические, позволило качественно и количественно охарактеризовать морфологию узлов различных отделов пищеварительной системы [8, 9].

В ходе постнатального развития происходит увеличение размеров нейронов узлов автономной нервной системы, изменение их нейрохимических характеристик [10-12]. Имеющиеся литературные данные свидетельствуют, что к моменту рождения ПС у грызунов отсутствует, и его формирование происходит после рождения [13, 14].

Тем не менее, имеющиеся количественные данные относительно формы и площади узлов, числа нейронов в узлах, размеров нейронов у животных различных возрастных групп от момента рождения до наступления старости являются неполными и отрывочными.

Цель

Целью исследования явилось исследование морфометрических особенностей интрамуральных узлов МС и ПС тонкой и толстой кишки крысы в постнатальном онтогенезе.

Материалы и Методы

Дизайн исследования

Проведено экспериментальное одноцентровое сплошное неконтролируемое неослеплённое исследование.

Работа выполнена на крысах различных возрастных групп: новорожденных, 10-, 20-, 30-, 60-суточных, 24-месячных крысах (по 5 в каждой возрастной группе). Эксперименты проводились в соответствии с отечественными и международными положениями о гуманном обращении с животными. Эвтаназию животных осуществляли летальной дозой уретана (3 г/кг, внутрибрюшинно).

Процедура иммуногистохимического анализа подробно описана в наших предыдущих работах [15]. Животных перфузировали вначале раствором стандартного фоcфатно-cолевого буфеpа (PBS), затем 4% pаcтвоpом паpафоpмальдегида на PBS. После перфузии участки двенадцатиперстной кишки и поперечной ободочной кишки длиной 0,5 см и извлекались и дофиксировались в той же смеси в течение 1-2 часов. Полученный материал разрезался вдоль оси кишки и расправлялся. На криостате изготавливались серийные продольные срезы толщиной 12 мкм.

Для выявления нервных структур использовался универсальный нейроиммуногистологический маркёр - протеиновый генный продукт 9,5 (PGP 9.5) [8, 9]. Использовались первичные антитела морской свинки к PGP9.5 (Abcam, США, разведение 1:200). Вторичные  антитела были конъюгированы с флюорохромом - индокарбоцианином (Cy3, Jackson, США, разведение 1:100), дающим красную флюоресценцию.

Визуализацию препаратов на флуоресцентном микроскопе Olympus BX43 с соответствующим набором светофильтров (Япония). Фотографирование проводили с использованием цифровой CCD камерой Tucsen TCC 6.1ICE c программным обеспечением ISCapture 3.6 (Китай). Размеры отдельных нейронов и узлов определяли при помощи некоммерческой программы Fiji (Версия 2.11.0, США). Только нервные клетки, содержащие ядро, были включены в анализ. При отборе полей зрения для микрофотографирования использовался метод наименьших квадратов [16].

 

Этическая экспертиза

На проведение исследования получено разрешение Этического комитета Ярославского государственного медицинского университета (№ 29 от 21.02.2019 г.).

Статистический анализ

Размер выборки рассчитывался на основании ресурсного уравнения по Mead [17], где число животных для каждого возраста считали равным 5. Использовался метод многоэтапной гнездной выборки, при котором подсчет производился на 5 ганглиях в каждом из 5 срезов каждого из 5 животного для каждого сплетения, отдела кишечника и возраста [16].

Статистический анализ данных и построение графиков проводился с использованием программ Sigma Plot (Systat Software, США) и GraphPad Prism 8 (GraphPad Software, США). Проверка выборки на нормальность осуществлялась с использованием теста Шапиро-Уилка. Для нормального распределения величины представлены как средняя арифметическая ± стандартное отклонение, М±SD (n), где n - число значений, использовавшихся для подсчета среднего. Для оценки различий между разными группами использовали непарный параметрический one-way ANOVA тест. За уровень статистической значимости был взят p<0,05.

Результаты

Нейроны, содержащие универсальный нейроиммуногистологический маркёр PGP9.5, обнаруживались в тонкой и толстой кишке в МС и ПС с момента рождения и на протяжении всех исследованных периодов.

У всех животных ганглии МС в тонкой кишке были расположены параллельно, тогда как в толстой кишке предпочтительной ориентации ганглиев не отмечено. Ганглии МС были соединены между собой короткими пучками нервных волокон (рис. 1). Ганглии ПС были меньше по размерам, имели звездчатую неправильную форму и соединялись более тонкими пучками волокон (рис. 2).

У новорожденных крыс число ганглиев на 1 мм длины тонкой и толстой кишки было максимальным, а площадь ганглиев минимальной. В постнатальном онтогенезе происходило снижение числа ганглиев на 1 мм длины и увеличение площади ганглиев тонкой и толстой кишки в обоих сплетениях (рис. 3, 4).

Средняя площадь узлов МС возрастала с момента рождения до 60 суток жизни от 3865±335 до 8388±973 мкм2 (тонкая кишка) и от 3657±283 до 7758±871 мкм2 (толстая) и далее достоверно не изменялась (рис. 3). Не было выявлено достоверных различий между данным параметром в тонкой и толстой кишке (p>0,05).

В ПС тонкой и толстой кишки средняя площадь узлов также возрастала с момента рождения до 30 суток жизни от 520±137 до 1956±564 мкм2 (тонкая кишка) и от 240±33 до 871±67 мкм2 (толстая), после чего оставалась неизменной (рис. 3). Тем не менее, она была в несколько раз меньше по сравнению с МС в каждой возрастной группе. При этом средняя площадь узлов ПС в толстой кишке была достоверно меньше по сравнению с тонкой во всех возрастных группах (p<0,05).

В МС средняя плотность расположения узлов на 1 мм2 площади уменьшалась в тонкой и толстой кишке (рис. 4). При этом в тонкой кишке уменьшение плотности происходило с момента рождения (54±6,2) до 60 суток (13±2,3), а в толстой – от момента рождения (64±6,2) до 12 месяцев жизни (15±2,1). Не было отмечено достоверной разницы по этому показателю между различными возрастными группами за исключением 60 суток, где средняя плотность расположения узлов на 1 мм2 площади была достоверно выше в толстой кишке (p<0,05).

В ПС значение данного параметра также снижалось в первые 60 суток жизни от 348±45,1 до 61±6,4 (тонкая кишка) и от 276±38,3 до 81±9,1 (толстая). При этом в первые 10 суток жизни не наблюдалось достоверной разницы по этому показателю между тонкой и толстой кишкой. В то же время, начиная с 20 суток жизни и до старости плотность расположения узлов была выше в толстой кишке по сравнению с тонкой (p<0,05).

Среднее число нейронов в одном узле в МС было постоянным в постнатальном онтогенезе и не отличалось между различными возрастными группами, а также тонкой и толстой кишкой, при этом значение варьировали между 19±2,7 и 22±2,8 (рис. 5). Однако в ПС всех крыс в одном узле в среднем выявлялось меньшее число нейронов по сравнению с МС. При этом в ПС новорожденных крысят выявлялось меньше нервных клеток в одном узле (6±0,6 в тонкой и 7±0,5 в толстой кишке) по сравнению с 10-суточными крысятами (11±2,1 в тонкой и 12±2,8 в толстой кишке) (p<0,05). Далее количество нейронов в ПС между 10-суточными и более взрослыми животными в обоих отделах кишечника достоверно не отличалось (p>0,05).

Средняя площадь сечения нейронов возрастает с момента рождения до 60 суток жизни в МС и ПС тонкой и толстой кишки (рис. 6). Между данными показателями в тонкой и толстой кишке не было отмечено достоверных отличий. При этом начиная с 10-суточного возраста до 60 суток, средняя площадь сечения нейронов МС становится достоверно большей по сравнению с ПС (p<0,05). У старых крыс в ПС средняя площадь сечения нейронов опять возрастает по сравнению с предыдущими возрастными группами.

 

Обсуждение

Полученные результаты свидетельствуют, что у крысы МС и ПС тонкой и толстой кишки присутствуют к моменту рождения. В постнатальном онтогенезе происходит увеличение размеров нейронов, а также самих узлов МС и ПС. В МС число нейронов в узле не меняется после рождения животного, в то время как у крыс число нейронов ПС достоверно увеличивается в первые 10 суток жизни.

В отличие от прежних представлений [13, 14], нам удалось доказать наличие сформированного ПС уже у новорожденных крыс. Тем не менее, средняя площадь ганглиев и число нейронов в узле ПС меньше по сравнению с МС в каждой возрастной группе. При этом число нейронов в ПС возрастает в первые 10 суток жизни и далее достоверно не меняется.

Площадь узлов возрастает, а плотность нейронов и ганглиев на единице площади кишки снижается в раннем постнатальном онтогенезе, что соответствует литературным данным [18, 19]. Тем не менее, имеются противоречивые данные относительно изменения числа нейронов и плотности узлов на срезах у старых животных. Ряд авторов утверждает, что при старении происходит уменьшение числа нейронов, прежде всего в узлах МС [20, 21]. Результаты нашего исследования, а также данные других источников [7, 22] свидетельствуют, что значимого снижения числа нейронов в узлах при старении не происходит. Вероятно, различия между источниками можно объяснить видовыми различиями и особенностями примененных методик. Также есть данные, что при старении не происходит снижения общего числа нейронов, а происходит изменение нейрохимического состава. Например, уменьшается доля холинергических нейронов, но возрастает процент клеток, экспрессирующих нейрональную синтазу оксида азота [23, 24].

Размеры нейронов увеличиваются в раннем постнатальном онтогенезе в первые два месяца жизни в МС и ПС. Интересно, что у старых крыс размеры нейронов в МС остаются постоянными, но возрастают в ПС. Имеющиеся литературные данные на этот счет противоречивы [20, 21].

Заключение

В постнатальном онтогенезе в первые 30 суток жизни происходит увеличение размеров узлов МС и ПС и снижение плотности их расположения на единицу поверхности тонкой и толстой кишки. Форма узлов и число нейронов в узлах МС в постнатальном онтогенезе не меняется. Ганглии ПС, в отличие от МС тонкого и толстого кишечника крыс к моменту рождения являются незрелыми. Формирование гистотопографии сети узлов ПС происходит в первые 10 суток жизни. Таким образом, развитие МС и ПС кишечника происходит неравномерно по темпам и срокам, что нужно учитывать в экспериментальной практике, а также разработке новых лекарственных препаратов для гастроэнтерологии в педиатрии.

Обоснование

Регуляция функции желудочно-кишечного тракта осуществляется сложной сетью интрамуральных узлов, которые относят к особому отделу автономной (вегетативной) нервной системы – метасимпатическому [1]. Интрамуральные узлы кишки млекопитающих и человека организованы в два основных нервных сплетения: межмышечное (МС) и подслизистое (ПС). МС и ПС сплетения состоят из скоплений нейронов и глиальных клеток в виде сети узлов, а также нервных волокон, связывающих эти ганглии между собой и эффекторными тканями. МС лежит между продольными и кольцевыми мышечными слоями, тогда как ПС находится внутри соединительной ткани подслизистой оболочки. ПС состоит из одного слоя довольно небольших ганглиев у грызунов, но у более крупных млекопитающих и человека представлено двумя слоями [2, 3].

Ранее считалось, что нейроны МС регулируют моторику желудка и кишечника, а нейроны ПС - транспорт ионов и воды через эпителий кишечника, а также секреторную функцию желез. Однако в последние годы было установлено, что связи сплетений являются более сложными. Доказано, что нейроны внешнего слоя ПС могут посылать волокна к циркулярным гладким мышцам, участвуя тем самым в регуляции моторики кишки, а также к нейронам симпатических превертебральных узлов [4].

Гистоархитектоника ганглиев МС и ПС животных различных видов в современной литературе изучена достаточно подробно [5-7]. Применение современных методов исследования, включая иммуногистохимические, позволило качественно и количественно охарактеризовать морфологию узлов различных отделов пищеварительной системы [8, 9].

В ходе постнатального развития происходит увеличение размеров нейронов узлов автономной нервной системы, изменение их нейрохимических характеристик [10-12]. Имеющиеся литературные данные свидетельствуют, что к моменту рождения ПС у грызунов отсутствует, и его формирование происходит после рождения [13, 14].

Тем не менее, имеющиеся количественные данные относительно формы и площади узлов, числа нейронов в узлах, размеров нейронов у животных различных возрастных групп от момента рождения до наступления старости являются неполными и отрывочными.

Цель

Целью исследования явилось исследование морфометрических особенностей интрамуральных узлов МС и ПС тонкой и толстой кишки крысы в постнатальном онтогенезе.

Материалы и Методы

Дизайн исследования

Проведено экспериментальное одноцентровое сплошное неконтролируемое неослеплённое исследование.

Работа выполнена на крысах различных возрастных групп: новорожденных, 10-, 20-, 30-, 60-суточных, 24-месячных крысах (по 5 в каждой возрастной группе). Эксперименты проводились в соответствии с отечественными и международными положениями о гуманном обращении с животными. Эвтаназию животных осуществляли летальной дозой уретана (3 г/кг, внутрибрюшинно).

Процедура иммуногистохимического анализа подробно описана в наших предыдущих работах [15]. Животных перфузировали вначале раствором стандартного фоcфатно-cолевого буфеpа (PBS), затем 4% pаcтвоpом паpафоpмальдегида на PBS. После перфузии участки двенадцатиперстной кишки и поперечной ободочной кишки длиной 0,5 см и извлекались и дофиксировались в той же смеси в течение 1-2 часов. Полученный материал разрезался вдоль оси кишки и расправлялся. На криостате изготавливались серийные продольные срезы толщиной 12 мкм.

Для выявления нервных структур использовался универсальный нейроиммуногистологический маркёр - протеиновый генный продукт 9,5 (PGP 9.5) [8, 9]. Использовались первичные антитела морской свинки к PGP9.5 (Abcam, США, разведение 1:200). Вторичные  антитела были конъюгированы с флюорохромом - индокарбоцианином (Cy3, Jackson, США, разведение 1:100), дающим красную флюоресценцию.

Визуализацию препаратов на флуоресцентном микроскопе Olympus BX43 с соответствующим набором светофильтров (Япония). Фотографирование проводили с использованием цифровой CCD камерой Tucsen TCC 6.1ICE c программным обеспечением ISCapture 3.6 (Китай). Размеры отдельных нейронов и узлов определяли при помощи некоммерческой программы Fiji (Версия 2.11.0, США). Только нервные клетки, содержащие ядро, были включены в анализ. При отборе полей зрения для микрофотографирования использовался метод наименьших квадратов [16].

 

Этическая экспертиза

На проведение исследования получено разрешение Этического комитета Ярославского государственного медицинского университета (№ 29 от 21.02.2019 г.).

Статистический анализ

Размер выборки рассчитывался на основании ресурсного уравнения по Mead [17], где число животных для каждого возраста считали равным 5. Использовался метод многоэтапной гнездной выборки, при котором подсчет производился на 5 ганглиях в каждом из 5 срезов каждого из 5 животного для каждого сплетения, отдела кишечника и возраста [16].

Статистический анализ данных и построение графиков проводился с использованием программ Sigma Plot (Systat Software, США) и GraphPad Prism 8 (GraphPad Software, США). Проверка выборки на нормальность осуществлялась с использованием теста Шапиро-Уилка. Для нормального распределения величины представлены как средняя арифметическая ± стандартное отклонение, М±SD (n), где n - число значений, использовавшихся для подсчета среднего. Для оценки различий между разными группами использовали непарный параметрический one-way ANOVA тест. За уровень статистической значимости был взят p<0,05.

Результаты

Нейроны, содержащие универсальный нейроиммуногистологический маркёр PGP9.5, обнаруживались в тонкой и толстой кишке в МС и ПС с момента рождения и на протяжении всех исследованных периодов.

У всех животных ганглии МС в тонкой кишке были расположены параллельно, тогда как в толстой кишке предпочтительной ориентации ганглиев не отмечено. Ганглии МС были соединены между собой короткими пучками нервных волокон (рис. 1). Ганглии ПС были меньше по размерам, имели звездчатую неправильную форму и соединялись более тонкими пучками волокон (рис. 2).

У новорожденных крыс число ганглиев на 1 мм длины тонкой и толстой кишки было максимальным, а площадь ганглиев минимальной. В постнатальном онтогенезе происходило снижение числа ганглиев на 1 мм длины и увеличение площади ганглиев тонкой и толстой кишки в обоих сплетениях (рис. 3, 4).

Средняя площадь узлов МС возрастала с момента рождения до 60 суток жизни от 3865±335 до 8388±973 мкм2 (тонкая кишка) и от 3657±283 до 7758±871 мкм2 (толстая) и далее достоверно не изменялась (рис. 3). Не было выявлено достоверных различий между данным параметром в тонкой и толстой кишке (p>0,05).

В ПС тонкой и толстой кишки средняя площадь узлов также возрастала с момента рождения до 30 суток жизни от 520±137 до 1956±564 мкм2 (тонкая кишка) и от 240±33 до 871±67 мкм2 (толстая), после чего оставалась неизменной (рис. 3). Тем не менее, она была в несколько раз меньше по сравнению с МС в каждой возрастной группе. При этом средняя площадь узлов ПС в толстой кишке была достоверно меньше по сравнению с тонкой во всех возрастных группах (p<0,05).

