ВЫЯВЛЕНИЕ МОРФОЛОГИЧЕСКИХ ПРИЗНАКОВ ДЕГРАНУЛЯЦИИ ТУЧНЫХ КЛЕТОК СОСУДИСТОГО СПЛЕТЕНИЯ ГОЛОВНОГО МОЗГА ЧЕЛОВЕКА С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ РАЗЛИЧНЫХ МЕТОДОВ ОКРАСКИ И ИММУНОГИСТОХИМИИ



Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Цель - определение признаков дегрануляции тучных клеток сосудистого сплетения головного мозга человека при использовании окраски толуидиновым синим, гистохимической реакции на гликозаминогликаны и сульфаминогликаны с помощью альцианового синего и иммуногистохимической реакции на триптазу тучных клеток. Материал и методы. Исследование проведено на образцах сосудистого сплетения головного мозга 29 людей в возрасте от 14 до 73 лет. Для оценки числа и локализации тучных клеток часть препаратов окрашивали толуидиновым синим и альциановым синим с докраской ядерным прочным красным. Также была проведена иммуногистохимическая реакция с использованием антител к триптазе тучных клеток человека. Результаты. Все три метода окраски показали разную степень эффективности при выявлении тучных клеток и их дегрануляции. Наилучшим методом визуализации тучных клеток (как гранулированных, так и в процессе дегрануляции) в сосудистом сплетении оказалась иммуногистохимическая реакция на триптазу. Около 60 % тучных клеток в сосудистом сплетении головного мозга в исследуемых образцах были представлены дегранулирующими клетками, окруженными иммунопозитивным ореолом, демонстрирующим перицеллюлярную локализацию триптазы. Выводы. Иммуногистохимическая реакция на триптазу значительно эффективнее выявляет тучные клетки в сосудистом сплетении мозга человека по сравнению с классическими методами окраски толуидиновым синим и альциановым синим. Дегрануляция тучных клеток в сосудистом сплетении мозга человека относится к разновидности постепенной дегрануляции, перманентно влияющей на функциональную активность сплетения и гематоликворного барьера.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Елена Анатольевна Фёдорова

Институт экспериментальной медицины

Email: iemmorphol@yandex.ru
Лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы 197376, Санкт-Петербург, ул. Акад. Павлова, 12

Игорь Павлович Григорьев

Институт экспериментальной медицины

Лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы 197376, Санкт-Петербург, ул. Акад. Павлова, 12

Марина Александровна Сырцова

Институт экспериментальной медицины

Лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы 197376, Санкт-Петербург, ул. Акад. Павлова, 12

Дина Азатовна Суфиева

Институт экспериментальной медицины

Лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы 197376, Санкт-Петербург, ул. Акад. Павлова, 12

Анастасия Дмитриевна Новикова

Институт экспериментальной медицины

Лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы 197376, Санкт-Петербург, ул. Акад. Павлова, 12

Дмитрий Эдуардович Коржевский

Институт экспериментальной медицины; Санкт-Петербургский государственный университет

Лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы; кафедра фундаментальных проблем медицины и медицинских технологий 197376, Санкт-Петербург, ул. Акад. Павлова, 12

Список литературы

  1. Атякшин Д. А., Бурцева А. С., Соколов Д. А. Оценка эффективности выявления тучных клеток в тощей кишке монгольских песчанок с помощью гистохимических методик // Журнал анатомии и гистопатологии. 2016. Т. 5, № 4. С. 85-89. doi: 10.18499/2225-7357-2016-5-4-85-89.
  2. Быков В. Л. Секреторные механизмы и секреторные продукты тучных клеток // Морфология. 1999. Т. 115, вып. 2. С. 72-79.
  3. Коржевский Д. Э. Тучные клетки в сосудистом сплетении у детей // Морфология. 1997. Т. 112, вып. 5. С. 48-50.
  4. Коржевский Д. Э. Тучные клетки в сосудистом сплетении конечного мозга при различных видах смерти // Теория и практика судебной медицины. Труды Петербургск. науч. общ-ва судебных медиков. СПб., 1998. С. 43-45
  5. Кутукова Н. А., Назаров П. Г. Tучные клетки: роль в воспалении, восстановлении тканей и развитии фиброза // Цитокины и воспаление. 2014. Т. 13, № 2. С. 11-20.
  6. Турыгин В. В., Бабик Т. М., Бояков А. А. Характеристика тучных клеток сосудистых сплетений желудочков головного мозга человека при старении // Морфология. 2004. Т. 126, вып. 6. С. 61-62.
  7. Atiakshin D., Samoilova V., Buchwalow I., Boecker W., Tiemann M. Characterization of mast cell populations using different methods for their identification // Histochem Cell Biol. 2017. Vol. 147, № 6. P. 683-694. doi: 10.1007/s00418-017-1547-7.
  8. Babik T. M. Changes in mast cells of vascular plexuses of human cerebral ventricles in atherosclerosis of precerebral arteries // Bull. Exper. Biol. Med. 2005. Vol. 140, № 5. P. 571-573.
  9. Chikahisa S., Kodama T., Soya A., Sagawa Y., Ishimaru Y., Sei H., Nishino S. Histamine from brain resident mast cells promotes wakefulness and modulates behavioral states // PLoS One. 2013. Vol. 8. P. e78434. doi: 10.1371/journal.pone.0078434.
  10. Crivellato E., Nico B., Gallo V. P., Ribatti D. Cell secretion me diated by granule-associated vesicle transport: a glimpse at evolution // Anat. Rec. (Hoboken). 2010. Vol. 293, № 7. P. 1115- 1124. doi: 10.1002/ar.21146.
  11. de Groot N. S., Burgas M. T. Is membrane homeostasis the missing link between inflammation and neurodegenerative diseases? // Cell Mol. Life Sci. 2015. Vol. 72, № 24. P. 4795-4805. doi: 10.1007/s00018-015-2038-4.
  12. Dropp J. J. Mast cells in the central nervous system of several rodents // Anat Rec. 1972. Vol. 174, № 2. P. 227-237. doi: 10.1002/ar.1091740207.
  13. Dvorak A. M. Piecemeal degranulation of basophils and mast cells is effected by vesicular transport of stored secretory granule contents // Chem. Immunol. Allergy. 2005. Vol. 85. P. 135-184. doi.org/10.1159/000086516.
  14. Esposito P., Gheorghe D., Kandere K., Pang X., Connolly R., Jacobson S., Theoharides T. C. Acute stress increases permeability of the blood-brain barrier through activation of brain mast cells // Brain Res. 2001. Vol. 888. P. 117-127. doi. org/10.1016/S0006-8993(00)03026-2.
  15. Larson A. A., Thomas M. J., McElhose A., Kovacs K. J. Spon taneous locomotor activity correlates with the degranulation of mast cells in the meninges rather than in the thalamus: disruptive effect of cocaine // Brain Res. 2011. Vol. 1395. P. 30-37. doi: 10.1016/j.brainres.2011.04.033.
  16. Porzionato A., Macchi V., Parenti A., De Caro R. The distribution of mast cells in the human area postrema // J. Anat. 2004. Vol. 204, № 2. P. 141-147. doi: 10.1111/j.1469-7580.2004.00256.x
  17. Welle M. Development, significance, and heterogeneity of mast cells with particular regard to the mast cell-specific proteases chymase and tryptase // J. Leukoc. Biol. 1997. Vol. 61, № 3. P. 233-245.
  18. Wernersson S., Pejler G. Mast cell secretory granules: armed for battle // Nat. Rev. Immunol. 2014. Vol. 14, № 7. P. 478-494. doi: 10.1038/nri3690.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Эко-Вектор, 2018


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: № 0110212 от 08.02.1993.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах