Влияние свёртывания крови на иммунологическую реактивность клеток крови ex vivo

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Обоснование. Взаимодействие системы гемостаза и иммунной системы обеспечивает защиту организма от внешних патогенов. Тем не менее, влияние свёртывания крови на иммунную клеточную реактивность изучено недостаточно.

Цель — исследовать влияние свёртывания крови на её иммунореактивные свойства ex vivo.

Материалы и методы. Образцы донорской крови инкубировали с гепарином (для исследования плазмы) или без гепарина (для исследования сыворотки). Антиоксидантную активность плазмы и сыворотки оценивали по интенсивности хемилюминесценции после добавления перекиси водорода или озонированного физиологического раствора. Содержание цитокинов определяли иммуноферментным методом после инкубации крови с липополисахаридом (ЛПС) в течение 3 или 18 ч.

Результаты. Сыворотка обладала значительно большей антиоксидантной активностью, чем плазма. Процесс свёртывания крови заметно снижал как спонтанную, так и ЛПС-индуцированную секрецию клетками крови фактора некроза опухоли TNF-α, не оказывая при этом существенного влияния на секрецию интерлейкинов IL-1, IL-6, IL-8 и С-реактивного белка. С другой стороны, этот процесс приводил к усилению как спонтанной, так и ЛПС-индуцированной секреции клетками крови фактора роста эндотелия сосудов VEGF. В сывороточных пробах с ЛПС также выявили выраженный прирост содержания прокальцитонина.

Заключение. Cвёртывание крови усиливает антиоксидантные свойства крови, ослабляет воспалительную активность иммунореактивных клеток и, тем самым, способствует развитию регенеративных процессов.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Анатолий Анатольевич Пышенко

Российский научный центр хирургии им. акад. Б.В. Петровского

Email: anatoliy.dr@yandex.ru
ORCID iD: 0009-0002-1117-608X
SPIN-код: 8973-0238
Россия, Москва

Татьяна Яковлевна Любавская

Российский научный центр хирургии им. акад. Б.В. Петровского

Email: rnc2016@mail.ru
ORCID iD: 0009-0002-8106-8148
SPIN-код: 1434-2924

канд. биол. наук

Россия, Москва

Ирина Анатольевна Селедцова

Российский научный центр хирургии им. акад. Б.В. Петровского

Email: iax34@yandex.ru
ORCID iD: 0009-0006-0401-1876
SPIN-код: 7001-6428

канд. мед. наук

Россия, Москва

Виктор Иванович Селедцов

Российский научный центр хирургии им. акад. Б.В. Петровского

Автор, ответственный за переписку.
Email: seledtsov@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0002-4746-8853
SPIN-код: 6469-9230

д-р мед. наук, профессор

Россия, Москва

Список литературы

  1. Pavlov OV, Chepanov SV, Selutin AV, Selkov SA. Platelet-leukocyte interactions: immunoregulatory role and pathophysiological relevance. Medical Immunology (Russia). 2022;24(5):871–888. (In Russ.) EDN: CZUGFZ doi: 10.15789/1563-0625-PLI-2511
  2. Shakouri SK, Dolati S, Santhakumar J, et al. Autologous conditioned serum for degenerative diseases and prospects. Growth Factors. 2021;39(1–6):59–70. EDN: ICIAEO doi: 10.1080/08977194.2021.2012467
  3. Łukasik ZM, Makowski M, Makowska JS. From blood coagulation to innate and adaptive immunity: the role of platelets in the physiology and pathology of autoimmune disorders. Rheumatol Int. 2018;38(6):959–974. EDN: UQEPFZ doi: 10.1007/s00296-018-4001-9
  4. Seledtsov VI, Dorzhieva AB, Seledtsova GV. Antitumor and immunomodulatory effects of oxygen therapy. Medical Immunology (Russia). 2023;25(6):1319–1328. (In Russ.) EDN: IWRVPT doi: 10.15789/1563-0625-AAI-2562
  5. Bester J, Matshailwe C, Pretorius E. Simultaneous presence of hypercoagulation and increased clot lysis time due to IL- 1β, IL-6 and IL-8. Cytokine. 2018;110:237–242. EDN: VFDSMV doi: 10.1016/j.cyto.2018.01.007
  6. Antoniak S. The coagulation system in host defense. Res Pract Thromb Haemost. 2018;2(3):549–557. EDN: OWXXZB doi: 10.1002/rth2.12109
  7. Seledtsov VI, von Delwig AA. Therapeutic stimulation of glycolytic ATP production for treating ROS-mediated cellular senescence. Metabolites. 2022;12(12):1160. EDN: FFUCHE doi: 10.3390/metabo12121160
  8. Gros A, Ollivier V, Ho-Tin-Noé B. Platelets in inflammation: regulation of leukocyte activities and vascular repair. Front Immunol. 2015;5:678. doi: 10.3389/fimmu.2014.00678
  9. Li N, Ji Q, Hjemdahl P. Platelet-lymphocyte conjugation differs between lymphocyte subpopulations. J Thromb Haemost. 2006;4(4):874–881. doi: 10.1111/j.1538-7836.2006.01817.x
  10. Zamora C, Cantó E, Nieto JC, et al. Functional consequences of platelet binding to T-lymphocytes in inflammation. J Leukoc Biol. 2013;94(3):521–529. EDN: ROIDZR doi: 10.1189/jlb.0213074
  11. Gerdes N, Zhu L, Ersoy M, et al. Platelets regulate CD4⁺ T-cell differentiation via multiple chemokines in humans. Thromb Haemost. 2011;106(2):353–362. doi: 10.1160/TH11-01-0020
  12. Zhu L, Huang Z, Stålesen R, et al. Platelets provoke distinct dynamics of immune responses by differentially regulating CD4+ T-cell proliferation. J Thromb Haemost. 2014;12(7):1156–1165. doi: 10.1111/jth.12612
  13. Ciesielska A, Matyjek M, Kwiatkowska K. TLR4 and CD14 trafficking and its influence on LPS-induced pro-inflammatory signaling. Cell Mol Life Sci. 2021;78(4):1233–1261. EDN: NDRLRG doi: 10.1007/s00018-020-03656-y
  14. Armstrong MT, Rickles FR, Armstrong PB. Capture of lipopolysaccharide (endotoxin) by the blood clot: a comparative study. PLoS One. 2013;8(11):e80192. doi: 10.1371/journal.pone.0080192
  15. Wilhelm G, Mertowska P, Mertowski S, et al. The Crossroads of the Coagulation System and the Immune System: Interactions and Connections. Int J Mol Sci. 2023;24(16):12563. EDN: AAMMSJ doi: 10.3390/ijms241612563

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Интенсивность хемилюминесценции (ИХ) образцов плазмы и сыворотки в присутствии 0,35 М перекиси водорода (a) и физиологического раствора, содержащего 1 мкг/мл озона (b). kPPS — общее количество импульсов в режиме определения фотонов. Контрольные значения интенсивности хемилюминесценции использованных растворов перекиси водорода и озонированного физиологического раствора составили 61 870 и 2 850, соответственно. Представлены репрезентативные результаты с образцами плазмы и сыворотки, полученными от 4 доноров.

Скачать (103KB)
3. Рис. 2. Содержание биоактивных молекул в плазме (тёмно-серые столбцы) и сыворотке (светло-серые столбцы) после инкубации цельной крови с липополисахаридом в течение 3 и 18 ч: a — IL-1 (n = 5); b — IL-6 (n = 5); c — IL-8 (n = 5); d — TNF-α (n = 7, * — статистически значимое отличие от соответствующего образца плазмы, p < 0,02); e — С-реактивного белка (n = 7); f — прокальцитонина (n = 7, * — статистически значимое отличие от соответствующего образца плазмы, p < 0,05); g — VEGF (n = 7, * — статистически значимое отличие от соответствующего образца плазмы, p < 0,03). Данные представлены в виде среднего и ошибки среднего, n — количество образцов (доноров крови).

Скачать (344KB)
4. Рис. 3. Содержание IL-8 (a) и VEGF (b) в плазме и сыворотке в первые часы инкубации цельной крови. Представлены репрезентативные результаты экспериментов с образцами крови, полученными от 2 доноров.

Скачать (92KB)

© Эко-Вектор, 2025

Ссылка на описание лицензии: https://eco-vector.com/for_authors.php#07

Периодический печатный журнал зарегистрирован как СМИ Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор): 0110212 от 08.02.1993.
Сетевое издание зарегистрировано как СМИ Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор): ЭЛ № ФС 77 - 84733 от 10.02.2023.