В МС средняя плотность расположения узлов на 1 мм2 площади уменьшалась в тонкой и толстой кишке (рис. 4). При этом в тонкой кишке уменьшение плотности происходило с момента рождения (54±6,2) до 60 суток (13±2,3), а в толстой – от момента рождения (64±6,2) до 12 месяцев жизни (15±2,1). Не было отмечено достоверной разницы по этому показателю между различными возрастными группами за исключением 60 суток, где средняя плотность расположения узлов на 1 мм2 площади была достоверно выше в толстой кишке (p<0,05).

В ПС значение данного параметра также снижалось в первые 60 суток жизни от 348±45,1 до 61±6,4 (тонкая кишка) и от 276±38,3 до 81±9,1 (толстая). При этом в первые 10 суток жизни не наблюдалось достоверной разницы по этому показателю между тонкой и толстой кишкой. В то же время, начиная с 20 суток жизни и до старости плотность расположения узлов была выше в толстой кишке по сравнению с тонкой (p<0,05).

Среднее число нейронов в одном узле в МС было постоянным в постнатальном онтогенезе и не отличалось между различными возрастными группами, а также тонкой и толстой кишкой, при этом значение варьировали между 19±2,7 и 22±2,8 (рис. 5). Однако в ПС всех крыс в одном узле в среднем выявлялось меньшее число нейронов по сравнению с МС. При этом в ПС новорожденных крысят выявлялось меньше нервных клеток в одном узле (6±0,6 в тонкой и 7±0,5 в толстой кишке) по сравнению с 10-суточными крысятами (11±2,1 в тонкой и 12±2,8 в толстой кишке) (p<0,05). Далее количество нейронов в ПС между 10-суточными и более взрослыми животными в обоих отделах кишечника достоверно не отличалось (p>0,05).

Средняя площадь сечения нейронов возрастает с момента рождения до 60 суток жизни в МС и ПС тонкой и толстой кишки (рис. 6). Между данными показателями в тонкой и толстой кишке не было отмечено достоверных отличий. При этом начиная с 10-суточного возраста до 60 суток, средняя площадь сечения нейронов МС становится достоверно большей по сравнению с ПС (p<0,05). У старых крыс в ПС средняя площадь сечения нейронов опять возрастает по сравнению с предыдущими возрастными группами.

 

Обсуждение

Полученные результаты свидетельствуют, что у крысы МС и ПС тонкой и толстой кишки присутствуют к моменту рождения. В постнатальном онтогенезе происходит увеличение размеров нейронов, а также самих узлов МС и ПС. В МС число нейронов в узле не меняется после рождения животного, в то время как у крыс число нейронов ПС достоверно увеличивается в первые 10 суток жизни.

В отличие от прежних представлений [13, 14], нам удалось доказать наличие сформированного ПС уже у новорожденных крыс. Тем не менее, средняя площадь ганглиев и число нейронов в узле ПС меньше по сравнению с МС в каждой возрастной группе. При этом число нейронов в ПС возрастает в первые 10 суток жизни и далее достоверно не меняется.

Площадь узлов возрастает, а плотность нейронов и ганглиев на единице площади кишки снижается в раннем постнатальном онтогенезе, что соответствует литературным данным [18, 19]. Тем не менее, имеются противоречивые данные относительно изменения числа нейронов и плотности узлов на срезах у старых животных. Ряд авторов утверждает, что при старении происходит уменьшение числа нейронов, прежде всего в узлах МС [20, 21]. Результаты нашего исследования, а также данные других источников [7, 22] свидетельствуют, что значимого снижения числа нейронов в узлах при старении не происходит. Вероятно, различия между источниками можно объяснить видовыми различиями и особенностями примененных методик. Также есть данные, что при старении не происходит снижения общего числа нейронов, а происходит изменение нейрохимического состава. Например, уменьшается доля холинергических нейронов, но возрастает процент клеток, экспрессирующих нейрональную синтазу оксида азота [23, 24].

Размеры нейронов увеличиваются в раннем постнатальном онтогенезе в первые два месяца жизни в МС и ПС. Интересно, что у старых крыс размеры нейронов в МС остаются постоянными, но возрастают в ПС. Имеющиеся литературные данные на этот счет противоречивы [20, 21].

