Том 163, № 4 (2025)

Обоснование. Количественная и морфофункциональная характеристики тучных клеток могут служить одним из показателей реактивности тканей в ответ на радиационное воздействие, а также критерием компенсаторно-приспособительных процессов после облучения и при использовании радиопротекторов.

Цель — представить морфофункциональную и количественную характеристики тучных клеток селезёнки лабораторных мышей при фракционированном общем рентгеновском облучении и пероральном введении бета-D-глюкана.

Методы. Проведено экспериментальное одноцентровое проспективное сплошное контролируемое исследование. Объект исследования — образцы селезёнки лабораторных мышей (n = 23). Количественно оценивали популяцию тучных клеток на гистологических срезах селезёнки. Мышей разделили на 5 групп: 1 — интактные животные (n = 3); 2 — облучённые животные с суммарной поглощённой дозой 7 Гр (n = 5); 3 — облучённые мыши с суммарной поглощённой дозой 7 Гр, которым перорально вводили растворимую форму бета-D-глюкана за 15 мин до облучения (n = 5); 4 — облучённые животные с суммарной поглощённой дозой 18 Гр (n = 5); 5 — облучённые мыши с суммарной поглощённой дозой 18 Гр, которым перорально вводили растворимую форму бета-D-глюкана за 15 мин до облучения (n = 5). Взятие материала осуществляли на 14 и 30 сутки после начала экспериментального воздействия. Образцы фиксировали в 10% растворе забуференного формалина, обезвоживали в спиртах и заливали в парафин. Срезы окрашивали по методу Романовского–Гимзы. На каждом гистологическом препарате оценивали структуру и подсчитывали количество тучных клеток. Проводили статистическую обработку полученных данных.

Результаты. Плотность расположения тучных клеток в селезёнке лабораторных мышей при поглощённой суммарной дозе облучения 7 Гр изменилась незначительно по сравнению с интактными животными. При суммарной поглощённой дозе 18 Гр отмечено значительное увеличение плотности расположения и функциональной активности тучных клеток. Предварительное введение бета-D-глюкана перед облучением в суммарной поглощённой дозе 7 Гр снижает количество тучных клеток в 2,5 раза, а при суммарной дозе 18 Гр — в 1,25 раза по сравнению с облучёнными животными без введения препарата (группа сравнения 4).

Заключение. Плотность расположения тучных клеток в селезёнке зависит от поглощённой дозы рентгеновского излучения. Введение бета-D-глюкана за 15 мин до воздействия снижает плотность расположения тучных клеток, что, вероятно, можно рассматривать как положительный радиопротекторный эффект.

Обоснование. Морфология интрамуральных автономных нервных ганглиев межмышечного (МС) и подслизистого (ПС) сплетений кишки у половозрелых животных изучена достаточно подробно, тогда как данных о возрастных особенностях этих структур в современной литературе недостаточно.

Цель — исследовать морфометрические характеристики интрамуральных автономных нервных узлов межмышечного и подслизистого сплетений в тонкой и толстой кишке у крыс в постнатальном онтогенезе.

Методы. Работа выполнена на самцах крыс линии Wistar разных возрастных групп: новорождённых, на 10, 20, 30, 60-е сутки после рождения, а также в возрасте 12 и 24 месяца. В работе использовали иммуногистохимический анализ с флуоресцентными меченными антителами к протеиновому генному продукту 9,5 (PGP9.5).

Результаты. В постнатальном онтогенезе происходит снижение числа ганглиев на 1 мм² и увеличение площади ганглиев в тонкой и толстой кишке. Средняя площадь нервных узлов в МС тонкой и толстой кишки возрастает с момента рождения вплоть до 60-х суток, а в ПС — в первые 30 суток жизни. Средняя плотность расположения нервных узлов на 1 мм² уменьшается в МС: в тонкой кишке в первые 60 суток, а в толстой — на протяжении 12 месяцев. Данный показатель в ПС снижается и в тонкой, и в толстой кишке в первые 60 суток жизни. Среднее число PGP9.5-иммунореактивных нейронов в одном ганглии в МС не изменяется в постнатальном онтогенезе, а в ПС увеличивается в первые 10 суток после рождения.

Заключение. В постнатальном онтогенезе в первые 30 суток жизни происходит увеличение размеров нервных узлов в МС и ПС и снижение плотности их расположения на единицу поверхности тонкой и толстой кишки. Форма ганглиев и число нейронов в узлах МС в постнатальном онтогенезе не меняется. Ганглии ПС, в отличие от МС тонкой и толстой кишки крыс, к моменту рождения остаются незрелыми и формирование сети узлов ПС происходит в первые 10 суток после рождения.

