ВЗАИМОЗАВИСИМЫЕ ИЗМЕНЕНИЯ АКСОНА И ШВАННОВСКОЙ КЛЕТКИ В ПРОЦЕССЕ РЕАКТИВНОЙ ПЕРЕСТРОЙКИ МИЕЛИНОВОГО ВОЛОКНА



Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

С помощью инвертированного фазово-контрастного микроскопа были изучены живые неповрежденные и в разной степени механически травмированные волокна седалищного нерва лягушки. Обнаружено, что набухание насечек миелина (НМ) (Шмидта—Лантермана) происходит по принципам, сходным с изменениями, происходящими в области узлового перехвата, и зависит от набухания перикариона шванновской клетки (ШК). Было выявлено, что это — единый процесс, который может быть объединён в комплекс неспецифических изменений миелинового нервного волокна. Также показано, что при действии механической травмы и гипотонического раствора набухание НМ, узловых перехватов и перикариона ШК происходит при неизменённом наружном диаметре волокна, за счёт резкого локального истончения аксона. Электронно-микроскопическое изучение цитоскелетных структур аксона показало, что происходит не просто его локальное сужение, а существенное местное увеличение плотности расположения цитоскелетных компонентов аксоплазмы (на 200–275%). Реактивная обратимая перестройка миелинового волокна предполагает новый тип взаимодействия аксона и ШК, механизм обратимой транслокации жидкой фракции аксоплазмы в цитоплазму глиоцита.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Татьяна Николаевна Кокурина

Институт физиологии им. И. П. Павлова РАН

Email: kokurina.tatyana@mail.ru
лаборатория функциональной морфологии и физиологии нейрона 199036, Санкт-Петербург, наб. Макарова, 6

Олег Семенович Сотников

Институт физиологии им. И. П. Павлова РАН

Email: sotnikov@kolt.infran.ru
лаборатория функциональной морфологии и физиологии нейрона 199036, Санкт-Петербург, наб. Макарова, 6

Светлана Алексеевна Новаковская

Институт физиологии НАН Беларуси

Email: novakovskaya@tut.by
220072, Беларусь, Минск, ул. Академическая, 28

Александр Сергеевич Егоров

Институт физиологии НАН Беларуси

220072, Беларусь, Минск, ул. Академическая, 28

Рита Викторовна Кожевец

Институт физиологии НАН Беларуси

220072, Беларусь, Минск, ул. Академическая, 28

Дмитрий Сергеевич Солнушкин

Институт физиологии им. И. П. Павлова РАН

лаборатория функциональной морфологии и физиологии нейрона 199036, Санкт-Петербург, наб. Макарова, 6

Валерий Николаевич Чихман

Институт физиологии им. И. П. Павлова РАН

Email: chi@physiology.spb.ru
лаборатория функциональной морфологии и физиологии нейрона 199036, Санкт-Петербург, наб. Макарова, 6