Заключение

В постнатальном онтогенезе в первые 30 суток жизни происходит увеличение размеров узлов МС и ПС и снижение плотности их расположения на единицу поверхности тонкой и толстой кишки. Форма узлов и число нейронов в узлах МС в постнатальном онтогенезе не меняется. Ганглии ПС, в отличие от МС тонкого и толстого кишечника крыс к моменту рождения являются незрелыми. Формирование гистотопографии сети узлов ПС происходит в первые 10 суток жизни. Таким образом, развитие МС и ПС кишечника происходит неравномерно по темпам и срокам, что нужно учитывать в экспериментальной практике, а также разработке новых лекарственных препаратов для гастроэнтерологии в педиатрии.

 

 

Дополнительная информация

Источник финансирования. Авторы заявляют об отсутствии внешнего финансирования при проведении исследования.

Конфликт интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.

Вклад авторов: П.М. Маслюков — разработка концепции и дизайна, обзор литературы, сбор и анализ литературных источников, написание текста и редактирование статьи; А.Ф. Будник — обзор литературы, сбор и анализ литературных источников, подготовка и  написание текста статьи. Все авторы подтверждают соответствие своего авторства международным критериям ICMJE (все авторы внесли существенный вклад в разработку концепции, проведение исследования и подготовку статьи, прочли и одобрили финальную версию перед публикацией).

×

作者简介

Petr Masliukov

Yaroslavl State Medical University

Email: mpm@ysmu.ru
ORCID iD: 0000-0002-6230-5024

доктор медицинских наук, профессор, заведующий кафедрой нормальной физиологии с биофизикой

俄罗斯联邦, 150000, Ярославская область, г. Ярославль, ул. Революционная, 5

Antonina Budnik

Kabardino-Balkarian State University named after H.M. Berbekov

编辑信件的主要联系方式.
Email: budnik74@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-3333-5865

Кандидат медицинских наук, доцент. Медицинская академия, кафедра нормальной и патологической анатомии человека

俄罗斯联邦, Россия, г. Нальчик, ул. Чернышевского, 173

参考

  1. Nozdrachev AD. A brief history of Russian research on the autonomic nervous system. Anat Rec (Hoboken). 2023;306(9):2230-2248. doi: 10.1002/ar.24944.
  2. Furness JB. Comparative and Evolutionary Aspects of the Digestive System and Its Enteric Nervous System Control. Adv Exp Med Biol. 2022;1383:165-177. doi: 10.1007/978-3-031-05843-1_16.
  3. Fung C, Vanden Berghe P. Functional circuits and signal processing in the enteric nervous system. Cell Mol Life Sci. 2020;77(22):4505-4522. doi: 10.1007/s00018-020-03543-6.
  4. Furness JB, Stebbing MJ. The first brain: Species comparisons and evolutionary implications for the enteric and central nervous systems. Neurogastroenterol Motil. 2018;30(2). doi: 10.1111/nmo.13234.
  5. Eisenberg JD, Bradley RP, Graham KD, Ceron RH, Lemke AM, Wilkins BJ, Naji A, Heuckeroth RO. Three-Dimensional Imaging of the Enteric Nervous System in Human Pediatric Colon Reveals New Features of Hirschsprung's Disease. Gastroenterology. 2024 Aug;167(3):547-559. doi: 10.1053/j.gastro.2024.02.045.
  6. Fujiwara N, Miyahara K, Lee D, Nakazawa-Tanaka N, Akazawa C, Hatano M, Pierro A, Yamataka A. A novel mouse model of intestinal neuronal dysplasia: visualization of the enteric nervous system. Pediatr Surg Int. 2023;39(1):298. doi: 10.1007/s00383-023-05585-w.
  7. Tikhonov EA, Makarova OV, Golichenkov VA. Age-related changes in the histoarchitecture of the myenteric nerve plexus in different parts of the colon in Wistar rats. Journal of Anatomy and Histopathology. 2017;6(3):75-81. (In Russ). doi: 10.18499/2225-7357-2017-6-3-75-81
  8. Chumasov EI, Maistrenko NA, Romashchenko PN, Samedov VB, Petrova ES, Korzhevsky DE. Immunohistochemical study of sympathetic innervation of the colon in chronic slow-transit constipation. Experimental and Clinical Gastroenterology. 2022;207(11):191-197. (In Russ). doi: 10.31146/1682-8658-ecg-207-11-191-197.
  9. Chumasov EI, Petrova ES, Korzhevsky DE. Study of the innervation of the rat duodenum using neural immunohistochemical markers. I.M. Sechenov Russian Physiological Journal. 2020. 106(7):853-865. (In Russ). doi: 10.31857/S086981392007002X.
  10. Masliukov PM. Sympathetic neurons of the cat stellate ganglion in postnatal ontogenesis: morphometric analysis. Auton Neurosci. 2001;89(1-2):48-53. doi: 10.1016/S1566-0702(01)00246-6.
  11. Nagy N, Goldstein AM. Enteric nervous system development: A crest cell's journey from neural tube to colon. Semin Cell Dev Biol. 2017;66:94-106. doi: 10.1016/j.semcdb.2017.01.006.
  12. Masliukov PM, Budnik AF, Nozdrachev AD. Neurochemical features of metasympathetic system ganglia in the course of ontogenesis. Advances in Gerontology. 2017;7(3): 347-355. (In Russ).
  13. Rao M, Gershon MD. Enteric nervous system development: what could possibly go wrong? Nat Rev Neurosci. 2018;19(9):552-565. doi: 10.1038/s41583-018-0041-0.
  14. Wallace AS, Burns AJ. Development of the enteric nervous system, smooth muscle and interstitial cells of Cajal in the human gastrointestinal tract. Cell Tissue Res. 2005;319(3):367-82. doi: 10.1007/s00441-004-1023-2.
  15. Budnik AF, Aryaeva D, Vyshnyakova P, Masliukov PM. Age related changes of neuropeptide Y-ergic system in the rat duodenum. Neuropeptides. 2020;80:101982. doi: 10.1016/j.npep.2019.101982.
  16. Festing MF, Overend P, Gaines Das R, Cortina-Borja M, Berdoy M. The design of animal experiments: reducing the use of animals in research through better experimental design. London (United Kingdom): The Royal Society of Medicine Press Limited, 2002.
  17. Avtandilov GG. Medical morphometry. Moscow: Medicine, 1990. (In Russ).
  18. Schäfer KH, Hänsgen A, Mestres P. Morphological changes of the myenteric plexus during early postnatal development of the rat. Anat Rec. 1999;256(1):20-8. doi: 10.1002/(SICI)1097-0185(19990901)256:1<20::AID-AR4>3.0.CO;2-8.
  19. Eisenberg JD, Bradley RP, Graham KD, Ceron RH, Lemke AM, Wilkins BJ, Naji A, Heuckeroth RO. Three-Dimensional Imaging of the Enteric Nervous System in Human Pediatric Colon Reveals New Features of Hirschsprung's Disease. Gastroenterology. 2024;167(3):547-559. doi: 10.1053/j.gastro.2024.02.045.
  20. Nguyen TT, Baumann P, Tüscher O, Schick S, Endres K. The Aging Enteric Nervous System. Int J Mol Sci. 2023 May 30;24(11):9471. doi: 10.3390/ijms24119471.
  21. Saffrey MJ. Cellular changes in the enteric nervous system during ageing. Dev Biol. 2013 Oct 1;382(1):344-55. doi: 10.1016/j.ydbio.2013.03.015.
  22. Peck CJ, Samsuria SD, Harrington AM, King SK, Hutson JM, Southwell BR. Fall in density, but not number of myenteric neurons and circular muscle nerve fibres in guinea-pig colon with ageing. Neurogastroenterol Motil. 2009;21(10):1075-e90. doi: 10.1111/j.1365-2982.2009.01349.x.
  23. Phillips RJ, Kieffer EJ, Powley TL. Aging of the myenteric plexus: neuronal loss is specific to cholinergic neurons. Auton Neurosci. 2003;106(2):69-83. doi: 10.1016/S1566-0702(03)00072-9.
  24. Budnik AF, Masliukov PM. Postnatal development of the enteric neurons expressing neuronal nitric oxide synthase. Anat Rec (Hoboken). 2023;306(9):2276-2291. doi: 10.1002/ar.24947.

补充文件

附件文件
动作
1. JATS XML

版权所有 © Eco-Vector,



Периодический печатный журнал зарегистрирован как СМИ Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор): 0110212 от 08.02.1993.
Сетевое издание зарегистрировано как СМИ Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор): ЭЛ № ФС 77 - 84733 от 10.02.2023.