Обоснование. Восстановление концевой фаланги пальца у взрослых млекопитающих представляет собой редкий пример полноценной регенерации без развития фиброза. Иглистые мыши рода Acomys способны к восстановлению многих тканей, включая эпидермис и мышцы, без формирования рубца. Однако способность Acomys cahirinus к полноценному восстановлению концевой фаланги пальца не известна.

Цель — оценить динамику восстановления концевой фаланги пальца после ампутации у иглистых мышей.

Методы. Динамику регенерации концевых фаланг пальцев у мышей Mus musculus и A. cahirinus оценивали в течение 28 дней после ампутации. Для моделирования эпиморфной регенерации посредством формирования бластемы ампутацию концевой фаланги проводили дистальнее ногтевого ложа. Для моделирования повреждения, завершающегося формированием фиброзного рубца, ампутацию проводили проксимальнее ногтевого ложа. Восстановление оценивали визуально, с использованием микрокомпьютерной томографии, а также на основании результатов гистологического исследования.

Результаты. В отличие от M. musculus, демонстрирующих полноценное восстановление всего тканевого состава после ампутации дистальной фаланги пальца, у A. cahirinus этого не происходит. У A. cahirinus после ампутации дистальнее ногтевого ложа наблюдается укорочение пальцев и их деформация по типу «барабанных палочек». Гистологический анализ показал, что у иглистых мышей увеличивается объём костной ткани в повреждённой фаланге. С помощью микрокомпьютерной томографии установлено, что повреждённая при ампутации кость подвергается лизису вплоть до полной деградации, а гипертрофия происходит в кости следующей фаланги повреждённого пальца, расположенной проксимальнее плоскости ампутации.

Заключение. У A. сahirinus не происходит полноценного восстановления пальца после ампутации дистальной фаланги. Возможно, это обусловлено чрезмерным лизисом повреждённой кости, а также недостаточным формированием бластемы в участке повреждения.

Обоснование. Меланома — злокачественное новообразование, развивающееся из меланоцитов — клеток, синтезирующих меланин и локализующихся преимущественно в коже. Несмотря на редкость, меланома обладает высокой агрессивностью. В 2023 году в России выявлено 13 270 случаев меланомы кожи. Основным фактором риска является избыточное воздействие ультрафиолетового излучения. Иммуногистохимические исследования с использованием маркеров HMB-45 (Human Melanoma Black-45), Melan-A/MART-1 (Melanoma Antigen Recognized by T cells 1) и S100 играют ключевую роль в диагностике меланомы кожи и позволяют повысить точность выявления опухоли и оптимизировать лечение.

Цель — оценить прогностическую значимость меланоцитарных маркеров HMB-45, Melan-A/MART-1 и S100 при меланоме кожи с учётом гистологических подтипов опухоли и стадий согласно классификации pTNM.

Методы. Образцы меланомы кожи пациентов (n = 117) исследовали иммуногистохимическим методом с использованием антител к HMB-45, Melan-A/MART-1 и S100. При интерпретации результатов учитывали гистологический подтип опухоли и толщину инвазии по Breslow, на основании которой определяли стадию заболевания.

Результаты. Подсчёт атипичных клеток меланомы с учётом её гистологического подтипа показал наибольшую чувствительность маркера S100 (91,2%) по сравнению с Melan-A/MART-1 и HMB-45, особенно при десмопластическом типе опухоли. Кроме того, маркеры S100 и Melan-A/MART-1 демонстрируют стабильное окрашивание независимо от степени инвазии, в то время как количество HMB-45-позитивных атипичных меланоцитов увеличивается по мере прогрессирования опухоли в соответствии с классификацией по системе pTNM (Tumor, Node, Metastasis).

Заключение. При иммуногистохимическом исследовании различных гистологических подтипов меланомы кожи обнаружена стабильная экспрессия белков S100, Melan-A/MART-1 и HMB-45 в поверхностно-распространяющейся и узловой формах опухоли. При десмопластическом подтипе меланомы кожи экспрессия Melan-A/MART-1 и HMB- 45 отсутствует, тогда как экспрессия S100 сохраняется. Доля S100- и Melan-A/MART-1-позитивных атипичных клеток не зависит от степени инвазии опухоли (в соответствии со стадиями pTNM). В то же время, процент HMB-45-позитивных атипичных меланоцитов пропорционально увеличивается с ростом толщины инвазии, что не исключает его прогностическую значимость.

Тканевые микроматрицы — один из перспективных методов для высокопроизводительного анализа архивированных образцов тканей. Лаборатории, использующие традиционный ручной метод изготовления тканевых микроматриц (ТМА), сталкиваются с необходимостью повышения эффективности и стандартизации, что особенно важно для онкоморфологических исследований и диагностики. Достичь этого можно за счёт автоматизации процесса.

Настоящий обзор посвящён рассмотрению возможностей и преимуществ автоматизированных систем для создания ТМА по сравнению с ручным методом, с акцентом на их применение в анализе саркомы Юинга и других недифференцированных круглоклеточных сарком. В проанализированных работах автоматизированные системы использовали для извлечения и позиционирования тканевых цилиндров в парафиновые блоки-реципиенты, а на полученных срезах ТМА проводили гистологические и иммуногистохимические исследования. Кроме того, оценивали качество срезов тканевых микроматриц. В упомянутых работах автоматизированные системы показали высокую точность позиционирования тканевых цилиндров, что значительно ускорило процесс создания ТМА и улучшило качество готовых срезов.

Таким образом, внедрение автоматизированных систем для конструирования ТМА имеет значительные преимущества по сравнению с ручным методом, поскольку обеспечивает стандартизацию и повышает производительность лабораторных исследований. Автоматизированные системы позволяют эффективно анализировать большие серии образцов, что особенно важно для валидизации диагностических и прогностических биомаркеров. Опубликованные работы подчёркивают необходимость дальнейшего развития и более широкого внедрения автоматизированных систем в онкоморфологические исследования для повышения их эффективности и воспроизводимости.

26 августа 2025 года исполнилось 80 лет видному советскому и российскому гистологу, профессору Александру Абрамовичу Стадникову. Вся его жизнь связана с Оренбургским медицинским вузом (институтом — академией — университетом), где он прошёл все ступени служебной лестницы — от ассистента (с 1971 года) до доцента (с 1983 года), а затем заведующего кафедрой (в 1988–2025 гг.). Одновременно с этим в период с 1993 по 2009 год Александр Абрамович был проректором, а в 2009 году исполнял обязанности ректора Оренбургской медицинской академии. С 2025 года А.А. Стадников работает в качестве профессора кафедры гистологии. Сфера его научных интересов охватывает широкий круг вопросов сравнительной и эволюционной гистологии, эмбрионального и постнатального морфогенеза, нейроэндокринной регуляции морфогенеза и регенерации, истории гистологии. Крупным вкладом в биологию клетки являются его исследования, посвящённые вопросам взаимоотношения про- и эукариотических клеток. Александр Абрамович Стадников создал новое направление в Оренбургской научной гистологической школе, посвящённое изучению нейроэндокринной регуляции клеток, тканей и органов. Пионерскими являются исследования, направленные на выяснение вопросов нейроэндокринной регуляции взаимоотношений про- и эукариот. Интенсивную исследовательскую деятельность профессор А.А. Стадников уже свыше 50 лет гармонично сочетает с преподавательской работой в Оренбургском медицинском вузе. Он заслужил уважение и любовь нескольких поколений студентов, преподавателей и врачей. Александр Абрамович является примером талантливого учёного и педагога, который воодушевляет и заставляет поверить в собственные силы. Для учеников и коллег он является высоким научным и моральным авторитетом.

Статья посвящена памяти Ираиды Михайловны Пестовой (1913–1988) — видного отечественного гистолога советского периода, профессора, доктора биологических наук. Ираида Михайловна была выпускницей Свердловского государственного медицинского института (ныне Уральский государственный медицинский университет), представительницей его легендарного первого выпуска. По окончании института в 1936 году И.М. Пестова поступила в аспирантуру на кафедру нормальной анатомии, где в течение года занималась под руководством профессора Алексея Павловича Лаврентьева — основателя и первого заведующего этой кафедрой. В 1937 году Ираида Михайловна переехала в город Пермь, где была зачислена в аспирантуру при кафедре гистологии Пермского государственного медицинского института, к профессору Петру Яковлевичу Лаховскому. С этого момента начался её успешный путь учёного-гистолога, приведший к выдающимся научным достижениям и многолетнему заведованию кафедрой гистологии Пермского государственного медицинского института. Главным научным направлением кафедры в тот период было изучение иммунной и кроветворной систем позвоночных животных в эволюционном аспекте. Как учёный, Ираида Михайловна Пестова была последовательницей выдающегося советского гистолога, основоположника эволюционной гистологии, академика Академии Наук и Академии Медицинских Наук СССР Алексея Алексеевича Заварзина. Именно в Перми А.А. Заварзин заложил научные основы эволюционного направления в гистологии, которые в дальнейшем плодотворно развивал Евгений Сильвиевич Данини — учитель И.М. Пестовой. В статье отражены основные этапы жизни и деятельности профессора И.М. Пестовой, её вклад в науку и преподавание, а также профессиональные и личные качества.