Список литературы

  1. Быков В. Н. Морфофункциональная характеристика седалищного нерва в норме и при недостаточности функций печени: Автореф. дис. … канд. мед. наук. СПб., 2003.
  2. Жихорев В. И. Судебно-медицинская оценка дезорганизации кардиальных нервных структур при некоторых видах смерти: Автореф. дис. … канд. мед. наук. М., 2007.
  3. Запрянова Э., Сотников О. С., Сергеева С. С. и др. Реакция аксонов предшествует демиелинизации в экспериментальных моделях рассеянного склероза. Морфология, 2002, т. 122, вып. 5, с. 54–59.
  4. Русанова Д. В. Закономерности и механизмы поражения периферических нервов при воздействии металлической ртути и комплекса токсических веществ: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Иркутск, 2007.
  5. Семченко В. В. и Степанов С. С. Нейроглия. В кн.: Руководство по гистологии. СПб., СпецЛит, 2011, с. 519–532.
  6. Сотников О. С. Динамика структуры живого нейрона. Л., Наука, 1985.
  7. Allt G. The node of Ranvier in experimental allergic neuritis: an electron microscope study. J. Neurocytol., 1975, v. 4, № 1, p. 63–76.
  8. Bay V. and Butt A. M. Relationship between glial potassium re gulation and axon excitability: a role for glial Kir4.1 channels. Glia, 2012, v. 60, № 4, p. 651–660.
  9. Cajal S. R. Sobre un nuevo proceder de impregnacion de la neuroglia y sus resultados en los centros nerviosos del hombre y animals. Trab. Lab. Invest. Biol., 1913, v. 11, p. 219–237.
  10. Casanova B., Martínez-Bisbal M.C., Valero C. et al. Evidence of Wallerian degeneration in normal appearing white matter in the early stages of relapsing-remitting multiple sclerosis: a HMRS study. J. Neurol., 2003, v. 250, p. 22–28.
  11. Gaudet A. D., Popovich P. G. and Ramer M. S. Wallerian degeneration: gaining perspective on inflammatory events after peripheral nerve injury. J. Neuroinflammation, 2011, v. 8, p. 110.
  12. Kawagashira Y., Koike H., Tomita M. et al. Morphological progression of myelin abnormalities in IgM-monoclonal gammopathy of undetermined significance anti-myelin-associated glycoprotein neuropathy. J. Neuropathol. Exp. Neurol., 2010, v. 69, p. 1143– 1157.
  13. Kilinc D., Gallo G. and Barbee K. A. Mechanical membrane injury induces axonal beading through localized activation of calpain. Exp. Neurol., 2009, v. 219, p. 553–561.
  14. Malkinson G. and Spira M.E. Clustering of excess growth resources within leading growth cones underlies the recurrent «deposition» of varicosities along developing neurites. Exp. Neurol., 2010, v. 225, p. 140–153.
  15. Mastaglia F.L., McDonald W.I., Watson J.V. and Jogendran K. Effects of x-radiation on the spinal cord: an experimental study of the morphological changes in central nerve fibres. Brain, 1976, v. 99, p. 101–122.
  16. Nans A., Einheber S., Salzer J. L. et. al. Electron tomography of paranodal septate-like junctions and the associated axonal and glial cytoskeletons in the central nervous system. J. Neurosci. Res., 2011, v. 89, p. 310–319.
  17. Olmarker K., Nordborg C., Larsson K. et al. Ultrastructural changes in spinal nerve roots induced by autologous nucleus pulposus. Spine, 1996, v. 21, p. 411–414.
  18. Ransom B.R. and Fern R. Does astrocytic glycogen benefit axon function and survival in CNS white matter during glucose deprivation? Glia, 1997, v. 21, p. 134–141.
  19. Reynolds R.J., Little G.J., Lin M. et al. Imaging myelinated nerve fibres by confocal fluorescence microscopy: individual fibres in whole nerve trunks traced through multiple consecutive internodes. J. Neurocytol., 1994, v. 23, p. 555–564.
  20. Scherer S. S., Arroyo J. and Peles E. Functional organization of the nodes of Ranvier. J. In: Myelin Biology and Disorders, Amsterdam, Boston et al., Elsevier, Acad. Press, 2004, v. 1, p. 89–107.
  21. Speidel C. C. The experimental induction of visible structural changes in single nerve fibres in living frog tadpoles. Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biology, 1936, v. 4, p. 13–17.
  22. Takahashi M., Billups B., Rossi D. et al. The role of glutamate transporters in glutamate homeostasis in the brain. J. Exp. Biol., 1997, v. 200, Pt 2, p. 401–409.
  23. Trapp B. D. and Kidd G. J. Structure of the myelinated axon. In: Myelin Biology and Disorders, Amsterdam, Boston et al., Elsevier, Acad. Press, 2004, v. 1, p. 3–28.
  24. Yin X., Kidd G. J., Nave K.-A. et al. P0 Protein is required for and can induce formation of Schmidt-Lantermann incisures in myelin internodes. J. Neurosci., 2008, v. 28, p. 7068–7073.
  25. Yu R. C. and Bunge R. P. Damage and repair of the peripheral myelin sheath and node of Ranvier after treatment with trypsin. J. Cell Biol., 1975, v. 64, p. 1–14.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Эко-Вектор, 2013


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: № 0110212 от 08.02.1993.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах